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문제 정의
- 2 mg (NO2--N+NO3--N)/L의 질소손실 (탈질 반응에 의한 질소 제거) 이 발생하는 것으로 나타났으며, 운전 시간이 지속됨에 따라 손실된 질소농도는 5 mg/L 이하로 나타났다. 본 연구에서의 주 목적은 단일 반응조 내에서의 부분 아질산화 및 ANAMMOX반응을 동시에 구현하는 것이다. 따라서 ANAMMOX미생물과 기질 경쟁 관계인 있는 탈질 미생물의 활성은 ANAMMOX 미생물의 식종 전에 필수적으로 저해되어야만 한다.
- 본 연구에서는 부분 아질산화 반응과 ANAMMOX 반응을 단일 반응조에서 동시에 구현시키기 위하여 224 m3규모의 SBR pilot-plant를 활용하였으며, AOB(Ammonium Oxidizing Bacteria) 및 ANAMMOX 미생물의 식종미생물은 국내 하수처리장의 활성슬러지를 이용하여 배양하였다. 본 연구의 목적은 국내의 고도처리용 활성슬러지를 이용하여 현장에서 AOB 및 ANAMMOX 미생물을 배양하고, 이들 배양된 미생물을 24 m3 규모의 단일 아나목스 반응기에 식종하여 실제 반류수를 처리하였을 때 질소의 제거효율과 제거속도 등을 평가하였다.
제안 방법
- /O 공정 내 반송슬러지로부터 얻어졌고, 초기 식종된 슬러지의 농도는 5,533mgMLSS/L 이었다. ANAMMOX 미생물은 용존 산소에 대한 독성 영향이 크기 때문에 ANAMMOX 배양조는 밀폐형으로 설계되었고, 설치된 항온 장치에 의하여 반응기의 온도는 25~30℃로 유지되었다. 배양 초기 ANAMMOX 활성 여부에 따라 회분식 형태로 운전하였으며, 기질은 NaNO2, (NH4)2SO4시약을 통하여 공급하였다.
- 배양조 운전 초기 미생물 농도는 4,300 mgMLSS/L이었다. AOB 배양조에서 적용된 주요 운전 전략으로 아질산염을 추가적으로 산화시키는 NOB(Nitrite Oxidizing Bacteria) 활성을 억제시키기 위하여 반응조 내 용존 산소 농도는 산기 장치 on/off 시스템을 통하여 0.4~0.6 mg/L 범위로 유지하였고, 유입 암모늄의 과산화를 막기 위해 유출 pH (6.8~7.0)를 기준으로 산기 장치 on/off 시점은 자동으로 조절하였다.
- AOB의 비활성 속도(Specific Activity)는 specific oxygen utilization rate(SOUR) 실험을 통하여 측정되었으며, ANAMMOX 미생물의 비활성 속도는 SAA(Specific ANAMMOX Activity) 실험 방법을 통하여 측정되었다. 각각 미생물의 비활성 속도는 단일 반응조에서 부분 아질산화 및 ANAMMOX 반응이 동시에 구현된 이후 주기적으로 측정되었다.
- SAA는 회분식 실험을 통하여 조사하였으며, 275mL serum bottle에서 수행되었고, 실험에서 사용된 배지의 조성은 (NH4)2SO4 50 mgN/L, NaNO2 50 mgN/L, NaHCO3 504 mg/L, KH2PO4 27mg/L, MgSO4･7H2O 123mg/L, CaCl2･2H2O 176 mg/L이었으며 trace element solution Ⅰ, Ⅱ는 각각 1 mL/L 첨가하였다 (Van de Graafet al., 1996). 모든 실험은 shaking incubator(Vision, VS-8480)에서 150 rpm, 35 ± 1℃의 조건을 유지하며 수행되었다.
- SOUR 실험은 300 mL bottle에서 수행되었으며, 사용된 배지는 100 mg NH4+-N/L와 질산화를 위해 요구되는 충분한 알칼리도를 첨가한 합성 폐수로 제조하였고, pH는 7.5로 조절하였다. 약 5분 간격으로 NOB저해제인 NaN3 50μM과 AOB 저해제인 allylthiourea(ATU) 86 μM를 첨가함으로써 암모늄 및 아질산화 산화를 위해 요구되는 산소 소모 속도를 산정하였다(Rongsayamanont et al.
