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Chlorella saccharophila 배양을 위한 목질계 및 해조류 바이오매스 가수분해물의 이용
Application of Lignocellulosic and Macro-algae Hydrolysates for Culture of Chlorella saccharophila 원문보기

Microbiology and biotechnology letters = 한국미생물·생명공학회지, v.44 no.4, 2016년, pp.522 - 528  

김아람 (부경대학교 생물공학과) ,  김효선 (부경대학교 생물공학과) ,  박미라 (부경대학교 생물공학과) ,  김성구 (부경대학교 생물공학과) ,  정귀택 (부경대학교 생물공학과)

초록
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본 연구에서는 3종류의 목질계 바이오매스와 4종류의 해조류 바이오매스를 전처리와 효소가수분해 과정을 통하여 얻은 환원당을 이용하여 C. saccharophila를 배양하였다. 얻어진 가수분해물을 활성탄 처리 유무에 따라 배양한 결과, 목질계 바이오매스와 해조류 바이오매스 가수분해물을 활성탄 처리하지 않은 경우에는 C. saccharophila의 성장이 저해되었다. 목질계 바이오매스인 유채대와 보리대 그리고 볏짚과 해조류 바이오매스인 미역, 다시마, 파래 그리고 꼬시래기 가수분해물의 경우 활성탄 등으로 처리한 경우에서 목질계 바이오매스와 해조류 바이오매스 가수분해물에서 C. saccharophila의 성장이 관찰되었다. 미세조류의 생산성과 oil 함량, chlorophyll 등을 고려하였을 때 목질계 바이오매스와 해조류 바이오매스는 C. saccharophila의 product 생산을 위한 배양에 이점을 가지며, 특히 chlorophyll 생산에 보다 유용하리라 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, we investigated the possibility of using hydrolysates of lignocellulosics (rapeseed straw, barley straw, rice straw) and marine macro-algae (Undaria pinnatifida, Laminaria japonica, Enteromorpha intestinalis, and Gracilaria verrucosa) to cultivate Chlorella saccharophila. The growth o...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구에서는 목질계 바이오매스인 보릿대, 볏짚 그리고 유채대와 해조류 바이오매스인 미역, 다시마, 파래 그리고 꼬시래기를 탄소원으로 적용하기 위하여 전처리와 효소 가수분해를 통해 가수분해물을 얻고, 이를 미세조류 중 녹조류에 해당되는 Chlorella saccharophila의 배양에 탄소원으로의 이용 가능성을 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
목질계 자원의 구성 요소는? 당과 전분계 자원은 식량자원으로 사용되고 있어 에너지자원으로 이용에 한계가 있다. 식용작물의 부산물, 비식용작물, 나무 또는 삼림부산물 등과 같은 목질계 자원(lignocellulosic biomass)은 탄수화물 중합체인 cellulose, hemicellulose 그리고 방향족 중합체인 lignin으로 구성되어 있다[1, 6, 10]. Cellulose와 hemicellulose는 물리, 화학, 생물학적인 분해과정을 통해 탄수화물 중합체를 단당의 형태로 분해하여 미생물이 이용가능한 당으로 전환이 가능하다[6, 9, 16].
당과 전분계 자원의 한계는? 당과 전분계 자원은 식량자원으로 사용되고 있어 에너지자원으로 이용에 한계가 있다. 식용작물의 부산물, 비식용작물, 나무 또는 삼림부산물 등과 같은 목질계 자원(lignocellulosic biomass)은 탄수화물 중합체인 cellulose, hemicellulose 그리고 방향족 중합체인 lignin으로 구성되어 있다[1, 6, 10].
거대조류의 특징은? 최근 연구되고 있는 해양 바이오매스로 거대조류(macroalgae)가 있다. 이들은 광합성을 통해 햇빛에서 에너지를 얻으며 이산화탄소를 고정하며, 성장이 빠르고 육상 식물보다 단위 면적당 생산성이 우수한 자원으로 주목받고 있다[13]. 또한 종(species), 수확 장소 및 시기 등에 따라 구성성분(탄수화물 및 지질의 함량과 구성)이 다양하여 이용 가능성이 우수하다[10, 13−15, 17]. 현재 거대조류를 이용하여 물리적, 화학적 그리고 생물학적 공정을 통하여 바이오에탄올과 화학물질의 생산연구가 수행되고 있다[11, 14, 15, 17].
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참고문헌 (17)

