[논문]영양부추 생산농가의 소규모 수확후 처리시설 적용과 위생교육에 따른 미생물학적 안전성 향상 효과

김세리; 김진배; 이효섭; 이은선; 김원일; 류송희; 하지형; 김황용; 류재기

doi:10.13103/jfhs.2015.30.3.249

영양부추 생산농가의 소규모 수확후 처리시설 적용과 위생교육에 따른 미생물학적 안전성 향상 효과
Effects of Small Scale Post-Harvest Facility and Hygiene Education on the Level of Microbial Safety in Korean Leeks Production 원문보기

한국식품위생안전성학회지 = Journal of food hygiene and safety, v.30 no.3, 2015년, pp.249 - 257

초록
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위생적인 수확후처리를 통하여 안전한 농산물 생산을 유도하기 위하여 영양부추를 대상으로 수확후 처리시설 모델을 개발하였으며 개발된 수확후 처리시설 설치와 위생교육이 미생물 안전에 미치는 효과를 검증하고자 본 연구를 수행하였다. 이를 위하여 양주지역 영양부추 생산 농가의 수확 후 처리시설 환경과 영양부추에서 위생지표세균(일반세균수, 대장균군, E. coli)과 병원성미생물(Escherichia coli O157:H7, Salmonella spp., Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Bacillus cereus)을 조사하였다. 그 결과, 빗, 칼, 도마 등 수확후 처리시설에서 사용하는 작업도구의 일반세균수 오염수준은 수확후 처리시설 설치농가(A, B)에서 수확후 처리시설 비설치농가(C) 보다 1.44~2.33 log CFU / 100$100cm^2$ 정도 낮았다. 특히 도마의 경우 A농가에서 1.00 log CFU / 100$100cm^2$이하, B 농가에서 2.23 log CFU / $100cm^2$인데 반해 C 농가에서는 6.03 log CFU / $100cm^2$로 농가간의 위생 상태에 따라 B. cereus의 오염수준이 차이가 크게 나타났다. 또한 지하수에 침지 한 영양부추에서 침지 전 보다 대장균군이 0.57~1.89 log CFU/g이 증가하였다. E. coli는 영양부추, 침지한 후 지하수, 토양에서 검출되었으며, E. coli O157:H7, Salmonella spp., L. monocytogenes는 검출되지 않았다. 따라서 본 연구의 결과를 통하여 소규모 수확 후 처리시설 설치와 위생교육을 통하여 농가 내 수확후처리 환경의 위생을 개선하는데 효과적이라 판단된다. 이와 더불어 유해미생물에 의한 식중독사고를 사전에 예방하기 위해서는 수확 후에 오염된 유해미생물을 저감화 할 수 있는 세척, 소독 기술의 개발과 도입이 필요할 것으로 사료된다.

Abstract ▼ AI-Helper

The purposes of this study were to develop a small scale post-harvest facility, and consequently to evaluate the effects of applying the facility along with hygiene education on the level of microbial safety in Korean leeks production. A total of 135 samples were collected at three Korean leeks farms in Yangju, Gyeonggi province. Food safety indicators (Aerobic plate count (APC), coliform count, and Escherichia coli) and foodborne pathogens (E. coli O157:H7, Salmonella spp., Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, and Bacillus cereus) on/in the samples were assessed. The microbial load measured as APC with harvesting tools such as comb, chopping board, and knife, at the farms where the small scale post-harvest facility had been operated (Farms A and B) was lower than that at another farm having no post-harvest facility (Farm C) by 1.44~2.33 log CFU / $100cm^2$. Moreover, the chopping board from Farm C was observed being contaminated with B. cereus at 6.03 log CFU / $100cm^2$. The coliform counts from the samples increased by 0.57~1.89 log CFU/g after leeks was submerged in ground water for washing. E. coli was recovered from leeks, soil, and the ground water used in the washing process, while no E. coli O157:H7, Salmonella spp., and L. monocytogenes was detected. Our results indicated that the small scale post-harvest facility developed in this study as well as the hygiene education played an important role in enhancing the level of microbial food safety in the leeks production environment. However, a disinfection technique could be needed during the washing step in order to prevent a potential contamination.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

