[논문]광합성세균 Rhodobater capsulatus PS-2의 대량배양 최적화 및 대사산물 분석

봉기문; 김종민; 유재홍; 박인철; 이철원; 김평일

doi:10.7841/ksbbj.2016.31.3.158

광합성세균 Rhodobater capsulatus PS-2의 대량배양 최적화 및 대사산물 분석
Mass Cultivation and Secondary Metabolite Analysis of Rhodobacter capsulatus PS-2 원문보기

KSBB Journal, v.31 no.3, 2016년, pp.158 - 164

봉기문 (전남생물산업진흥원 생물방제연구센터) , 김종민 (전남생물산업진흥원 생물방제연구센터) , 유재홍 (국립농업과학원 농업생물부 농업미생물과) , 박인철 (국립농업과학원 농업생물부 농업미생물과) , 이철원 (전남대학교 자연과학대학 화학과) , 김평일 (전남생물산업진흥원 생물방제연구센터)

Abstract ▼ AI-Helper

Plant growth promoting (PGP) hormones, which are produced in a small quantity by bacteria, affect in plant growth and development. PGPs play an important role on the crop productivity in agricultural field. In this study, a photosynthetic bacterial strain producing the PGP was isolated from paddy soil. Bacterial isolate was gram negative, rod-shaped and motility positive. From the 16s rRNA gene sequence analysis, the isolate was identified as Rhodobacter capsulatus PS-2. The mass cultivation of R. capsulatus PS-2 was optimized by considering of the carbon, nitrogen and inorganic salt sources. Optimal medium composition was determined as Na-succinate 4.5 g, yeast extract 5 g, $K_2HPO_4$ 1 g, $MgSO_4$ 5 g, per liter. From the result of 500 L fermentation for 2 days using the optimal medium, the viable cells were $8.7{\times}10^9cfu/mL$. R. capsulatus PS-2 strain produced the carotenoid and indole-3-acetic acid (IAA). The carotenoid extraction and quantitative analysis were performed by HCl-assisting method. Total carotenoid contents from R. capsulatus PS-2 culture broth were measured as $7.02{\pm}0.04$ and $6.93{\pm}0.05mg/L$ under photoheterotrophic and chemoheterotrophic conditions, respectively. To measure the productivity of IAA, colorimetric method was employed using Salkowski reagent at optical density 535 nm. The results showed that the highest content of IAA was $197.44{\pm}5.92mg/L$ in the optimal medium supplemented with 0.3% tryptophan.

주제어

AI 본문요약
AI-Helper

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문제 정의

본 연구에서는 농업에 활용하기 위해 논, 시설재배 밭 토양 및 호수의 퇴적 토양 등에서 분리한 광합성세균을 선별하여 대량생산 최적화를 통해 보존성을 높이고, 광합성세균이 생산하는 대사산물 탐색을 통해 미생물제제로의 가능성을 탐색하고자 하였다.

가설 설정

Retention time 21 min, IAA. (a) standard IAA, (b) IAA extracted from R. capsulatus PS-2 culture broth.