- AOB의 비활성 속도(Specific Activity)는 specific oxygen utilization rate(SOUR) 실험을 통하여 측정되었으며, ANAMMOX 미생물의 비활성 속도는 SAA(Specific ANAMMOX Activity) 실험 방법을 통하여 측정되었다. 각각 미생물의 비활성 속도는 단일 반응조에서 부분 아질산화 및 ANAMMOX 반응이 동시에 구현된 이후 주기적으로 측정되었다.
- 단일 반응조에서 ANAMMOX 미생물의 저해 인자인 용존 산소 농도와 아질산염의 농도는 각각 0.6 mg/L,50 mg/L이하로 제한하였고, 이를 위해 유입수 분할 주입 전략을 적용하였다. 유입수 분할 주입 횟수는 유입암모늄 평균 농도 837.
- 모든 시료는 각 반응기의 유입수와 유출수를 채취하여 0.45 ㎛의 공극을 가진 cellulose acetate 재질의membrane filter를 이용하여 여과한 후 대상물질을 분석하였다. NO2--N, alkalinity, chemical oxygen demand(COD)는 standard methods(APHA, 2005)에 따라 분석을 실시하였다.
- ANAMMOX 미생물은 용존 산소에 대한 독성 영향이 크기 때문에 ANAMMOX 배양조는 밀폐형으로 설계되었고, 설치된 항온 장치에 의하여 반응기의 온도는 25~30℃로 유지되었다. 배양 초기 ANAMMOX 활성 여부에 따라 회분식 형태로 운전하였으며, 기질은 NaNO2, (NH4)2SO4시약을 통하여 공급하였다. 이때 반응조 내 잔류하는 아질산염의 농도는 ANAMMOX 독성 영향을 고려하여 50 mg/L 이하로 엄격히 제한되었다.
- 2). 안정적인 부분 아질산화 반응 달성 이후, ANAMMOX균을식종 하기 위한 시기는 Fig. 2에 나타낸 바와 같이 질소손실 수준을 기준으로 선정하였다. 부분 아질산화 반응을 위해 요구되는 용존 산소 농도 범위는 탈질 미생물이 활성을 나타낼 수 있는 범위로 유지된다.
- 약 5분 간격으로 NOB저해제인 NaN3 50μM과 AOB 저해제인 allylthiourea(ATU) 86 μM를 첨가함으로써 암모늄 및 아질산화 산화를 위해 요구되는 산소 소모 속도를 산정하였다(Rongsayamanont et al., 2010).
- 식종 직후 기존 SBR공법을 근간으로 유입수 분할 주입 전략을 활용하여 24m3규모의 단일 반응조에서 부분 아질산화 및ANAMMOX 반응은 순차적으로 구현되었다. 유입수 분할 주입 횟수는 유입 암모늄 농도에 따라 2~3회로조절되었으며, 유입 분할 주입과 함께 반복적으로 혐기조건과 호기조건을 제공하였다. 반응조 내 기질 소모속도 및 슬러지 침강성에 따라 수리학적 체류시간이(Hydraulic Retention Time, HRT) 조절되었다.
- 이때 반응조 내 잔류하는 아질산염의 농도는 ANAMMOX 독성 영향을 고려하여 50 mg/L 이하로 엄격히 제한되었다. 이후 ANAMMOX 활성도 발현 이후 배양조는 반류수 전처리 단계인 부분 아질산화 반응의 안정화와 함께 연속식으로 전환되었으며, ANAMMOX 활성은 질소 제거 속도를 기준으로 평가하였다. ANAMMOX 미생물의 현장배양 후 단일 반응조 내 식종까지 약 5개월의 배양시간이 소요되었다.
- 하수처리장의 활성 슬러지를 식종미생물로 투입하여 AOB 및 ANAMMOX 미생물은 배양되었으며, 배양된 미생물을 24 m3 규모의 단일 ANAMMOX 플랜트에 식종하여 실제 반류수 대상 질소 제거능은 평가되었다.
대상 데이터
- 12 m3 규모의 ANAMMOX 배양조에 식종된 슬러지는 대구시 S 하수처리장 A2/O 공정 내 반송슬러지로부터 얻어졌고, 초기 식종된 슬러지의 농도는 5,533mgMLSS/L 이었다. ANAMMOX 미생물은 용존 산소에 대한 독성 영향이 크기 때문에 ANAMMOX 배양조는 밀폐형으로 설계되었고, 설치된 항온 장치에 의하여 반응기의 온도는 25~30℃로 유지되었다.