이에 정부는 2012년 7월부터 위생과 신선도를 향상시킬 수 있는 소규모 수확후 처리시설의 필요성을 인식하고 소규모 수확후 처리시설 인증기준을 마련하여 농산물관리법에 고시하였다¹³⁾. 따라서 위생적인 수확후처리를 통하여 안전한 농산물 생산을 유도하기 위하여 엽채류 중 미생물 오염도가 높고 식중독균 검출 빈도가 높은 영양부추를 대상으로 수확후 처리시설 모델을 개발하였다. 또한 개발된 모델과 위생교육이 미생물 안전에 미치는 효과를 검증하고자 현장에서 실증연구를 수행하였으며 그 결과를 보고하고자 한다.
따라서 위생적인 수확후처리를 통하여 안전한 농산물 생산을 유도하기 위하여 엽채류 중 미생물 오염도가 높고 식중독균 검출 빈도가 높은 영양부추를 대상으로 수확후 처리시설 모델을 개발하였다. 또한 개발된 모델과 위생교육이 미생물 안전에 미치는 효과를 검증하고자 현장에서 실증연구를 수행하였으며 그 결과를 보고하고자 한다.
본 연구는 영양부추를 대상으로 소규모 수확후 처리시설 모델을 개발하였다.

제안 방법

B. cereus의 오염도를 조사하기 위하여 영양부추, 토양, 퇴비 및 상토는 25 g을 취하여 225 mL의 phosphate buffered dilution water을 가하여 2분간 stomacher에서 균질화하였다.
Detection Kit (Power check PCR kit, Kogen, Seoul, Korea)를 이용하여 PCR로 1차 확인을 거친후, 양성으로 의심되는 시료는 VITEK (VITEK-2 compact, Biomerieux, l'Etoile, France)으로 최종 동정하였다15).
E. coli O157: H7의 동정은 PowerCheckTM E. coli O157:H7 Detection Kit (Power check PCR kit, Kogen, Seoul, Korea)를 이용하여 PCR로 1차 확인을 거친 후, 양성으로 의심되는 시료는 VITEK (VITEK-2 compact, Biomerieux, l'Etoile, France)으로 최종 동정하였다15).
E. coli O157:H7의 증균을 위해 고체 시료는 25 g을 취하여 225 mL의 mEC broth (Oxoid, Hampshire, UK)에서 37°C에서 24시간의 배양하였고, glove juice법과 swab법으로 채취한 시료는 1 mL를 채취하여 10 mL의 mEC broth (Oxoid, Hampshire, UK)에서 증균하였다.
L. monocytogenes균주의 분리를 위해 영양부추, 퇴비, 토양 및 상토는 25 g을 225 mL의 Listeria enrichment broth (Oxoid, Hampshire, UK)에 swab한 시료와 glove juice법으로 채취한 시료는 1 mL을 채취하여 10 mL의 Listeria enrichment broth에 접종 후 30℃에서 24시간 배양하였다.
PCR 반응은 intron사의 istar Taq PCR kit을 사용하였으며 DNA 5 μL primer는 10pM 농도로 2쌍 첨가하고 3차 멸균 증류수로 최종 반응용액을 20 μL로 조절하였다.
S. aureus는 정성과 정량 검사를 실시하였으며 정성검사의 경우 고체시료 25 g을 225 mL의 10% NaCl이 첨가된 tryptic soy broth (Difco, MD, USA)에 넣고 2분간 stomacher에서 균질하였고 glove juice법과 swab법으로 채취한 시료는 1 mL를 10 mL의 10% TSB에 접종 하였다.
coli의 오염원을 구명하고자 영양부추 생산 농가의 재배과정 중 미생 물오염도를 조사하였다.
계수한 평판에서 5개 이상의 전형적인 집락을 선발하여 NA배지에 접종하고 37℃ 에서 24시간 배양한 후 확인 동정하였다.
