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파킨슨병의 세포모델에서 진뇌산(鎭腦散)의 보호효과
Protective effects of Jinnoe-san, a novel herbal formula in experimental in vitro models of Parkinson's disease 원문보기

大韓韓醫學方劑學會誌 = Herbal formula science, v.25 no.4, 2017년, pp.537 - 551  

한상태 ((브레인)동의보감한의원) ,  정지천 (동국대학교 한의과대학 내과학교실)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Objectives : Jinnoe-san (JNS) is a novel herbal formula consisting of five oriental medicinal herbs including Polygalae Radix, Prunellae Spica, Perillae Herba, Betulae Cortex, and Lonicerae Flos. In this study, we investigated the effects and molecular mechanism of JNS on Parkinson's disease in vitr...

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문제 정의

  •  미세아교세포에서 진뇌산 추출물의 항염증 효능을평가하기 위해, 먼저 LPS에 의해 유도되는 염증 매개 물질인 NO의 생성과 iNOS 단백질의 발현 증가에영향을 미치는지 알아보았다.
  • . 뇌에서 항염증 효과는퇴행성 뇌질환의 주요 원인이 되는 만성 신경계 염증을 억제함으로써 다양한 신경계 질환으로부터 신경을 보호할 것으로 예상되므로, 본 연구에서도 파킨슨병의 예방 및 치료를 위해 진뇌산의 신경보호 효과에 추가적으로 과학적인 증거를 제시하기 위하여 LPS로 자극된 BV2 생쥐 미세아교세포의 염증반응에서의 효능을 평가하였다. 본 연구 결과에 따르면, 진뇌산은 미세아교세포에 독성을 일으키지 않는 농도 범위에서 LPS로 인한 NO와 PGE2와 같은 염증 매개인자들의 생성을 억제하였으며, 염증성 사이토카인인 TNF-α의 생성도 억제하였다.
  • 본 연구는 진뇌산의 신경세포 보호효능 및 그 기전에 대한 연구로서 SH-SY5Y 세포에서 MPP+에 의하여 유발되는 신경독성으로부터 방어하는 효과를 보이는데, 주로 Akt와 ERK 신호전달경로를 통하여 세포를 보호한다는 사실을 처음으로 보여주고 있다.
  • 의 독성으로부터 보호 효능을 가지며, 미세아교세포에서는 LPS로 유도된 ERK 신호전달경로의 활성을 억제함으로써 강력한 항염증 효능을 보였다. 본 연구를 통하여 진뇌산의 파킨슨병 예방 및 치료제로서의 가능성과 효용성을 두 가지 세포모델을 통하여 증명하였다.
  • 저자는 임상에서 파킨슨병과 같은 퇴행성 뇌질환의예방 및 치료 목적으로 사용 중인 한약재 중에 원지(遠志, Polygalae Radix), 하고초(夏枯草, PrunellaeSpica), 자소엽(紫蘇葉, Perillae Herba), 화피(樺皮, Betulae Cortex), 금은화(金銀花, Lonicerae Flos)등이 신경계에 작용하여 신경세포 손상으로부터 보호효과를 나타낼 것으로 예상되어 새로운 처방을 구성하였다. 본 연구에서는 새 처방을 진뇌산(鎭腦散, Jinnoe-san, JNS)이라 명명하고, MPP+에 의해 신경독성이 유도된 SH-SY5Y 세포와 LPS에 의해 염증반응이 유도된 BV2 생쥐 미세아교세포에서 신경독성보호효능과 항염 효능을 각각 평가하고, 그 기전을연구함으로써 파킨슨병의 예방, 개선 및 치료 후보제로서의 가능성을 확인하였기에 보고하는 바이다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
파킨슨병이란? 파킨슨병(Parkinson's disease)은 중뇌의 흑색질(substantia nigra) 부위에 존재하는 도파민 신경세포(dopaminergic neurons)가 점점 사멸해가면서 도파민이라는 신경전달물질이 감소하여 발생하며, 주로진전(震顫, 떨림), 근육의 강직(剛直) 그리고 서동(徐動, 몸동작의 느려짐) 등의 운동장애가 나타나는 주요한 신경퇴행성질환중 하나이다1,2). 주로 40대 이후에 발생하며, 연령이 증가할수록 발병률이 높아지는경향을 보이므로 평균수명이 길어질수록 환자 수가점차 증가하는 추세이다3).
파킨슨병은 주로 언제 발생하나? 파킨슨병(Parkinson's disease)은 중뇌의 흑색질(substantia nigra) 부위에 존재하는 도파민 신경세포(dopaminergic neurons)가 점점 사멸해가면서 도파민이라는 신경전달물질이 감소하여 발생하며, 주로진전(震顫, 떨림), 근육의 강직(剛直) 그리고 서동(徐動, 몸동작의 느려짐) 등의 운동장애가 나타나는 주요한 신경퇴행성질환중 하나이다1,2). 주로 40대 이후에 발생하며, 연령이 증가할수록 발병률이 높아지는경향을 보이므로 평균수명이 길어질수록 환자 수가점차 증가하는 추세이다3). 
파킨슨병의 발병 원인은? 파킨슨병의 발병 원인은 명확히 밝혀지지 않았지만, 유전적 요인, 환경적 요인, 각종 독성 물질, 단백질 기능의 이상, 노화 등으로 추정하고 있으며, 최근많은 연구들에 의하여 활성 산소종(reactive oxygenspecies, ROS)의 생성 증가로 인한 산화적 스트레스(oxidative stress), 신경 염증(neuroinflammation),및 미토콘드리아 기능장애(mitochondrial dysfunction)등이 중요한 요인으로 알려졌다4). 치료제로 레보도파제제, 도파민 효능제, 항콜린성 약물, 콤트(COMT)효소 억제제, 마오비(MAO-B) 효소 억제제, 아만타딘(amantadine) 등이 있으나, 낮은 치료효과와 장기투여시 발생할 수 있는 내성 및 부작용으로 치료에제한점이 많은 실정이다.
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참고문헌 (36)