제안 방법

IAA 생성량 측정은 배양 후 배양액을 취하여 10,000×g로 20분 동안 원심분리한 상등액 1 mL에 salkowski 용액 (H2SO4 150 mL, H2O 250 mL, 1.5 M FeCl3·6H2O 7.5 mL) 2 mL을 혼합하여 상온에서 20분 반응시킨 후 분광광도계를 이용하여 535nm에서 측정하였고, 표준 IAA (Sigma Co., USA)을 사용하여 얻어진 표준곡선에 따라 정량하였다 [13].
R. capsulatus PS-2 균주를 tryptophan이 첨가된 최적배지에서 배양하며 시간 변화에 따른 IAA 생성량을 조사하였다 [17]. IAA 전구물질로 알려진 tryptophan 0.
Tryptophan을 전구물질로 활용하는 IAA의 정성분석을 위하여 LC-MS/MS에서 MRM 조건을 176.1 → 130.1 m/z로 설정하여 최적 탐색하였다.
Tube 표면에 형성된 적색 또는 갈색의 균체를 백금선으로 채취하여 Biebl & Pfennig’s 고체배지에 평판법으로 도말하여 순수 분리하였다.
광합성세균 중 호기·암배양이 가능한 균주를 선별하기 위해 각각의 균주를 Van niel’s yeast 배지 (K2HPO4 1 g, MgSO4 0.5 g, Yeast extract 10 g, per liter)에 호기·암 조건에서 30℃, 48시간 동안 배양하여 적색의 colony 형태를 나타내는 균주를 얻었다.
광합성세균을 최적배지에 접종한 후 IAA의 전구물질인 L-tryptophan을 0.05, 0.1, 0.2, 0.3% 농도로 각각 첨가하여 호기·암 조건에서 48시간 배양하여 시간 변화에 따른 IAA의 생성량을 조사하였다.
광합성세균의 배지 최적화를 위해 일반적으로 사용되는 Vanniel’s yeast 배지에 탄소원, 유기산, 질소원, 무기염류를 첨가하여 최적배지를 선정하였다.
광합성세균이 생산하는 carotenoid의 추출과 배양조건에 따른 carotenoid 생산량을 비교하기 위해 최적배지에서 호기·암 조건으로 120 rpm, 30℃, 48시간 동안 100 mL (V2)로 배양하였으며, 혐기·광 조건으로 3000 lux에 N2 gas를 주입하여 120rpm, 30℃, 48시간 동안 100 mL (V2)에서 비교 배양하였다.
광합성세균이 생산하는 식물생장촉진 물질 중 비색법을 통해 분석이 가능한 IAA 함량을 측정하였다. 광합성세균을 최적배지에 접종한 후 IAA의 전구물질인 L-tryptophan을 0.
5 g, Yeast extract 10 g, per liter)에 호기·암 조건에서 30℃, 48시간 동안 배양하여 적색의 colony 형태를 나타내는 균주를 얻었다. 균주의 분류학적 동정을 위하여 다양한 생화학적 성상검사 및 전자주사현미경 (scanning electron microscope, SEM)으로 그 형태를 관찰하였다. 이를 바탕으로 Bergey’s manual of systematic bacteriology의 색인에 따라 최종 분류 동정하였다 [11].
논, 시설재배 밭 토양, 쓰레기장, 하천 및 호수의 퇴적 토양 등으로부터 광합성세균을 선발하기 위해 Biebl & Pfennig’s 배지를 이용하여 tube 표면에 형성된 적색 또는 갈색의 균체 총 6종을 분리였다.
대량배양의 최적화를 위해 최적배지를 대상으로 5, 50, 500 L 발효기를 이용하여 R. capsulatus PS-2를 호기·암 조건에서 pilot-scale 대량배양을 수행하였다.
대량배양한 광합성세균의 분말 제형화를 위해 광합성세균 배양액을 15,000×g에서 15분 동안 관형원심분리기를 이용하여 균체를 회수하였다.
05% TFA를 사용하였다. 대사산물의 정성분석을 위한 LC-MS/MS의 ionization mode는 ESI positive mode와 MRM mode를 이용하여 분석하였다(Table 1) [14].
5% MSG)를 첨가하여 80시간 동안 동결건조 한 후 핀밀 분쇄기를 이용하여 균질한 상태로 분말화하였다. 또한 분쇄된 광합성세균 제제를 이용하여 4℃ (냉장), 25℃ (실온), 40℃ 조건에서 6주 동안 온도별 보존 안정성 실험을 수행한 후 분말 제형화에 따른 광합성세균의 보존성을 조사하였다.
배양 조건에 따른 carotenoid 생산 차이를 조사하기 위해 혐기·광 조건과 호기·암 조건에서 각각 배양한 R. capsulatus PS-2의 carotenoid 생산량을 비교하였다.
광합성세균의 배지 최적화를 위해 일반적으로 사용되는 Vanniel’s yeast 배지에 탄소원, 유기산, 질소원, 무기염류를 첨가하여 최적배지를 선정하였다. 배지에 따른 광합성세균의 생장률을 측정하기 위해 탄소원 (glucose, soluble starch), 유기산(sodium acetate, sodium succinate), 질소원 (yeast extract, soy peptone, MSG,), 무기염류 (K₂HPO₄, KH₂PO₄, MgSO₄, NaCl, NH₄Cl, H₃BO₃, CaCO₃,)를 농도별로 첨가하였으며, 흡광도(600 nm) 및 생균수 측정을 통해 최적배지를 선정하였다. 배양 조건은 호기·암 상태에서 120 rpm, 30℃, 48시간 동안 진행하였다.