균질화한 검액은 단계희석 한 후 250 μL 씩 MYP agar(Oxoid, Hampshire, UK) 4 plate에 접종한후 30℃, 24~48시간 배양한 후 전형적인 형태를 나타내는 집락을 계수하였다.
대조구(C농가)로 위생관리가 이루어지고 있지 않은 일반 영양부추 농가를 선정하여 그 효과를 비교하였다.
Paul, MN, USA)에 접종하고 37°C 24시간 배양하였다¹⁵⁾. 또한 E. coli의 측정은 정량과 정성을 동시에 수행하였다. 정량 분석은 3M사의 petrifilm TM (3M, St.
cereus의 오염도를 조사하기 위하여 영양부추, 토양, 퇴비 및 상토는 25 g을 취하여 225 mL의 phosphate buffered dilution water을 가하여 2분간 stomacher에서 균질화하였다. 또한 glove juice법과 swab법으로 채취한 시료는 30초간 vortex하였다. 균질화한 검액은 단계희석 한 후 250 μL 씩 MYP agar(Oxoid, Hampshire, UK) 4 plate에 접종한후 30℃, 24~48시간 배양한 후 전형적인 형태를 나타내는 집락을 계수하였다.
또한 방충망과 에어커튼을 설치하여 곤충이 유입되는 것을 차단하였고 개인위생을 향상시키기 위하여 손세척 시설을 설치 하였다.
또한 수확용기는 10 cm × 10 cm 크기의 면적대를 사용하여 100 cm2의 면적을 면봉으로 문질러 채취하였다.
또한 정량시험은 위생지표세균을 위해 전 처리된 검액을 단계희석한 후 각 희석농도에 대하여 250 μL씩 Baird-Parker agar 4 plate에 접종한 후 37℃, 48시간 배양한 후 전형적인 형태를 나타내는 집락을 계수하였다.
또한 정성분석은 상추를 비롯한 고체 시료의 경우 25 g을 취하여 225 mL의 EC broth에서 37°C에서 24시간 증균 배양하였고, glove juice법과 swab법으로 채취한 시료는 1 mL을 채취하여 10 mL의 발효관이 든 EC broth (Oxoid, Hampshire, UK)에서 증균하였다.
미생물 검사를 통하여 수확후 처리시설 설치와 위생가이드 실천이 영양부추의 미생물 안전성 향상에 미치는 효과를 검증하였다. 수확후 처리시설 설치농가 2곳과 비설치 농가 1곳을 대상으로 2013년 10월에 미생물 오염도를 측정하였다.
분리는 식품공전¹⁵⁾에 준하여 실험하였다. 상추를 비롯한 고체 시료는 25 g을 225 mL의 buffered peptone water에 glove juice법과 swab법으로 채취한 시료는 1 mL을 채취하여 10 mL의 buffered peptone water에서 증균하였다. 1차 증균한 후 10 mL의 Rappaport Vassiliadis R10 Broth(Difco, MD, USA)에 1차 증균액 100 μL를 접종하여 37°C, 24시간 배양한 후 균액 1 loop를 취하여 선택배지인 XLD (Oxoid, Hampshire, UK)에 도말하였다.
미생물 검사를 통하여 수확후 처리시설 설치와 위생가이드 실천이 영양부추의 미생물 안전성 향상에 미치는 효과를 검증하였다. 수확후 처리시설 설치농가 2곳과 비설치 농가 1곳을 대상으로 2013년 10월에 미생물 오염도를 측정하였다. 영양부추의 생산과정은 Fig.
수확후 처리시설은 폭 3 m, 길이 6 m의 컨테이너 박스를 활용하였으며 내부는 유해미생물 차단을 위하여 작업 공간을 오염구역과 청결구역으로 구분하였다.
수확후 처리단계의 미생물을 조사한 결과 수확 직후의 영양부추의 미생물 오염도가 높고, E. coli가 검출되어 오염원을 조사하기 위하여 농가들을 재방문하여 재배환경과 재배단계의 영양부추의 미생물 오염도를 추가로 조사하였다.
수확후 처리시설 설치 농가를 대상으로 2회에 걸쳐 손 씻기, 작업장청소, 작업도구 세척 등 위생관리 방법을 교육하였다.
