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벼에 발생하는 목 도열병 및 이삭 도열병 검정을 위한 실험방법 개발
Development of Virulence Test Methods for Neck and Panicle Blast Disease 원문보기

Research in plant disease = 식물병연구, v.21 no.2, 2015년, pp.103 - 106  

지명환 (사무엘노블연구소) ,  박숙영 (순천대학교 한국지의류연구센터)

초록
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벼 도열병은 벼의 조직에 따라서 잎, 마디, 목, 그리고 이삭의 병징에 의해 특성화된다. 심각한 수량 손실이 잎 도열병 보다는 목도열병과 이삭도열병이 원인이 됨에도 불구하고, 분리된 균주의 병원력 검정은 목과 이삭 대신 잎에서 수행되었다. 이 연구에서 우리는 목과 이삭 도열병을 위한 병원성 검정 방법을 개발하였다. 병원력 검정을 위해, 잎, 목, 그리고 이삭 도열병으로 부터 각각 3개의 대표균주를 선발하였다. 벼에 도열병균을 접종한 후 48시간 동안 고습도생장상에서 두었을 때, 24시간보다 목과 이삭에서 높은 발병률을 보였다. 잎 도열병 검정과 다르게, 목과 이삭에서의 전형적인 병반은 접종 14일 후 나타났다. 이 연구방법은 앞으로 벼 도열병의 벼 조직 별 병원성 검정방법을 위해 활용될 수 있을 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Isolates of the rice blast fungus show a range of tissue-specificities infecting leaves, nodes, neck and panicles. Although neck and panicle blast cause significantly greater yield losses than the leaf blast, virulence tests of the blast isolates have been performed only rice leaves instead of neck ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 상기한 바와 같이, 본 연구에서는 성체 식물을 이용한 목 도열병 및 이삭 도열병 검정방법을 개발하였다. 특히, 잎을 이용한 벼 도열병 검정법과 다르게 성체 식물을 이용한 벼 도열병 검정법은 48시간 이상의 습실처리가 요구되며, 병반 형성에 2주 이상이 소요됨을 보였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
벼 도열병을 야기하는 병원균은? 벼 도열병은 벼 및 화본과 작물에 병을 일으키는 병원균인 Magnaporthe oryzae에 의해 발생된다. 전 세계적으로 벼를 재배하는 지역에서 가장 중요한 병으로 벼의 유묘기에서 수확기에 이르기까지 벼의 전 생육기에 걸쳐 나타나며, 이 병에 의한 손실량은 한 해 6000만 명이 먹을 수 있을 정도에 달한다(Oh, 1985).
Magnaporthe oryzae의 특징과 피해는? 벼 도열병은 벼 및 화본과 작물에 병을 일으키는 병원균인 Magnaporthe oryzae에 의해 발생된다. 전 세계적으로 벼를 재배하는 지역에서 가장 중요한 병으로 벼의 유묘기에서 수확기에 이르기까지 벼의 전 생육기에 걸쳐 나타나며, 이 병에 의한 손실량은 한 해 6000만 명이 먹을 수 있을 정도에 달한다(Oh, 1985). 우리나라의 경우 1970년대 벼의 생산량 증대를 위해 개발된 통일계 품종들이 전국적으로 재배되고, 기주의 단일화와 환경조건이 병원균 발생에 유리한 상황으로 지속되면서 벼 도열병이 대발생된 사례가 있다.
도열병균이 벼에 침입하는 시점은? 도열병균은 벼의 그루터기 등에서 균사체나 포자 상태로 월동하는 것으로 생각되고 있으며, 벼가 논에 이식되어 재배되기 시작하는 시점의 유묘기 때부터 잎에 침입하기 시작한다. 다른 식물 병원성 곰팡이와 마찬가지로 벼 도열병균의 무성포자가 가장 중요한 최초의 감염체로, 무성포자는 기주 부착 후 1-2시간 내 발아가 시작된다(Bourett와 Howard, 1999; Hamer 등, 1988).
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참고문헌 (12)

  1. Agrios, G. N. 1997. Plant Pathology. 4th ed. Academic, San Diego. 

  2. Bourett, T. M. and Howard, R. J. 1990. In vitro development of penetration structure in the rice blast fungus Magnaporthe grisea. Can. J. Bot. 68: 329-342. 

  3. Hamer, J. E., Howard, R. J., Chumley, F. G. and Valent, B. 1988. A mechanism for surface attachment in spores of a plant pathogenic fungus. Science 239: 288-290. 

  4. Han, S. S., Ra, D. S., Choi, S. H. and Kim, C. K. 1997. Population dynamics of Pyricularia grisea during leaf and panicle blast stages in the same field. Korean J. Plant Pathol. 13: 408-415. (In Korean) 

  5. Khang, C. H., Berruyer, R., Giraldo, M., Kankanala, P., Park, S.-Y., Czymmek, K., Kang, S. and Valent, B. 2010. Translocation of Magnaporthe oryzae efferctors into rice cells and their subsequent cell-to-cell movement. Plant Cell 22: 1388-1403. 

  6. Mosquera, G., Giraldo, M., Khang, C. H., Coughlan, S. and Valent, B. 2009. Interaction transcriptome analysis identifies Magnaporthe oryzae BAS1-4 as biotrohpy-associated secreted proteins in rice balst disease. Plant Cell 21: 1273-1290. 

  7. Ou, S. H. 1985. Rice Diseases. Kew, UK: Commonwealth Mycological Institute. 

  8. Ou, S. H. and Ayad, M. R. 1967. Pathogenic races of Pyricularia oryzae origniating from single lesions and monoconidial cultures. Phytopathology 58: 179-182. 

  9. Ra, D. S., Han, S. S. and Kim, C. K. 1994. Temporal and spatial blast incidence in leading cultivars and elite lines of rice in Korea. Korean J. Plant Pathol. 10: 47-53. (In Korean) 

  10. Ra, D. S., Ryu, J. K. and Han, S. S. 1993. Improvement of rice blast control by cultivation of selected cultivars with partial resistance. Korean J. Plant Pathol. 9: 206-212. (In Korean) 

  11. Valent, B., Farrall, L. and Chumley, F. G. 1991. Magnaporthe grisea genes for pathogenicity and virulence identified through a series of backcrosses. Genetics 127: 87-101. 

  12. Wibowo, B. S. 2011. Sebaran dan perkembangan OPT padi. Prosiding Seminar Nasional Penyakit Tungro. Makassar, Indonisia. 

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