대량배양한 광합성세균의 분말 제형화를 위해 광합성세균 배양액을 15,000×g에서 15분 동안 관형원심분리기를 이용하여 균체를 회수하였다. 보존 첨가제에 따른 광합성세균의 생존율 비교를 위해 회수한 균체에 성분 조성이 다른 각각의 보존 첨가제 (#1; 0.2% SiO₂, 1% starch, #2; 0.2% SiO₂, 0.5% starch, 0.5% MSG)를 첨가하여 80시간 동안 동결건조 한 후 핀밀 분쇄기를 이용하여 균질한 상태로 분말화하였다. 또한 분쇄된 광합성세균 제제를 이용하여 4℃ (냉장), 25℃ (실온), 40℃ 조건에서 6주 동안 온도별 보존 안정성 실험을 수행한 후 분말 제형화에 따른 광합성세균의 보존성을 조사하였다.
상등액이 제거된 시료에 acetone (V₁)을 첨가하여 28℃, 100 rpm, 30분 동안 교반하여 carotenoid를 추출하였다. 분리한 상등액의 480 nm에서 흡광도 값 (A), carotenoid 함량은 흡광도에 따라 산출식(D: dilution ratio, 0.16: extinction coefficient of carotenoid)에 근거하여 정량 분석하였다 [12].
5% MSG)로 조사되었다. 분말 제형화된광합성세균의 보존성 (안정성)을 조사하기 위하여 4℃ (냉장),25℃ (실온), 40℃ (가혹 조건)에서 1주일 간격으로 6주 동안 생균수를 측정하였다. 4℃에서 6주 후 생균수를 측정한 결과, 제형화 조건 #1의 경우 9×10⁸ cfu/g, 제형화 조건 #2의 경우 8.
MS의 Ion source는 turbo spray 5500, capillary temperature는 500℃으로 설정하였다. 분석시험에는 용매의 비율이 점진적으로 높아지는 gradient program (5-65%, 30 min)을 사용하였으며, 유속은 1 mL/min의 조건으로 하였다. 이동상 조건시험에서 A 용액은 100% H₂O에 0.
선발된 배지를 대상으로 대량생산 최적화를 위해 500 L 발효기를 이용하여 광합성세균의 배양을 수행하였다. 100 mL 최적배지가 포함된 500 mL 삼각 플라스크에서 1차 종균 배양을 진행하였으며, 2차 종균의 경우 최적 배지 2 L를 포함한 5 L 삼각 플라스크에서 동일한 조건으로 배양한 후 500 L 발효기의 300 L 대량배양을 위한 접종원으로 사용하였다.
선별한 광합성세균의 유전학적 특징을 확인하기 위하여 각각의 genomic DNA를 template DNA로 사용하여 16S rRNA 염기서열 분석을 수행하였다. 선별한 광합성세균의 16S rRNA 염기서열을 National Center for Biotechnology Information (NCBI)의 gene bank database 정보로부터 균주 염기서열의 상동성을 확인하였다. 수집된 염기서열들 간의 Multiple alignment는 DNAStar program을 이용하여 편집하였다.
그 중 호기·암 배양이 가능한 1종의 광합성세균을 선별하였다. 선별한 광합성세균의 유전학적 특징을 확인하기 위하여 각각의 genomic DNA를 template DNA로 사용하여 16S rRNA 염기서열 분석을 수행하였다. 선별한 광합성세균의 16S rRNA 염기서열을 National Center for Biotechnology Information (NCBI)의 gene bank database 정보로부터 균주 염기서열의 상동성을 확인하였다.
수집된 시료는 각 종류별로 0.1 g 씩 150×20 mm의 culture tube에 30 mL Biebl & Pfennig’s 배지 (KH2PO4 0.5 g, MgSO4·7H2O 0.2 g, NaCl 0.2 g, CaCl2·2H2O 1.2 g, yeast extract 0.05 g, malic acid 0.3 g, succinic acid 1 g, Na-acetate 1 g, 0.1% ferric citrate 5 mL, Trace Element Solution SL-7* 1 mL, per liter)를 혼합하여 액체파라핀으로 중층하였으며, 혐기상태로 3,000 lux 조도의 형광을 조사한 후 28℃ 항온기에 정치 배양하였다 [10].
최적배지에서 100 mL volume으로 배양한 R. capsulatus PS-2가 생산하는 carotenoid의 정량분석을 위해 염산 (HCl-assisted extraction)을 이용한 추출법을 수행하였다. 추출용매는 acetone을 이용하였으며, 추출물은 480 nm에서 흡광도를 측정하였다.
제형화한 분리균주의 온도 보존성 (안정성)은 4℃ (냉장), 25℃ (실온)에서 6주 동안 1×10⁸cfu/mL의 보존성을 나타내었으며,40℃에서는 불안정한 것으로 조사되었다. 최적배지에서 배양한 광합성세균 R. capsulatus PS-2는 carotenoid를 합성하였으며, 식물생장촉진 물질 indole-3-acetic acid (IAA)를 전구물질인 tryptophan 첨가에 의해 높은 수준으로 생산하였다. IAA는 tryptophan 농도에 따라 증가하였으며, tryptophan 0.