- AOB 미생물을 이용한 부분 아질산화 반응은 24 m3 규모의 SBR에서 수행되었으며, 식종슬러지는 대구시 S 하수처리장내 A2/O 공법의 반송 슬러지로부터 채취되었다.
- 국내 상용화 실적이 거의 없는 상황에서 ANAMMOX 식종 슬러지 확보는 공정 상용화 과정에서 가장 큰 과제가 될 것이다. 본 연구에서는 부분 아질산화 반응과 ANAMMOX 반응을 단일 반응조에서 동시에 구현시키기 위하여 224 m3규모의 SBR pilot-plant를 활용하였으며, AOB(Ammonium Oxidizing Bacteria) 및 ANAMMOX 미생물의 식종미생물은 국내 하수처리장의 활성슬러지를 이용하여 배양하였다. 본 연구의 목적은 국내의 고도처리용 활성슬러지를 이용하여 현장에서 AOB 및 ANAMMOX 미생물을 배양하고, 이들 배양된 미생물을 24 m3 규모의 단일 아나목스 반응기에 식종하여 실제 반류수를 처리하였을 때 질소의 제거효율과 제거속도 등을 평가하였다.
이론/모형
- 그리고 NO3--N은 이온크로마토그래피(ICS2100, DIONEX)를, NH4+-N은 질소분석기(2200Kjeltec Auto Distillation, FOSS TECATORS)를 이용하여 분석을 진행하였다. pH와 temperature는 Horiba pHmeter F-51을 이용하여 측정하였고, biological oxygen demand(BOD), suspended solid(SS)는 수질오염 공정시험방법에 따라 분석을 실시하였다.
성능/효과
- 9). ANAMMOX 미생물은 입상화로 인하여 입자 크기가200 ㎛일 경우 활성도가 가장 높은 것으로 조사되었으며, AOB 미생물의 경우에는 100~200 ㎛ 범위의 입자 크기에서 활성이 가장 높은 것으로 조사되었다.200 ㎛이상의 입자 크기에서 AOB 미생물의 활성이 나타나는 이유는 ANAMMOX와 AOB가 단일 반응조에서 배양될 경우 ANAMMOX 입상슬러지 외곽에 AOB 층이 형성되는 것으로 설명 될 수 있다 (Vlaeminck et al.
- 이후 ANAMMOX 활성도 발현 이후 배양조는 반류수 전처리 단계인 부분 아질산화 반응의 안정화와 함께 연속식으로 전환되었으며, ANAMMOX 활성은 질소 제거 속도를 기준으로 평가하였다. ANAMMOX 미생물의 현장배양 후 단일 반응조 내 식종까지 약 5개월의 배양시간이 소요되었다.
- 12 kg/m3/d인 반면, 시간이 지남에 따라 ANAMMOX 미생물의 활성도는 점차 증가하는 것으로 나타났다.ANAMMOX 배양조의 연속식 운전은 76일 동안 지속되었고, 단일 반응 시스템에서 AOB와 혼합 배양되는 시점에 달성한 최대 질소 제거 속도는 0.66 kg/m3/d를 나타내었다.
- 반면, AOB미생물의 활성은 ANAMMOX 미생물에 비해 비교적 일정하였다. AOB대비 증가된 ANAMMOX미생물의 활성도는 SBR cycle에서의 호기 구간/무산소 구간 비에 영향을 미치는 것으로 나타났다. 운전 초기호기/무산소 비는 1.
- 운전 44일 이후 활성 슬러지의 추가 식종을 통하여 반응조 내 MLSS농도는 증가 되었으며, 그 근거는 다음과 같다. AOB와 ANAMMOX가 혼합 배양된 반응조에서의 목표 설계 인자가 유입 암모늄 질소 농도 700 mg/L에서HRT는 1 days인 점을 고려할 때, 운전 44일에 측정된 SAA결과 0.15 g/gMLSS/d는 다소 낮은 것으로 판단되어(SAA결과를 바탕으로 산정된 적정 MLVSS 농도는 4,667 mg/L)활성 슬러지는 추가로 식종되었다. 추가 식종 이후 미생물농도의 감소 경향은 배양조 운전 초기 경향과 유사한 것으로 나타내었으며, 운전 75일 이후 ANAMMOX 배양조에서의 MLSS 농도는 4,210 mg/L 이었다.