수확후 처리시설은 저온창고가 수확후 처리시설 내부에 있는 I type과 수확후 처리시설이 외부에 있는 II type으로 두 가지 모델을 개발하였다(Fig. 1).
영양부추농가의 소규모 수확후 처리시설 설치와 위생 교육 실시가 미생물 안전성에 미치는 효과를 분석하고자 수확후 처리시설 내 환경과 수확후 처리 단계별 영양부추중 미생물 오염도를 조사하였으며 그 결과는 Table 2 와 같다.
영양부추는 수확 후 처리 시설에 입고된 후, 이물질을 제거한 후, 예냉 조에 담근 후의 부추를 약 150 g씩 멸균된 시료채취용 팩에 채취하였다(Table 1).
영양부추는 신선도 향상 측면에서 지하수에 1시간정도 담근 후 물기를 일부 제거하고 저온저장하는 과정을 거치는데 영양부추를 침지하기 전의 지하수와 침지한 이후 침지통에 담긴 물의 미생물 오염도를 조사하였다.
수확후 처리시설 설치농가 2곳과 비설치 농가 1곳을 대상으로 2013년 10월에 미생물 오염도를 측정하였다. 영양부추의 생산과정은 Fig. 2와 같으며 영양부추의 수확후 처리 과정 중 영양부추와 접촉하는 작업자의 손, 도마, 칼, 빗, 저울, 수확후 처리시설 내 물, 세척 후 물, 포장지와 작업 단계별 영양부추를 채취하여 본 연구에 사용하였고 시료채취방법은 다음과 같다. 먼저 작업자의 손은 영양부추 수확후 처리시설 내에서 선별, 포장하는 작업자를 대상으로 채취하였으며 glove juice법으로 채취하였다¹⁴⁾.
위생지표세균의 분석을 위하여 영양부추, 퇴비, 토양, 상토는 25 g을 취하여 0.85% 생리식염수 225 mL과 혼합하고 stomacher에서 2분간 균질화시켰다. Glove juice법과 swab법으로 채취된 시료는 30초간 vortex한 후 사용하였다.
이 때 사용하는 지하수와 영양부추를 담그어 놓은 상태의 물을 채취하여 미생물 조사를 하였다.
이 후 37°C, 24 시간 배양 후 금속광택을 나타내는 집락을 VITEK (VITEK-2 compact, Biomerieux, l'Etoile, France)으로 최종 동정하였다15).
이들 시료를 대상으로 위생지표세균(일반세균, 대장균군, E. coli)과 병원성미생물(E. coli O157:H7, L. monocytogenes, B. cereus, S. aureus)을 분석하였다.
정량 분석은 3M사의 petrifilm TM (3M, St. Paul, MN, USA)을이용하였으며 각 농도별로 1 mL씩 취하여 film에 접종하고 37°C에서 24시간 배양 후 기포를 가진 blue colony만을 E. coli로 인정하였다.
정성, 정량검사의 확인실험은 PCR kit (Powercheck kit, Kogen, Seoul, Korea)를 이용한 PCR법과 VITEK (VITEK-2 compact, Biomerieux, l'Etoile, France)을 사용한 생화학적 방법으로 수행하였고 대조군으로 S. aureus 표준 균주 ATCC 25923을 사용하였다15).
최종 동정은 PowerCheckTM Listeria monocytogenes Detection Kit (Power check PCR kit, Kogen, Seoul, Korea)를 이용하여 PCR로 1차 확인을 거친 후, 양성으로 의심되는 시료는 VITEK (VITEK-2 compact, Biomerieux, l'Etoile, France)으로 최종 동정하였으며 대조군으로 L. monocytogenes ATCC 15313을 사용하였다15).
토양은 영양부추 주변에서 약 200 g씩을 취하여 시료채취용 멸균팩에 채취하였고 농가에서 사용하는 퇴비는 퇴비 포장지를 멸균 가위로 절단 한 후 멸균된 모종삽을 이용하여 약 200 g정도 취하여 시료채취용 멸균팩에 채취하였다.

