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TM-3 cell에서 eritadenine 함유 신령버섯균사체 액체배양물의 testosterone 생성 촉진효과
Enhancement of Testosterone in TM3 Leydig Cells by an Eritadenine-containing Agaricus blazei Mycelial Liquid Culture Extract 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.28 no.6 = no.218, 2018년, pp.648 - 655  

김영숙 ((주)HK바이오텍 항노화연구소) ,  정재은 ((주)HK바이오텍 항노화연구소) ,  정희정 (안전성평가연구소 경남환경독성본부 경남생명자원연구센터) ,  문연규 ((주)HK바이오텍 항노화연구소) ,  김정옥 ((주)HK바이오텍 항노화연구소) ,  하영래 ((주)HK바이오텍 항노화연구소)

초록
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신령버섯 액체배양추출물(Agaricus blazei mycelial liquid culture extract: ABMLCE)과 eritadenine (EA)의 mouse 정소 Leydig TM3 세포에서 testosterone (TS) 생성에 관한 연구를 정상 조건과 산화스트레스 조건에서 수행하였다. 정상 조건에서는 TM3 세포를 DMEM 배지에 배양하면서 EA (0~100 ppm)와 EA (0~50 ppm) + ABMLCE (10 ppm)를 24 hr처리하였다. 산화스트레스 조건에서는 TM3 세포를 $H_2O_2$ ($50{\mu}M$)를 4 hr 처리하고 정상 조건과 동일하게 처리하였다. DMEM 배양물에 함유된 TS 함량, HSD3B2 효소 활성, $5{\alpha}-R2$ 효소 활성과 NO 함량을 assay kit를 사용하여 측정하였다. EA는 정상 조건이나 산화스트레스 조건에서 TS 함량을 유의성 있게 증가시켰고, ABMLCE와 ABMLCE + EA도 TS의 함량을 증가시켰다. TS 전구체 생성에 관여하는 HSD3B2 효소 활성은 두 조건에서 모두 EA, ABMLCE, ABMLCE + EA에 의해서 증가되었다. 또한 TS를 DTH로 전환시켜 TS함량을 감소시키는 역할을 하는 $5{\alpha}-R2$ 효소활성은 정상 조건 및 산화스트레스 조건에서 ABMLCE에 의해서만 감소되었다. Free radical로 작용하는 NO의 함량은 두 조건 모두 EA, ABMLCE, ABMLCE + EA에 의해 감소되었다. 이 결과는 EA, ABMLCE, ABMLCE + EA 처리가 TM3 세포의 HSD3B2 효소 활성을 증가시키고, NO 생성을 억제하여 TS 함량을 증가시켰음을 의미하며 EA + ABMLCE 혼합물이 남성 성기능개선 물질로 사용될 수 있음을 의미한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Enhancement mechanistic actions of testosterone (TS) productions in mouse Leydig TM3 cells by the eritadenine (EA) and/or the Agaricus blazei mycelial liquid culture extract (ABMLCE). Productions of TS in TM3 cells were investigated in normal and oxidative-stressed culture conditions. In the normal ...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 갱년기 남성의 TS 함량을 감소시키는 원인 중 가장 큰 원인은 노화와 산화스트레스이다[6]. 따라서 H2O2를 처리하여 산화스트레스를 유발한 TM3 세포에 EA 및 EA + ABMLCE가TS 함량과 남성 성기능과 관련된 biochemical marker 개선효과가 있는지를 조사하였다. TM3 cell에 H2O2 (50 μM)를 4hr 처리한 후, EA (0, 10, 50, 100 ppm)와 EA (0, 5, 10, 50 ppm)+ ABMLCE (10 ppm)를 24 hr 처리하여 얻은 DMEM 배양물의 TS, HSD3B2, 5α-R2, NO를 측정하였다.
  • 정소의 Leydig 세포에서 TS의 함량을 증가시키기 위해서는 HSD3B2 효소 활성을 증가시켜야 한다[11]. 본 연구에서mouse 정소의 Leydig TM3 세포에 EA, ABMLCE 및 EA +ABMLCE 처리는 HSD3B2 효소활성을 증가시켰다.
  • 본 연구에서는 ABMLCE와 EA의 남성갱년기 증상인 성기능개선 효과를 mouse 정소 Leydig 세포인 TM3를 사용하여연구하였다. EA, ABMLCE 및 EA와 ABMLCE 혼합물(EA + ABMLCE)은 정상적 배양조건과 H2O2로 야기한 산화스트레스 배양조건의 TM3 세포에서 TS 생성을 증가시켰다.

