최소 단어 이상 선택하여야 합니다.
최대 10 단어까지만 선택 가능합니다.
다음과 같은 기능을 한번의 로그인으로 사용 할 수 있습니다.
NTIS 바로가기Journal of embryo transfer = 한국수정란이식학회지, v.32 no.3, 2017년, pp.221 - 226
신상민 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 박설화 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 손준규 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 조인철 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 성필남 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 김남영 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 우제훈 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 신문철 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소) , 박남건 (농촌진흥청 국립축산과학원 난지축산연구소)
Spermatozoa viability can be assessed by microscopy, flow cytometry, and other methods using fluorescent stain. Flow cytometry can be used to examine the morphological and functional characteristics of spermatozoa in a short time. The purpose of this study was to compare the viability of cryopreserv...
핵심어 | 질문 | 논문에서 추출한 답변 |
---|---|---|
인공수정에 사용되는 정자의 기능을 평가할 때 정자의 생존율이 중요한 지표로 이용되는데, 이를 평가하기 위한 방법에는 어떤 것들이 있는가? | 1984; Rastegarnia A 등, 2013). 정자의 생존율은 정자 기능 평가에서 중요한 지표이며 평가를 위한 방법으로는 eosin-nigrosin 염색법, hypo osmotic swelling test(HOST)의 현미경하 검사법과 6-carboxyfluorescein diacetate(6-CFDA), SYBR-14, Hoechst-33342, calcein acetomethyl ester(Calcein AM), propidium iodide(PI), ethidium homodimer-1(EthD-1), cyanine Yo-Pro 등의 형광물질을 사용하여 형광현미경 및 flow cytometry 검사법이 사용되고 있다(Bratosin D 등, 2005; Chan LL 등, 2012; Gordon KM 등, 2003; Jarnagin JL 등, 1980; Jones KH와 Senft JA, 1985). | |
인공수정에 주로 사용하는 정액의 형태는? | 인공수정은 유전자의 보급과 가축 유전자의 품질을 향상시키기 위한 가장 주요한 방법으로 주로 신선 정액과 동결정액의 두 가지 형태의 정액을 이용하며, 특히 동결정액의 경우 액체질소의 –196℃에서 보관시 시간과 거리의 제약이 없이 인공수정을 실시할 수 있다(Bolten M 등, 2005; Vishwanth R와 Shanonn P, 2000; 최 등, 2011). 동결정액은 냉각 속도, 동결 속도, 동결 방법 등에 따라 품질에 영향을 끼치며 정자 생체막의 손상으로 인한 생존율 감소가 발생된다(Mahadevan M와 Trouson AO. | |
동결정액의 품질에 영향을 미치는 요인은? | 인공수정은 유전자의 보급과 가축 유전자의 품질을 향상시키기 위한 가장 주요한 방법으로 주로 신선 정액과 동결정액의 두 가지 형태의 정액을 이용하며, 특히 동결정액의 경우 액체질소의 –196℃에서 보관시 시간과 거리의 제약이 없이 인공수정을 실시할 수 있다(Bolten M 등, 2005; Vishwanth R와 Shanonn P, 2000; 최 등, 2011). 동결정액은 냉각 속도, 동결 속도, 동결 방법 등에 따라 품질에 영향을 끼치며 정자 생체막의 손상으로 인한 생존율 감소가 발생된다(Mahadevan M와 Trouson AO. 1984; Rastegarnia A 등, 2013). |
Bolten M, Weissbach L, and Kaden R. 2005. Cryopreserved human sperm deposits: Usability after decades of storage. Urologe A. 44:904-908.
Bratosin D, Mitrofan L, Palii C, Estaquier J, and Montreuil J. 2005. Novel fluorescence assay using calcein-AM for the determination of human erythrocyte viability and aging. Cytometry A. 66A:78-84.
Breeuwer P, Drocourt JL, Bunschoten N, Zweitering MH, Rombouts FM, and Abee T. 1995. Charaterization of uptake and hydrolysis of fluorescein diacetate and carboxyfluorescein diacetate by intracellular esterase in Saccharomyces cerevisiae, which result in accumulation of fluorescent product. Appl. Environ. Microbiol. 61:1614-1619.