  1. Dauer W, Przedborski S. Parkinson's disease: mechanisms and models. Neuron 2003;39: 889-909. 

  2. de Lau LM, Breteler MM. Epidemiology of Parkinson's disease. Lancet Neurol. 2006;5:525-35. 

  3. Pringsheim T, Jette N, Frolkis A, Steeves TD. The prevalence of Parkinson′s disease: a systematic review and meta-analysis. Mov Disord. 2014;29:1583-90. 

  4. Calabrese V, Cornelius C, Mancuso C, Lentile R, Stella AM, Butterfield DA. Redox homeostasis and cellular stress response in aging and neurodegeneration. Methods Mol Biol. 2010; 610:285-308. 

  5. Yacoubian TA and Standaert DC. Targets for neuroprotection in Parkinson's disease. Biochim. Biophys. Acta. 2009;1792(7):676-87. 

  6. Przedborski S, Jackson-Lewis V, Djaldetti R, Liberatore G, Vila M, Vukosavic S, et al. The parkinsonian toxin MPTP: action and mechanism. Restor Neurol Neurosci. 2000;16:135-42. 

  7. Chuenkova MV, Pereira MA. PDNF, a human parasite-derived mimic of neurotrophic factors, prevents caspase activation, free radical formation, and death of dopaminergic cells exposed to the Parkinsonism inducing neurotoxin MPP+. Brain Res Mol Brain Res. 2003;119:50-61. 

  8. Jenner P. Oxidative stress in Parkinson's disease. Ann Neurol 2003; 53:S26-S38. 

  9. Ott M, Gogvadze V, Orrenius S, Zhivotovsky B. Mitochondria, oxidative stress and cell death. Apoptosis 2007;12:913-22. 

  10. Storch A, Ludolph AC, Schwarz J. Dopamine transporter: involvement in selective dopaminergic neurotoxicity and degeneration. J Neural Transm 2004;111:1267-86. 

  11. Lee CS, Kim YJ, Ko HH, Han ES. Modulation of 1-methyl-4-phenylpyridinium-induced mitochondrial dysfunction and cell death by KATP channel block. J Neural Transm 2007; 114:297-305. 

  12. Amor S, Puentes F, Baker D, van der Valk P. Inflammation in neurodegenerative diseases. Immunology. 2010;129:154-69. 

  13. Arimoto T, Bing G: Up-regulation of inducible nitric oxide synthase in the substantia nigra by lipopolysaccharide causes microglial activation and neurodegeneration. Neurobiol Dis 2003; 12:35-45. 

  14. F. Gonzalez-Scarano, G. Baltuch. Microglia as mediators of inflammatory and degenerative diseases. Annual Review of Neuroscience. 1999; 22:219-40. 

  15. Depino AM, Earl C, Kaczmarczyk E, Ferrari C, Besedovsky H, del Rey A, Pitossi FJ, Oertel WH: Microglial activation with atypical proinflammatory cytokine expression in a rat model of Parkinson's disease. Eur J Neurosci 2003; 18;2731-42. 