대상 데이터

0.3% tryptophan이 첨가된 최적배지에서 배양한 광합성세균 배양액 100 mL을 10,000×g으로 원심분리한 후 0.2 μm filter로 제균한 상등액을 LC-MS/MS 분석용 시료로 사용하였다.
선발된 배지를 대상으로 대량생산 최적화를 위해 500 L 발효기를 이용하여 광합성세균의 배양을 수행하였다. 100 mL 최적배지가 포함된 500 mL 삼각 플라스크에서 1차 종균 배양을 진행하였으며, 2차 종균의 경우 최적 배지 2 L를 포함한 5 L 삼각 플라스크에서 동일한 조건으로 배양한 후 500 L 발효기의 300 L 대량배양을 위한 접종원으로 사용하였다. 배양 조건은 동일하게 호기·암 조건으로 120 rpm, 30℃, 48시간 동안 배양하였다.
광합성세균의 분리 및 선발을 위해 논, 시설재배 밭 토양, 쓰레기장, 하천 및 호수의 퇴적 토양 등 22개소에서 시료를 수집하였다. 수집된 시료는 각 종류별로 0.
그 중 호기·암 배양이 가능한 1종의 광합성세균을 선별하였다.
분석시험에는 용매의 비율이 점진적으로 높아지는 gradient program (5-65%, 30 min)을 사용하였으며, 유속은 1 mL/min의 조건으로 하였다. 이동상 조건시험에서 A 용액은 100% H₂O에 0.05% Trifluoroacetic acid (TFA), B용액은 100% acetonitrile (ACN)에 0.05% TFA를 사용하였다. 대사산물의 정성분석을 위한 LC-MS/MS의 ionization mode는 ESI positive mode와 MRM mode를 이용하여 분석하였다(Table 1) [14].
capsulatus PS-2가 생산하는 carotenoid의 정량분석을 위해 염산 (HCl-assisted extraction)을 이용한 추출법을 수행하였다. 추출용매는 acetone을 이용하였으며, 추출물은 480 nm에서 흡광도를 측정하였다. 흡광도에 따라 산출식에 대입하여 정량분석한 결과,7.