- ,2010). Table 2에 나타낸 바와 같이 시간이 지남에ANAMMOX 미생물의 비활성 속도는 급격하게 증가하는 것으로 나타났다(NOB 활성은 상기 제시된 운전전략을 통하여 운전 기간 동안 효과적으로 저해되는 것으로 나타났음). 이처럼 200 ㎛이상의 입자 크기를 가진 ANAMMOX 입자는 AOB와 이중 구조를 형성함으로써, 호기 조건이 간헐적으로 형성되는 단일 반응조 시스템 내에서 효과적으로 순응한 것으로 판단된다.
- 15로 조사되었다. 기존 질산화 및 탈질화로 구성된 질소 제거 공법에서 요구되는 적정 C/N비가 3~6인 점을 고려할 때 본 연구에서 적용 대상 폐수의 C/N비는 매우 낮은 것으로 평가되었다. 이와 함께 유입 암모늄의 부분 아질산화 반응을 위해서는 유입 HCO3-/NH4+-N의몰 비가 매우 중요하다 (이론적으로 AOB에 의해 1mole의 NH4+-N산화시 2 mole의 HCO3-를 요구함).
- 국내 ANAMMOX 미생물을 이용한 연구뿐만 아니라 공정 상용화 과정이 선진국보다 더딘 이유는ANAMMOX 식종 미생물의 확보에 어려움이 있었기 때문이다. 따라서 본 연구 결과는 ANAMMOX 식종슬러지 부족문제를 해결함으로써 파일럿 규모의 공정을 성공적으로 운영한 국내 첫 사례라는 점에서 그 의미가 있으며, 이는 공정의 상용화 과정에서 큰 이점으로 작용될 수 있을 것으로 판단된다.
- 따라서 ANAMMOX미생물과 기질 경쟁 관계인 있는 탈질 미생물의 활성은 ANAMMOX 미생물의 식종 전에 필수적으로 저해되어야만 한다. 따라서 손실된 질소 농도는 배양된 AOB 미생물에 ANAMMOX균을 혼합 배양하기 위한 주요 인자로 고려되었으며, 배양된 AOB와 ANAMMOX를 혼합 배양 하는 시점은 손실된 질소 농도가 5 mg/L 이하로 감소한 시점으로 판단하였다.
- , 1997). 따라서, 혐기성 반응조 내 암모늄 농도의 감소는 아질산염에 대한 기질 경쟁에서 탈질 미생물보다 ANAMMOX 미생물이 우위에 있음을 나타내는 지표로 평가되었다.
- 미생물 입자 크기 별 활성 및 분포 현황을 조사하기 위하여, 100 ㎛, 200 ㎛를 기준으로 미생물 입자 크기는 세 종류로 분류되었으며, 100 ㎛보다 입자 크기가작은 미생물부터 200 ㎛보다 입자 크기가 큰 미생물의비율은 각각 43.3, 30.7, 25.9%를 나타내었다 (Fig. 8). 이와 함께 입자 크기에 따른 ANAMMOX와 AOB 미생물의활성 분포는 뚜렷한 차이점을 나타내었다 (Fig.
- 이처럼 200 ㎛이상의 입자 크기를 가진 ANAMMOX 입자는 AOB와 이중 구조를 형성함으로써, 호기 조건이 간헐적으로 형성되는 단일 반응조 시스템 내에서 효과적으로 순응한 것으로 판단된다. 반면, AOB미생물의 활성은 ANAMMOX 미생물에 비해 비교적 일정하였다. AOB대비 증가된 ANAMMOX미생물의 활성도는 SBR cycle에서의 호기 구간/무산소 구간 비에 영향을 미치는 것으로 나타났다.
- 유입수 분할 주입 횟수는 유입 암모늄 농도에 따라 2~3회로조절되었으며, 유입 분할 주입과 함께 반복적으로 혐기조건과 호기조건을 제공하였다. 반응조 내 기질 소모속도 및 슬러지 침강성에 따라 수리학적 체류시간이(Hydraulic Retention Time, HRT) 조절되었다. 유입수 분할 주입 전략에 대한 보다 상세한 정보는 사전에 수행된 연구 결과를 참고 하였다 (Choi et al.