대상 데이터

85% 생리식염수 225 mL과 혼합하고 stomacher에서 2분간 균질화시켰다. Glove juice법과 swab법으로 채취된 시료는 30초간 vortex한 후 사용하였다. 균질화된 시료는 그 중 1 mL를 취하여 10배 단계희석한 후 일반세균 및 coliform 측정용 petrifim(3M, St.
개발된 수확후 처리시설을 적용하기 위하여 2013년 8월부터 12월까지 경기도 양주지역 영양부추농가 두 곳(A, B농가)을 선정하여 A농가는 수확후 처리시설 I type, B농가는 II type을 각각 설치하였다.
coli O157:H7 Detection Kit (Power check PCR kit, Kogen, Seoul, Korea)를 이용하여 PCR로 1차 확인을 거친 후, 양성으로 의심되는 시료는 VITEK (VITEK-2 compact, Biomerieux, l'Etoile, France)으로 최종 동정하였다¹⁵⁾. 대조군으로 E. coli O157:H7 ATCC 43894를 사용하였다.
대조군으로는 Bacillus cereus ATCC 10876와 Bacillus thuringenesis ATCC 29730을 사용하였다.
또한 대조군으로 S. Typhimurium ATCC 13314를 사용하였다.
2와 같으며 영양부추의 수확후 처리 과정 중 영양부추와 접촉하는 작업자의 손, 도마, 칼, 빗, 저울, 수확후 처리시설 내 물, 세척 후 물, 포장지와 작업 단계별 영양부추를 채취하여 본 연구에 사용하였고 시료채취방법은 다음과 같다. 먼저 작업자의 손은 영양부추 수확후 처리시설 내에서 선별, 포장하는 작업자를 대상으로 채취하였으며 glove juice법으로 채취하였다¹⁴⁾. Glove juice법은 0.
이때 빗, 칼, 도마를 사용하는데 이들 시료는 작업 중의 것을 대상으로 채취하였다. 수확 과정 중 사용되는 포장지는 수확 상자 내부에 있는 포장 비닐을 대상으로 하였다. 이들 시료는 10 cm × 10 cm 크기의 면적대를 사용하여 100 cm²의 면적을 면봉으로 문질러 채취하였다¹¹⁾.
이들 시료는 10 cm × 10 cm 크기의 면적대를 사용하여 100 cm2의 면적을 면봉으로 문질러 채취하였다11).
영양부추는 농장에서 수확하여 수확후 처리시설로 이송한 후 이물질, 상품성이 낮은 잎들을 제거하는 과정을 거친다. 이때 빗, 칼, 도마를 사용하는데 이들 시료는 작업 중의 것을 대상으로 채취하였다. 수확 과정 중 사용되는 포장지는 수확 상자 내부에 있는 포장 비닐을 대상으로 하였다.
재배단계에서는 영양부추와 직접적으로 접촉할 수 있는 관개용수, 퇴비, 토양, 수확용기와 재배 중인 영양부추를 채취하여 연구에 사용하였다.

데이터처리

미생물 균수는 log colony forming unit(CFU)/mL, 100 cm2, g, hand으로 나타내었으며, 토양과 영양부추의 결과에 대해서는 SPSS 통계처리 프로그램 version 11을 사용 하여 ANOVA와 LSD test를 실시하여 α = 0.05에서 유의성을 검증하였다.

이론/모형

B. cereus를 검출하기 위한 PCR 조건은 Choo 등16) 의 방법으로 gryB유전자 cry유전자를 대상으로 multiplex PCR을 수행하였다.
B. cereus의 동정은 PCR 법으로 확인하였다.
계수한 평판에서 5개 이상의 전형적인 집락을 선발하여 NA배지에 접종하고 30℃에서 24시간 배양한 후 PCR법에 의하여 확인하였다.
Salmonella spp. 분리는 식품공전¹⁵⁾에 준하여 실험하였다. 상추를 비롯한 고체 시료는 25 g을 225 mL의 buffered peptone water에 glove juice법과 swab법으로 채취한 시료는 1 mL을 채취하여 10 mL의 buffered peptone water에서 증균하였다.