이론/모형

)에서 비교 배양하였다. Carotenoid 추출은 염산 추출법 (HCl-assisted extraction)으로 추출하였다. Carotenoid의 경우 균체 내부에서 합성되기 때문에 상등액이 제거된 광합성세균 균체를 사용하였으며, 3M HCl을 첨가하여 carotenoid가 추출될 수 있도록 균체를 분해하였다.
선별한 광합성세균의 16S rRNA 염기서열을 National Center for Biotechnology Information (NCBI)의 gene bank database 정보로부터 균주 염기서열의 상동성을 확인하였다. 수집된 염기서열들 간의 Multiple alignment는 DNAStar program을 이용하여 편집하였다. 그리고 MEGA 6.
이를 바탕으로 Bergey’s manual of systematic bacteriology의 색인에 따라 최종 분류 동정하였다 [11].

성능/효과

6(a))과 동일한 시간의 머무름 시간을 나타내었으며 (Fig. 6(b)), 본 연구에서 분리한 광합성세균 R. capsulatus PS-2의 경우 식물생장촉진물질 중 auxin의 대표 물질인 IAA를 생산하는 것을 확인할 수 있었다.
25℃에서 6주 후 생균 수는 제형화 조건 #1의 경우 7.5×108 cfu/g, 제형화 조건 #2의 경우 7×108 cfu/g로 최종 확인되었다 (Fig.
40oC에서 온도별 보존 안정성 실험 결과 1주일 경과 후 생균수는 제형화조건 #1의 경우 9.5×106 cfu/g, 제형화 조건 #2의 경우 8.0×106cfu/g로 확인되었다.
4℃에서 6주 후 생균수를 측정한 결과, 제형화 조건 #1의 경우 9×108 cfu/g, 제형화 조건 #2의 경우 8.5×108 cfu/g로 확인되었다 (Fig.
5 L jar-fermenter에서 최적배양한 결과 최종 생균수는 2.7×109cfu/mL, 50 L 발효기에서 최적배양한 최종 생균수는 5.8×109cfu/mL, 500 L 대용량 발효기를 이용하여 호기·암 배양한 결과 최종 생균수는 8.7×109 cfu/mL로 측정되었다 (Fig. 2).
IAA 전구물질로 알려진 tryptophan 0.05, 0.1, 0.2, 0.3%을 최적배지에 각각 첨가하여 호기·암 조건에서 배양한 후 IAA 생산 농도를 측정한 결과 tryptophan 0.05%에서 65.73 mg/L,0.1%에서 95.18 mg/L, 0.2%에서 175.58 mg/L, 0.3%에서 197.44±5.92 mg/L가 각각 조사되었다 (Fig. 5).
IAA는 tryptophan 농도에 따라 증가하였으며, tryptophan 0.3%를 첨가한 최적배지에서 42시간 배양 시 가장 높은 197.44±5.92 mg/L의 생성량을 확인할 수 있었다.
92 mg/L의 생성량을 확인할 수 있었다. LC-MS/MS 분석을 통해 이온화된 IAA의 모분자는 176.1 Da, 세분화 이온은 130.1 Da이었으며, 머무름 시간 21 min에서 식물생장촉진물질인 IAA가 검출되는 것을 확인할 수 있었다.
R. capsulatus PS-2의 시간 변화에 따른 생산량은 42시간에서 최대 결과를 나타내었으며, 본 연구에서 분리한 광합성세균은 tryptophan을 IAA의 전구물질로 활용하여 IAA에 의한 생장촉진 효과를 충분이 나타낼 수 있는 것으로 판단된다.
결론적으로, 각각의 조건에서 분말 제형화된 광합성세균의 보존성을 조사한 결과 4℃ (냉장), 25℃ (실온)에서 6주 이후에도 1×108 cfu/g 이상의 생균수를 확인할 수 있었다.
