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다양한 배양 환경에 따른 국내 수집 외생균근성 Tricholoma속 종의 균사생장 특성
Mycelial Growth Properties of Domestically Collected Ectomycorrhizal Tricholoma Mushrooms in Various Culture Conditions 원문보기

한국균학회지 = The Korean journal of mycology, v.46 no.3, 2018년, pp.271 - 280  

강정아 (단국대학교 미생물학과) ,  가강현 (국립산림과학원 산림소득자원연구과) ,  김준영 (단국대학교 미생물학과) ,  김성환 (단국대학교 미생물학과)

초록
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외생균근성 버섯균인 송이(Tricholoma)속 균은 현재 인공 재배가 이루어지지 않고 있으며, 성공적인 자원이용을 위해서는 다양한 환경조건에서 균사생장 특성을 규명하는 연구가 선행되어야 한다. 이에 따라 본 연구는 야생버섯 자실체로부터 순수 분리한 4종의 Tricholoma bakamatsutake (가송이), T. fulvocastaneum (구실잣밤나무송이), T. matsutake (송이), T. terreum (땅송이)로부터 물리적, 화학적 환경조건에서 균사생장 특성을 조사하였다. 4종 모두 균사생장에 적합한 물리적 환경으로서 최적 배양 환경 조건은 온도가 $20{\sim}25^{\circ}C$, pH가 4~7, 암 배양 조건인 것을 확인하였다. T. matsutake는 $30^{\circ}C$에서 균사생장이 멈추는 매우 민감한 특성을 보였다. 균사생장에 미치는 화학적 요소 조사 결과, NaCl 농도조건에서 4종의 Tricholoma 모두 1.0% 농도수준 까지 생장이 가능하였다. T. matsutake는 2.0% 농도에서도 균사생장이 가능하였다. 중금속인 카드뮴(50 ppm 농도)과 농약인 emamectin benzoate이 첨가된 배지에서 네 가지 송이속 균의 균사생장이 가장 많이 저해된다는 것을 확인하였다. 중금속구리(Cu) 이온(50 ppm 농도)이 함유된 배지에서는 4종 송이속 균주 모두 균사생장이 거의 저해되지 않았다. T. matsutake는 emamectin benzoate 외에 다른 세 가지 살충제에 대해선 균사생장 억제가 거의 나타나지 않았다. 세포외효소는 T. bakamatsutake와 T. fulvocastaneum만 발색배지에서 Amylase, ${\beta}$-glucosidase 등의 효소활성을 보였다. 본 연구 결과는 4종 송이속 균주의 균사배양에 적합 또는 유해한 환경조건을 구분 할수 있어서 향후 응용 연구에 도움이 될 것으로 기대된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The ectomycorrhizal basidiomycete Tricholoma is one of mushroom groups that cannot be cultivated artificially. To use this mushroom as applicable resource for food production, it is necessary to obtain information about their mycelial growth properties in various environmental conditions. This study...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구는 국내에서 자생하고 식용 및 약용으로 사용되어 상업적으로 가치가 높은 외생균근성 버섯류의 자실체에서 분리한 균사체의 이용 가능성에 대한 정보를 얻고자 4종의 송이(Tricholoma)속 균주에 대해 다양한 환경(pH, 온도, 광, 염농도, 중금속, 살충제)에서 균사를 배양하여 생장 특성을 조사하였다.
  • 본 연구는 송이속 균주를 이용한 invitro 방법으로 최적 물리적 배양 환경 및 화학적 환경에 대한 내성을 조사함으로써, 다양한 생리 특성과 환경 요인에 따라 강력한 생장저해가 일어나 균사가 사멸하거나 활력을 잃을 수도 있다는 사실이 도출되었다. 따라서 이들 균류를 이용하여 인공배양 시 균사 배양에 유익 또는 유해한 환경조건을 구분 할 수 있어서 향후 배양 연구에 도움이 될 것으로 기대된다.
  • 외생균근성 버섯균인 송이(Tricholoma)속 균은 현재 인공 재배가 이루어지지 않고 있으며, 성공적인 자원이용을 위해서는 다양한 환경조건에서 균사생장 특성을 규명하는 연구가 선행되어야 한다. 이에 따라 본 연구는 야생버섯 자실체로부터 순수 분리한 4종의 Tricholoma bakamatsutake (가송이), T. fulvocastaneum (구실잣밤나무송이), T. matsutake (송이), T. terreum (땅송이)로부터 물리적, 화학적 환경조건에서 균사생장 특성을 조사하였다. 4종 모두 균사생장에 적합한 물리적 환경으로서 최적 배양 환경 조건은 온도가 20~25℃, pH가 4~7, 암 배양 조건인 것을 확인하였다.
  • , Hwaseong, Korea)에서 빛을 차단하지 않은 채 25℃와 1,300 lux의 광이 계속 유지되도록 배양하였다. 처리한 각 물리적 요인에 따른 최적 생장 환경을 확인한 후 그 결과를 활용하여 온도와 pH, 암조건 등을 화학적 요인에서의 생장 특성을 알기 위한 실험에 적용하였다. 화학적 환경 요인에 대한 조건 설정은 국내 산림 토양에 존재할 수 있는 것으로서 염분, 중금속, 그리고 농약을 대상으로 배지 조제 시 섞어주어 균사생장을 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
담자균문 중 국내 산림에서 발생하는 버섯에는 무엇이 있나? 식물과 공생하는 균류는 주로 담자균문, 자낭균문에 속하며 일부는 접합균문도 발견되고 있다[4]. 담자균문 중 국내 산림에서 발생하는 식용 혹은 약용 버섯으로 이용되는 송이(Tricholoma matsutake), 향버섯(Sarcodon aspratus) 등이 여기에 속하며, 이와 같은 버섯들은 여러 나라에서 중요한 임산물로 주목 받아오고 있다[5]. 
송이버섯의 자실체 발생을 유도 및 촉진하는 외부 환경인자에는 무엇이 있는가? 송이버섯에 대한 관심은 오래 전부터 있어 왔는데, 특히 아시아 지역에서는 인공배양의 필요성이 대두되어 동아시아 지역을 기점으로 연구가 활발하게 이루어져 왔다[5, 6]. 그리고 송이버섯의 자실체 발생을 유도, 촉진하는 외부 환경인자는 온도, 습도, 수분, 가스 조성, 광, 미생물의 작용, 화학물질 및 영양조건의 변화 등으로 알려져 있다[7]. 균의 자연 생식에 대한 지식의 이해는 송이버섯을 보호하고 소나무 숲 내 풍부도를 높이는 데 필수적이다[7].
고온에서도 생장이 가능한 버섯자원에 대한 자료가 필요한 이유는? 현재 우리나라는 지구온난화로 인하여 온대지방에서 아열대지방으로 기온이 점차 오르고 있는 추세이다. 그러므로 그에 맞게 고온에서도 생장이 가능한 버섯자원이 무엇인지 자료가 필요하다.
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참고문헌 (20)