- 5). 배양 결과 운전 초기 나타난 질소 제거 속도는0.12 kg/m3/d인 반면, 시간이 지남에 따라 ANAMMOX 미생물의 활성도는 점차 증가하는 것으로 나타났다.ANAMMOX 배양조의 연속식 운전은 76일 동안 지속되었고, 단일 반응 시스템에서 AOB와 혼합 배양되는 시점에 달성한 최대 질소 제거 속도는 0.
- , 2010). 본 연구에서 이러한 AOB와 NOB의 기질 저해 특성 및 동역학 특성에 적합한 운전전략을 구성함으로써 운전 35일 만에 안정적인 부분 아질산화 반응은 달성되었다 (유출수 NO2--N/(NO2--N+NO3--N 비 = 0.94, 유출수 NO2--N/NH4+-N 비 = 1.2). 안정적인 부분 아질산화 반응 달성 이후, ANAMMOX균을식종 하기 위한 시기는 Fig.
- , 2002). 본 연구에서 적용된 단일 반응 시스템에서는 운전 초기 SVI는73.9 mL/gMLSS으로 나타났으며, 운전 59일 이후 SVI값은 53.9 mL/gMLSS으로 나타나 침강성이 매우 우수한 것으로 판단된다.
- , 2010). 본 연구에서는 막 분리 장치 또는 담체를 활용하지 않고도 기존 SBR 공법대비 높은 슬러지 농도를 효과적으로 유지할 수 있었다. 이러한 결과는 미생물침강성 차이에 기인하는 것으로 조사되었는데, Fig.
- 1%로 나타났다. 수리학적 체류시간은 부분 아질산화 및 ANAMMOX반응에 의한 기질 소모 속도를 기준으로 77hr에서 34.1hr로 조절하였다. 연속 운전 시간이 지남에 따라 질소 제거 속도는 점차 증가되었으며, 달성한 최대 질소 제거 속도는 유입 질소 부하 0.
- 규모의 단일 ANAMMOX반응기로 식종 되었으며, 식종 된 AOB와 ANAMMOX미생물의 비율은 1:1 이었다. 식종 직후 기존 SBR공법을 근간으로 유입수 분할 주입 전략을 활용하여 24m3규모의 단일 반응조에서 부분 아질산화 및ANAMMOX 반응은 순차적으로 구현되었다. 유입수 분할 주입 횟수는 유입 암모늄 농도에 따라 2~3회로조절되었으며, 유입 분할 주입과 함께 반복적으로 혐기조건과 호기조건을 제공하였다.
- 안정적인 부분 아질산화 반응 달성 이후, 연속 배양된ANAMMOX 미생물은 24 m3규모의 단일 ANAMMOX반응기로 식종 되었으며, 식종 된 AOB와 ANAMMOX미생물의 비율은 1:1 이었다. 식종 직후 기존 SBR공법을 근간으로 유입수 분할 주입 전략을 활용하여 24m3규모의 단일 반응조에서 부분 아질산화 및ANAMMOX 반응은 순차적으로 구현되었다.
- 1hr로 조절하였다. 연속 운전 시간이 지남에 따라 질소 제거 속도는 점차 증가되었으며, 달성한 최대 질소 제거 속도는 유입 질소 부하 0.56 kgN/m3/d에서 0.49 kgN/m3/d으로 나타났다. 총 질소 제거 효율은 87.
- 01 kg N/m3/d 이었다. 운전 시간이 지속됨에 따라 반응조 내 NPR은 점차적으로 증가하였으며, 배양 종료 시점에 산정된 ACR과 NPR은 각각 0.23, 0.22 kg N/m3/d로 나타나 안정적인 부분 아질산화 반응은 달성되었다.
- 운전 초기 반응조 내 잔류하는 암모늄 농도는 운전9일 만에 100 mg/L 이하로 감소되어 질소 제거 효율은 빠르게 증가하는 것으로 나타났다. 유입 질소 부하0.
- 4에 나타내었다. 운전 초기 식종된 미생물 농도는 5,533 mg/L이었으며, 시간이 지남에 따라 MLSS 농도는 점차 감소하는 것으로 나타났다. 이후 반응조 내 암모늄농도 증가율 감소와 함께 MLSS농도는 큰 변화를 나타내지 않았다.