2% SiO₂, 1% starch)으로 선정하여 모든 실험을 수행하였다. 광합성세균 분말 제형화 후 온도별 보존 안정성 실험 결과, 40℃ 조건에서 보존성은 1주일 경과 후부터 생균수가 급격하게 감소됨을 확인하였으며, 2주 후부터 생균수는 전혀 확인할 수 없었다 (Fig. 3(c)).
수집된 염기서열들 간의 Multiple alignment는 DNAStar program을 이용하여 편집하였다. 그리고 MEGA 6.0 program의 neighbour-joining method (Fig. 1), Maximum Parsimony, Maximum Likelihood에 의해 염기서열간의 유전적 거리와 phylogenetic tree를 확인한 결과, Rhodobacter capsulatus ATCC 11166과 99%의 상동성을 나타내었다.
2). 대량배양 scale-up 결과 500 L 대용량 발효기에서 가장 높은 생균수가 조사되었으며, 이는 500 L 발효기의 통기량 및 온도조절 기능이 5 L 및 50 L보다 안정하기 때문에 가장 높은 효율을 나타낸 것으로 판단된다. 동결건조기를 이용해 분말 제형화된 초기 생균수는 각각 2.
대량배양의 최적화를 위해 최적배지를 대상으로 5, 50, 500 L 발효기를 이용하여 scale-up을 수행한 결과, 최종적으로 8.7×109cfu/mL의 생균수로 배양할 수 있었다.
따라서, 본 연구를 바탕으로 제품을 개발할 경우 생산된 제품은 4~25℃ 조건에서 보관하는 것을 보관온도로 선정하고 6주 이상 보관하지 않는 것을 권장해야 할 것으로 판단된다.
4). 배양 조건에 따른 R. capsulatus PS2의 색소 생산은 커다란 차이가 없음을 확인하였다.
본 연구를 통해 논, 시설재배 밭 토양, 쓰레기장, 하천 및 호수의 퇴적 토양 등 22개소에서 분리한 총 6종의 광합성세균 중호기·암 배양이 가능한 R. capsulatus PS-2를 분리하였다.
형태학적 특징으로는 그람음성의 막대모양으로, 운동성이 있었다. 분리균주는 호기 및 혐기조건에서 배양이 가능한 통성혐기성으로 확인되었으며, amylase, cellulase, xylanase, protease 활성을 나타내지 못하였다. 분리균주의 16S rRNA 염기서열을 분석한 결과 Rhodobacter capsulatus ATCC 11166과 99%의 상동성을 나타내었으며, 본 연구에서 Rhodobacter capsulatus PS-2로 명명하여 연구를 수행하였다.
분리균주는 호기 및 혐기조건에서 배양이 가능한 통성혐기성으로 확인되었으며, amylase, cellulase, xylanase, protease 활성을 나타내지 못하였다. 분리균주의 16S rRNA 염기서열을 분석한 결과 Rhodobacter capsulatus ATCC 11166과 99%의 상동성을 나타내었으며, 본 연구에서 Rhodobacter capsulatus PS-2로 명명하여 연구를 수행하였다. 선별균주의 최적배양조건으로는 30℃, pH 7.
분석한 결과, 혐기·광배양의 경우 7.02±0.04mg/L, 호기·암배양의 경우 6.93±0.05 mg/L의 총 carotenoid 함량이 측정되었다 (Fig. 4).
분리균주의 16S rRNA 염기서열을 분석한 결과 Rhodobacter capsulatus ATCC 11166과 99%의 상동성을 나타내었으며, 본 연구에서 Rhodobacter capsulatus PS-2로 명명하여 연구를 수행하였다. 선별균주의 최적배양조건으로는 30℃, pH 7.0이었고, 유기산, 질소원, 무기염류 첨가를 통해 산출한 최적배지의 조성은 4.5 g Na-succinate, 5 g yeast extract, 1 g K₂HPO₄, 5 g MgSO₄, per liter로 조사되었다. 대량배양의 최적화를 위해 최적배지를 대상으로 5, 50, 500 L 발효기를 이용하여 scale-up을 수행한 결과, 최종적으로 8.