  1. Ka KH, Jeon SM, Ryoo R, Bak WC, Kang JA, Kim MG, Jeon HS, Jeong YS. Basic culture characteristics of ectomycorrhizal mushrooms. Seoul: National Institute of Forest Science; 2014. 

  2. Smith SE, Read DJ. Mycorrhizal symbiosis. 3rd ed. San Diego: Academic Press; 2008. 

  3. Ishida TA, Nara K, Hogetsu T. Host effects on ectomycorrhizal fungal communities: insight from eight host species in mixed conifer-broadleaf forests. New Phytol 2007;174:430-40. 

  4. Watkinson SC, Boddy L, Money NP. The fungi. 3rd ed. San Diego: Academic Press; 2016. 

  5. Ka KH, Koo CD. Research questions for artificial cultivation of Tricholoma matsutake. Trends Agric Life Sci 2002;36:1-6. 

  6. Jeon SM, Ka KH. Morphological and cultural characteristics of ectomycorrhizal mushrooms. Seoul: National Institute of Forest Science; 2015. 

  7. Lian C, Narimatsu M, Nara K, Hogetsu T. Tricholoma matsutake in a natural Pinus densiflora forest: correspondence between above- and below-ground genets, association with multiple host trees and alteration of existing ectomycorrhizal communities. New Phytol 2006;171:825-36. 

  8. Kim SH, Uzunovic A, Breuil C. Rapid detection of Ophiostoma piceae and O. quercus in stained wood using PCR. Appl Environ Microbiol 1999;65;287-90. 

  9. Kwon HW, Yoon JH, Kim SH, Hong SB, Cheon Y, Ko SJ. Detection of extracellular enzyme activities in various Fusarium spp. Mycobiology 2007;35:162-5. 

  10. Koo NI, Kim YS, Im JH, Choi HT. Development of the monitoring, assessment and management technology for the study of the effect of acidification in forest soil. Seoul: National Institute of Forest Science; 2016. 

  11. Jhune CS, Sul HZ, Park JS, Kong WS, You YB, Chun SC. Effect of NaCl concentration on mycelial growth of Pleurotus ostreatus and Trichoderma spp. J Mushroom Sci Prod 2004;2:4-9. 

  12. Asati A, Pichhode M, Nikhil K. Effect of heavy metals on plants: an overview. IJAIEM 2016;5:56-66. 

  13. Colpaert JV, Vandenkoornhuyse P, Adriaensen K, Vangronsveld J. Genetic variation and heavy metal tolerance in the ectomycorrhizal basidiomycete Suillus luteus. New Phytol 2000;147:367-79. 

  14. Cejpkova J, Gryndler M, Hrselova H, Kotrba P, Randa Z, Synkova I, Borovicka J. Bioaccumulation of heavy metals, metalloids, and chlorine in ectomycorrhizae from smelter-polluted area. Environ Pollut 2016;218:176-85. 

  15. Ndimele CC, Ndimele PE, Chukwuka KS. Accumulation of heavy metals by wild mushrooms in Ibadan, Nigeria. J Health Pollut 2017;7:26-30. 

  16. Demirbas A. Accumulation of heavy metals in some edible mushrooms from Turkey. Food Chem 2000;68:415-9. 

  17. Walter M, Frampton CM, Boyd-Wilson KS, Harris-Virgin P, Waipara W. Agrichemical impact on growth and survival of non-target apple phyllosphere microorganisms. Can J Microbiol 2007;53:45-55. 

  18. Zhang B, Bai Z, Hoefel D, Tang L, Wang X, Li B, Li Z, Zhuang G. The impacts of cypermethrin pesticide application on the non-target microbial community of the pepper plant phyllosphere. Sci Total Environ 2009;407:1915-22. 

  19. Sanders P, Swan G. Emamectin benzoate. In: Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives, editors. Residue evaluation of certain veterinary drugs. Rome: Food and Agriculture Organization of the United Nations; 2014. p. 23-37. 

  20. Mistretta P, Durkin PR. Emamectin benzoate: human health and ecological risk assessment. Manlius: Syracuse Environmental Research Associates; 2010. 

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