Chan LL. Wilkinson AR, Paradis BD, and Lai N. 2012. Rapid Image-based Cytometry for Comparison of Fluorescent Viability staining Methods. J. Fluoresc. 22:1301-1311.
Chitarra LG, Breeuwer P, Abee T, and Bulk RW. 2006. The Use of Fluorescent Probes to Assess Viability of the Plant Pathogenic Bacterium Clavigbacter michiganensis subsp. Michiganensis by Flow Cytometry. Fitopatol. Bras. 31:349-356.
Decker EM. 2001. The ability of direct fluorescence-based, two colour assays to detect different physiological states of oral streptococci. Lett. Appl. Microbiol. 33:188-192.
Diaper JR and Edwards C. 1994. The use of fluorogenic esters to detect viable bacteria by flow cytometry. J. Appl. Bacteriol. 77:221-228.
Gillan L, Evans G, and Maxwell WMC. 2005. Flow cytometric evaluation of sperm parameters in relation to fertility potential. Theriogenology 63:445-457.
Gledhill BL, Lake S, Steinmetz LL, Gray JW, Crwaford JR, Dean PN, and Van Dilla MA, 1976, Flow micro fluorometric analysis of sperm DNA content: Effect of cell shape on the fluorescence distribution. J. Cell Physiol. 87:367-375.
Graham JK. 2001. Assessment of sperm quality: A flow cytometric approach. Anim. Reprod. Sci. 68:239-247.
Gordon KM, Duckett L, Daul B, and Petrie HT. 2003. A simple method for detecting up to five immunofluorescent parameters together with DNA staining for cell cycle or viability on a benchtop flow cytometer. J. Immunol. Methods. 275:113-121.
Hernlem B and Hua SS. 2010. Dual fluorochrome Flow Cytometric Assessment of Yeast Viability. Curr. Microbiol. 61:57-63.
Jarnagin JL and Luchsinger DW. 1980. The use of fluorescein dacetate and ethidium bromide as a stain for evaluating viability of mycobacteria. Biotech. Histochem. 55:253-258.
Jones KH and Sanft JA. 1985. An improved method to determine cell viability by simultaneous staining with flulorescein diacetate-propidium iodide. J. Histochem. Cytochem. 33:77-79.
Kaneshiro ES, Wyder MA, Wu YP, and Cushion MT. 1993. Reliability of calcein acetoxy methyl ester and ethidium homodimer or propidium iodide for viability assessment of microbes. Journal of Microbiological Methods 17:1-16.
Leeder JS, Dosch HM, Harper PA, Lam P, and Spielberg SP. 1989. Fluorescence-based viability assay for studies of reactive drug intermediates. Anal. Biochem. 177:364-372.
Liminga G, Jonsson B, Nygren P, and Larsson R. 1999. On the mechanism underlying calcein-induced cytotoxicity. Eur. J. Pharmacol. 383:321-329.
Mahadevan M and Trounson AO. 1984. Effect of cooling, freezing and thawing rates and storage conditions on preservation of human spermatozoa. Andrologia 16:52-60.
Rastegarnia A, Shahverdi A, Topraggaleh TR, Ebrahimi B, and Shafipour V. 2013. Effect of Different Thawing Rates on Post-Thaw Viability, Kinematic Parameters and Chromatin Structure of Buffalo (Bubalus bubalis) Spermatozoa. Cell J. 14:306-313.
Tawakoli PN, Al-Ahmad A, Hoth-Hannig W, Hannig M, and Hannig C. 2013. Comparison of different live/dead stainings for detection and quantification of adherent microorganisms in the initial oral biofilm. Clin. Oral Invest. 17:841-850.
Vishwanath R and Shannon P. 2000. Storage of bovine semen in liquid and frozen state. Anim. Reprod. Sci. 62:23-53.
최선호, 고민희, 강태영, 조상래, 박용상, 오신애. 2011. 제주 흑우 동결 정액 제조에 있어 Glycerol 농도에 따른 생존율 및 정자 첨체 양상의 변화. 한국수정란이식학회지 26:187-193.
*원문 PDF 파일 및 링크정보가 존재하지 않을 경우 KISTI DDS 시스템에서 제공하는 원문복사서비스를 사용할 수 있습니다.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.