  1. Demibras A. 2007. Progress and recent trends in biofuels. Prog. Energy Combust. Sci. 33: 1-18. 

  2. Folch J, Lees M, Sloane-Stanley GH. 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipid from animal tissues. J. Biochem. 226: 497-502. 

  3. Hayes DJ, Fitzpatrick S, Hayes MHB, Ross JRH. 2006. The biofine process - Production of levulinic acid, furfural, and formic acid from lignocellulosic feedstocks, pp. 139-164. In: B. Kamm, P. R. Gruber, M. Kamm (eds.). Biorefineries - Industrial Processes and Products, WILEY-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim. 

  4. Jeong GT, Park DH. 2015. Optimization of lipid extraction from marine green macro-algae as biofuel resources. Korean J. Chem. Eng. 32: 2463-2467. 

  5. Jeong GT, Hong YK, Lee HH, Kong IS, Kim JK, Park NG, et al. 2014. Recovery of algal oil from marine green macro-algae Enteromorpha intestinalis by acidic-hydrothermal process. Appl. Biochem. Biotechnol. 174: 221-230. 

  6. Kang KE, Jeong GT, Park DH. 2012. Pretreatment of rapeseed straw by sodium hydroxide. Bioprocess Biosyst. Eng. 35: 705-713. 

  7. Kim JK, Park HJ, Kim YH, Joo H, Lee SH, Lee JH. 2013. UV-induced mutagenesis of Nannochloropsis oculata for the increase of lipid accumulation and its characterization. J. Korean Ind. Eng. Chem. 24: 155-160. 

  8. Kim DH, Jeong GT. 2014. Antimicrobial and antioxidant activities of extracts of marine greenalgae Enteromorpha intestinalis. KSBB J. 29: 92-97. 

  9. Kwon OM, Kim SK, Jeong GT. 2016. Potential of phosphoric acid-catalyzed pretreatment and subsequent enzymatic hydrolysis for biosugar production from Gracilaria verrucosa. Bioprocess. Biosyst. Eng. 39: 1173-1180. 

  10. Lynd LR. 1996. Overview and evaluation of fuel ethanol from cellulosic biomass: technology, economics, the environment, and policy. Annu. Rev. Energy Environ. 21: 403-465. 

  11. Lee SM, Kim JH, Cho HY, Joo H, Lee JH. 2009. Production of bioethanol from brown algae by physicochemical hydrolysis. J. Korean Ind. Eng. Chem. 20: 517-521. 

  12. Miller GL. 1959. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Anal. Chem. 31: 426-428. 

  13. Park JI, Woo HC, Lee JH. 2008. Production of bio-energy from marine algae: Status and perspectives. KIChE. 6: 833-844. 

  14. Park EY, Jeong SM, Kim YJ, Lee DH. 2012. Review on hydrolysis methods of the macroalgae for production of bioethanol. J. Korea Soc. Waste Manage. 29: 323-333. 

  15. Song BB, Kim SK, Jeong GT. 2011. Enzymatic hydrolysis of marine algae Hizikia fusiforme. KSBB J. 26: 347-351. 

  16. The Pacific Northwest National Laboratory (PNNL) and the National Renewable Energy Laboratory (NREL). 2004. Top value added chemicals from biomass, volume I - Results of screening for potential candidates from sugars and synthesis gas. http://www.osti.gov/bridge. 

  17. Yeon JH, Seo HB, Oh SH, Choi WS, Kang DH, Lee HY, et al. 2010. Bioethanol production from hydrolysate of seaweed Sargassum sagamianum. KSBB J. 25: 283-288. 

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