  16. Kyriakis JM, Avruch J. Mammalian mitogenactivated protein kinase signal transduction pathways activated by stress and inflammation. Physiol Rev. 2001;81(2):807-69. 

  17. Lee DS, Choi HG, Li B, Kim KS, Kim SA, Chon SK et al. Neuroprotective effect of the acid hydrolysis fraction of the roots of Polygala tenuifolia. Korean J Orient Physiol Pathol 2011;25(4):628-34. 

  18. Shin MK. Clinical Traditional Herbalogy. Seoul: Yeong Lim's Publisher. 2000:329-30, 383-4, 399-40, 411-2, 646-7. 

  19. Kim YH. Herbalogy. Seoul:Hanol Publisher 2014:76 

  20. Yang GH, Kim HW, Cho SJ, Kim SD, Yoon KH, Kim BY et al. Effects of Folium Perillae on cytokine productions in ischemic rats. Kor. J. Herbology. 2007;22(3):93-9. 

  21. Kim Y, Yang SY, Oh YS, Lee JW, Lee YK, Park YC. Research trends of Lonicera japonica over the last 10 year. J Daejeon Orient Med. 2010;19:17-23. 

  22. Xie HR, Hu LS, Li GY. SH-SY5Y human neuroblastoma cell line: in vitro cell model of dopaminergic neurons in Parkinson's disease. Chin Med J (Engl). 2010;123(8):1086-92. 

  23. Lee HJ, Noh YH, Lee DY, Kim YS, Kim KY, Chung YH et al. Baicalein attenuates 6-hydroxydopamine-induced neurotoxicity in SH-SY5Y cells. Eur J Cell Biol. 2005;84(11): 897-905. 

  24. Watabe M, Nakaki T. Rotenone induces apoptosis via activation of bad in human dopaminergic SH-SY5Y cells. J Pharmacol Exp Ther. 2004; 311(3):948-53. 

  25. Fall CP, Bennett JP Jr. Characterization and time course of MPP+ -induced apoptosis in human SH-SY5Y neuroblastoma cells. J Neurosci Res. 1999;55(5):620-8. 

  26. Martinou JC and Youle RJ. Mitochondria in apoptosis: Bcl-2 family members and mitochondrial dynamics. Dev Cell 2011;21:92-101. 

  27. Chai F, Truong-Tran AQ, Ho LH, Zalewski PD. Regulation of caspase activation and apoptosis by cellular zinc fluxes and zinc deprivation: A review. Immunol Cell Biol. 1999;77:272-8. 

  28. Song G, Ouyang G, Bao S. The activation of Akt/PKB signaling pathway and cell survival. J Cell Mol Med. 2005;9(1):59-71. 

  29. Chang L, Karin M. Mammalian MAP kinase signalling cascades. Nature 2001;410(6824): 37-40. 

  30. Jung YS, Jung HM, Seo UK. Neuroprotective effect of methanol extract of Phellodendri Cortex against 1-methyl-4-phenylpyridiniuminduced apoptosis in PC-12 cells. Korean J Orient Int Med. 2009;30(1):51-63. 

  31. Bae KR, Doo AR, Kim SN, Park JY, Park HJ, Lee HJ et al. Neuroprotective effects of bee venom, which removes high molecular elements against MPP+-induced human neuroblastoma SH-SY5Y cell death. Korean J Orient Int Med. 2010;31(2):66-75. 

  32. Woo C, You JY, Jang CY, Kim HR, Shin YJ, Moon AJ et al. Protective effects of Sosokmyoungtang against Parkinson's Model in human neuroblastoma SH-SY5Y cells. J Int Korean Med. 2014;35(3):298-308. 

  33. Baek SY, Lee NR, Kim DH, Gu A, Kim SY, Song DY et al. Protective effect of a novel herbmedicine, Hepad, on apoptosis of SH-SY5Y cells and a rat model of Parkinson's disease. Mol Cell Toxicol. 2015;11(2):223-30. 

  34. Chao CC, Hu S, Molitor TW, Shaskan EG, Peterson PK. Activated microglia mediate neuronal cell injury via a nitric oxide mechanism. J Immunol. 1992;149:2736-41. 

  35. Kalinski P. Regulation of immune responses by prostaglandin E2. J Immunol. 2012;188(1):21-8. 

  36. Turini ME, DuBois RN. Cyclooxygenase-2: a therapeutic target. Annu Rev Med. 2002;53:35-57. 

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