선별한 광합성세균 R. capsulatus PS-2의 최적배양 조건을 확립하였다. Van niel’s yeast 배지에 유기산, 질소원, 무기염류를 농도별로 첨가하여 선발한 최적배지 (4.
호기적 조건뿐 아니라 혐기적 환경에서 생장 가능한 통성혐기성 균주였으며, amylase, cellulase, xylanase, protease 활성은 없었다 (data not shown). 이러한 각종 생리 생화학적 특징을 조사한 결과 Rhodobacter capsulatus와 가장 가까운 특성을 나타내었으며, 본 연구에서는 Rhodobacter capsulatus PS2로 명명하였다 [15].
제형화한 분리균주의 온도 보존성 (안정성)은 4℃ (냉장), 25℃ (실온)에서 6주 동안 1×108cfu/mL의 보존성을 나타내었으며,40℃에서는 불안정한 것으로 조사되었다.
흡광도에 따라 산출식에 대입하여 정량분석한 결과,7.18±0.15 mg/L의 함량이 측정되었다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	농축산용 미생물제제로 활용되는 주요 미생물 종류는 어떤 것이 있는가?	농축산용 미생물제제로 활용되는 주요 미생물 종류는 고초균 (Bacillus), 효모 (Yeast), 유산균 (Lactic acid bacteria, LAB), 광합성세균 (Photosynthetic bacteria), 슈도모나스 (Pseudomonas), 트리코더마 (Trichoderma), 아스퍼질러스 (Aspergillus)가 있다. 그 중 광합성세균은 논, 하천, 하수처리장 등 담수상태인 곳에 대부분 존재하고 있으며, 생균수는 다른 유기영양 세균과 비교하였을 때 거의 유사한 것으로 알려져 있다 [2].
	R. capsulatus PS-2의 형태학적 특징은 무엇인가?	capsulatus PS-2를 분리하였다. 형태학적 특징으로는 그람음성의 막대모양으로, 운동성이 있었다. 분리균주는 호기 및 혐기조건에서 배양이 가능한 통성혐기성으로 확인되었으며, amylase, cellulase, xylanase, protease 활성을 나타내지 못하였다.
	광합성세균의 생태적 특징은 무엇인가?	농축산용 미생물제제로 활용되는 주요 미생물 종류는 고초균 (Bacillus), 효모 (Yeast), 유산균 (Lactic acid bacteria, LAB), 광합성세균 (Photosynthetic bacteria), 슈도모나스 (Pseudomonas), 트리코더마 (Trichoderma), 아스퍼질러스 (Aspergillus)가 있다. 그 중 광합성세균은 논, 하천, 하수처리장 등 담수상태인 곳에 대부분 존재하고 있으며, 생균수는 다른 유기영양 세균과 비교하였을 때 거의 유사한 것으로 알려져 있다 [2]. 광합성세균은 기본적으로 빛이 있는 혐기·광 (photoheterotrophic culture) 조건에서 광합성 작용에 의해 생장하지만, 이들 중 일부는 빛이 없는 호기·암 (chemoheterotrophic culture) 조건에서 다른 종속영양 미생물처럼 생육하기도 한다 [3].

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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