성능/효과

B. cereus도 수확후 처리시설 설치 농가와 비 설치 농가 간의 차이가 있었으며 특히 도마의 경우 A농가에서 1.00 log CFU / 100 cm2 이하, B 농가에서 2.23 log CFU / 100 cm2인데 반해 C 농가에서는 6.03 log CFU / 100 cm2로 농가간의 위생 상태에 따라 B. cereus의 오염수준이 차이가 크게 나타났다.
관개용수의 일반세균수는 0.59~1.41 log CFU/mL으로 일반세균수가 낮으며 유해미생물이 검출되지 않아 수질의 안전성은 확보되어 있었다.
그 결과, Table 2에서 보는 바와 같이 침지하기 전의 지하수의 일반세균수는 각각 0~2.22 log CFU/mL으로 오염수준이 매우 낮은데 반해 침지 후의 물에서는 각각 4.94, 3.79, 6.09 log CFU/mL이었다.
32 log CFU/hand였다. 대장균군은 A와 B농가의 경우는 2.39, 1.83 log CFU/hand 수준이었으나 C농가의 경우는 4.02 log CFU/hand로 수확후 처리시설 설치 농가에 비해 다소 높게 검출되었다. 또한 B.
50 log CFU/g로 나타났다. 또한 B 농가의 수확 직후 영양부추와 이물질 제거 후 영양부추, C농가의 침지 후 영양부추에서 E. coli가 검출되었다. 수확 직후의 영양부추의 높은 일반세균수와 E.
병원성 미생물의 토양 유입을 차단하기 위해서는 우선 퇴비는 완전하게 부숙된 것을 사용하고 야생동물의 출입을 차단하는 것이 필요하다. 또한 멀칭을 통하여 영양부추의 토양과 접촉을 최소화하는 것이 효과적일 것으로 판단된다.
coli 검출은 재배 단계에서 미생물에 오염되었기 때문이라고 판단된다. 또한 침지 후에 대장균군수의 증가와 수확직후의 영양부추, 침지한 이후의 물, 침지한 후의 영양부추에서 E. coli 검출은 재배단계에서부터 E. coli에 오염된 영양부추가 침지과정 중 물을 오염시키고 오염된 물로 인하여 오염되지않은 영양부추로 교차오염된 것으로 판단된다. 이러한 결과는 Jensen¹⁹⁾등의 연구결과와 동일하다.
수확후 처리 단계별 영양부추의 미생물 오염도를 조사한 결과(Fig. 3), 일반세균수는 수확 후에 비해 이물질 제거 후에 약 1.34, 1.05, 0.89 log CFU/g이 감소한데 비해 침지 후에는 이물질제거 후와 차이가 없었다. 또한 대장균군의 경우는 수확 후에 비해 이물질 제거 후에 약 2.
전반적으로 수확 후 과정에서는 장갑, 빗, 칼, 도마등 영양부추와 접촉하는 시료에 대한 미생물학적 오염도는 수확후 처리시설 설치농가와 비설치 농가간의 차이가 있었다(P < 0.05).
토양의 일반 세균수는 6.47~7.32 log CFU/g이었고, 대장균군 1.16~2.10 log CFU/g이었으며 B. cereus는 4.17~4.23 log CFU/g이었다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	엽채류가 미생물에 오염되기 쉬운 작물인 이유는?	하지만 최근 들어 신선채소에 의한 식중독 사고가 잇따르면서, 신선채소의 안전성에 대해서 우려하는 소비자가 늘어나고 있다. 신선채소 중에서도 엽채류는 표면적이 넓고 생산 과정 중 토양, 농업용수, 작업자 손 등 주변 환경과 접촉빈도가 높아 미생물에 오염되기 쉬운 작물이다. 1996년부터 2008년까지 미국에서 발생한 식중독 가운데 농산물과 관련된 식중독이 82건이었으며 그 중 엽채류와 관련된 사고는 28건 이었다 2) .
	영국에서 발생한 엽채류에 의한 식중독사고는?	coli O157:H7)에 오염된 시금치가 원인이 되어 발생한 식중독 사고를 들 수 있으며 이 사고로 205명의 환자가 발생하였고 3명이 사망하였다3) . 그 외에도 영국에서 발생한 Salmonella Thompson에 오염된 상추로 인한 식중독과 덴마크에서 발생한 Salmonella Anatum 에 의해 오염된 바질에 의한 식중독 등이 있다4) . 아직까지는 국내에서 엽채류가 직접적인 원인이 되어 발생한 식중독 사례는 보고된 바는 없다.
	Good Agricultural Practices (GAP)제도란 무엇인가?	최근 미생물 등 위해요소를 관리하기 위한 노력의 일환 으로 식품의 원료가 되는 농축산물을 안전하고 위생적으로 공급할 수 있도록 농산물의 생산부터 수확 후 포장단 계까지 농산물에 잔류할 수 있는 농약중금속 또는 미생물 등의 위해요소를 사전에 관리하여 안전성을 확보하는 제도인 Good Agricultural Practices (GAP)제도 도입을 권장 하고 있다10) .

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저자의 다른 논문 :

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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