가설 설정

  • 1)NO represents nitric oxide.
  • 5)SC represents Sham control meaning no treatment.
  • 6)NC represents the negative control treated with H2O2 only.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
EA의 장점은 무엇인가? AB 버섯균사체 액체배양 추출물(Agaricus blazei mycelial liquid culture extract: ABMLCE)은 성기능개선 효과가 있다는 사례가 있다. 이들 이차대사산물 중 EA는 지방간 및 혈중 콜레스테롤개선에도 효과가 있고[9, 14], angiotensin converting enzyme(ACE) 효소 활성을 저해하여 혈압을 정상화하는 효과[4]와 성기능개선 효과[5]가 있다고 보고되었다.
신령버섯의 특징은 무엇인가? 신령버섯(Agaricus blazei Murill: AB)은 β-glucan, eritadenine (EA) 등의 수많은 2차대사산물을 함유하고 있어, 항암성, 항산화성 등의 기능성이 뛰어나서 붙여진 이름이다[1]. AB 버섯균사체 액체배양 추출물(Agaricus blazei mycelial liquid culture extract: ABMLCE)은 성기능개선 효과가 있다는 사례가 있다.
EA + ABMLCE가 남성 갱년기 장애를 극복할 수 있는 소재로 활용될 수 있는 이유는 무엇인가? 남성갱년기 원인은 스트레스나 노화에 의해 정소의 Laydig세포에서 TS 생성이 감소되기 때문이다[13]. 본 연구에서mouse 정소의 Laydig 세포인 TM3 세포에 EA및 ABMLCE 처리로 TS 함량이 증가되었고, ABMLCE와 EA는 시너지효과가 있었다. 따라서 EA + ABMLCE는 남성 갱년기 장애를 극복할 수 있는 소재로 활용될 수 있을 것이다.
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참고문헌 (15)

  1. Afrin, S., Rakib, M. A., Kim, B. H., Kim, J. O. and Ha, Y. L. 2016. Eritadenine from edible mushrooms inhibits activity of angiotensin converting enzyme in vitro. J. Agric. Food Chem. 64, 2263-2268. 

  2. Bhasin, S., Cunningham, G. R., Hayes, F. J., Matsumoto, A. M., Snyder, P. J., Swerdloff, R. S. and Montori, V. M. 2006. Testosterone therapy in adult men with androgen deficiency syndromes: An endocrine society clinical practice guideline. J. Clin. Endocr. Metab. 91, 1995-2010. 

  3. Gruenewald, D. A. and Matsumoto, A. M. 2003. Testosterone supplementation therapy for older men: Potential benefits and risks. J. Am. Geriatr. Soc. 51, 101-115. 

  4. Moon, Y. K., Jung, J. E., Cho, B. I., Heo, J. D., Choi, J., Kim,. J. O. and Ha, Y. L. 2018. Blood pressure reduction of SHR treated with EA-containing Lentinus edodes mycelial solid culture extract. J. Life Sci. 28, 187-194. 

  5. Kim, J. O. 2018. Composition for stimulating testosterone comprising eritadenine as effective component. KR10-2018-0001201. 

  6. Lee, K. S., Seo, E. K. and Choe, S. Y. 2016. Effects of the mixture of fenugreek seeds and Lespedeza cuneata extracts on testosterone synthesis in TM3 cells oxidative stressed with $H_2O_2$ . J. Appl. Biol. Chem. 59, 305-311. 

  7. Muller, M., van der Schouw, Y. T., Thijssen, J. H. H. and Grobbee, D. E. 2003. Endogenous sex hormones and cardiovascular disease in men. J. Clin. Endocr. Metab. 88, 5076-5086. 

  8. Nieschlag, E., Swerdloff, R., Behre, H. M., Gooren, L. J., Kaufman, J. M., Legros, J. J., Lunenfeld, B., Morley, J. E., Schulman, C., Wang, C., Weidner, W. and Wu, F. C. W. 2006. Investigation, treatment, and monitoring of late-onset hypogonadism in males: ISA, ISSAM, and EAU recommendations. J. Androl. 27, 135-137. 

  9. Okumura, K., Matsumoto, K., Fukamizu, M., Yasuo, H. and Taguchi, Y. 1974. Synthesis and hypocholesterolemic activities of eritadenine derivatives. J. Med. Chem. 17, 846-855. 

  10. Park, S., Choi, H., Seo, J., Cho, S., Kim, J., Hong, S. W. and Park, C. 2016. Effect of dietary isoflavones of soybean by-product on estrogen and testosterone levels in mouse. Kor. J. Agric. Sci. 43, 742-749. 

  11. Rasmussen, M. K. and Ekstrand, B. 2014. Regulation of $3{\beta}$ -hydroxysteroid dehydrogenase and sulphotransferase 2A1 gene expression in primary porcine hepatocytes by selected sex-steroids and plant secondary metabolites from chicory (Cichorium intybus L.) and worm wood (Artemisia sp.). Gene 536, 53-58. 

  12. Sattler, F., Bhasin, S., He, J., Chou, C. P., Castaneda-Sceppa, C., Yarasheski, K., Binder, E., Schroeder, E. T., Kawakubo, M., Zhang, A., Roubenoff, R. and Azen, S. 2011. Testosterone threshold levels and lean tissue mass targets needed to enhance skeletal muscle strength and function: the HORMA trial. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 66, 122-129. 

  13. Wang, C., Hikim, A. S., Ferrini, M., Bonavera, J. J., Vernet, D., Leung, A., Lue, Y. H., Gonzalez-Cadavid, N. F. and Swerdloff, R. S. 2002. Male reproductive aging: using the brown Norway rat as a model for man. Novartis Found Symp. 242, 82-97. 

  14. Yang, H., Hwang, I., Kim, S., Hong, E. J. and Jeung, E. B. 2013. Lentinus edodes promotes fat removal in hypercholesterolemic mice. Exp. Ther. Med. 6, 1409-1413. 

  15. Zhang, Y., Ge, R. and Hardy, M. P. 2008. Androgen-forming stem Leydig cells: identification, function and therapeutic potential. Dis. Markers 24, 277-286. 

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