- AOB대비 증가된 ANAMMOX미생물의 활성도는 SBR cycle에서의 호기 구간/무산소 구간 비에 영향을 미치는 것으로 나타났다. 운전 초기호기/무산소 비는 1.6이었으나 ANAMMOX 활성이 증가된 운전 65일 이후 그 비는 2.0으로 증가되었다.
- 7 mg/L 이었다. 유입 유기물 농도는 매우 낮은 것으로 나타나, 유입TCODCr/NH+-N 및 BOD5/NH4+-N비는 각각 0.41, 0.15로 조사되었다. 기존 질산화 및 탈질화로 구성된 질소 제거 공법에서 요구되는 적정 C/N비가 3~6인 점을 고려할 때 본 연구에서 적용 대상 폐수의 C/N비는 매우 낮은 것으로 평가되었다.
- 운전 초기 반응조 내 잔류하는 암모늄 농도는 운전9일 만에 100 mg/L 이하로 감소되어 질소 제거 효율은 빠르게 증가하는 것으로 나타났다. 유입 질소 부하0.32 kg/m3/d에서 총 질소 제거 속도는 0.27 kg/m3/d로달성되었으며, 질소 제거 효율은 84.1%로 나타났다. 수리학적 체류시간은 부분 아질산화 및 ANAMMOX반응에 의한 기질 소모 속도를 기준으로 77hr에서 34.
- 부분 아질산화 반응을 위해 요구되는 용존 산소 농도 범위는 탈질 미생물이 활성을 나타낼 수 있는 범위로 유지된다. 이에 따라 운전 초기 생성된 아질산염 또는 질산염은 긴HRT으로 인하여 248.2 mg (NO2--N+NO3--N)/L의 질소손실 (탈질 반응에 의한 질소 제거) 이 발생하는 것으로 나타났으며, 운전 시간이 지속됨에 따라 손실된 질소농도는 5 mg/L 이하로 나타났다. 본 연구에서의 주 목적은 단일 반응조 내에서의 부분 아질산화 및 ANAMMOX반응을 동시에 구현하는 것이다.
- 8). 이와 함께 입자 크기에 따른 ANAMMOX와 AOB 미생물의활성 분포는 뚜렷한 차이점을 나타내었다 (Fig. 9). ANAMMOX 미생물은 입상화로 인하여 입자 크기가200 ㎛일 경우 활성도가 가장 높은 것으로 조사되었으며, AOB 미생물의 경우에는 100~200 ㎛ 범위의 입자 크기에서 활성이 가장 높은 것으로 조사되었다.
- Table 2에 나타낸 바와 같이 시간이 지남에ANAMMOX 미생물의 비활성 속도는 급격하게 증가하는 것으로 나타났다(NOB 활성은 상기 제시된 운전전략을 통하여 운전 기간 동안 효과적으로 저해되는 것으로 나타났음). 이처럼 200 ㎛이상의 입자 크기를 가진 ANAMMOX 입자는 AOB와 이중 구조를 형성함으로써, 호기 조건이 간헐적으로 형성되는 단일 반응조 시스템 내에서 효과적으로 순응한 것으로 판단된다. 반면, AOB미생물의 활성은 ANAMMOX 미생물에 비해 비교적 일정하였다.
- 총 질소 제거 효율은 87.0 ± 2.7%을 나타내었으며 운전기간 내내 안정적인 질소 제거능을 나타내었다.
- 15 g/gMLSS/d는 다소 낮은 것으로 판단되어(SAA결과를 바탕으로 산정된 적정 MLVSS 농도는 4,667 mg/L)활성 슬러지는 추가로 식종되었다. 추가 식종 이후 미생물농도의 감소 경향은 배양조 운전 초기 경향과 유사한 것으로 나타내었으며, 운전 75일 이후 ANAMMOX 배양조에서의 MLSS 농도는 4,210 mg/L 이었다.
- 활성 슬러지 내 ANAMMOX 미생물의 우점 정도에 따라 회분식 및 연속 배양 방식은 순차적으로 적용되었으며, 총 배양기간 153일 만에 질소 제거 속도 0.66kg/m3/d은 달성되었다. AOB 미생물의 경우에는 NOB활성을 효과적으로 저해시킴에 따라 배양 36일 만에 아질산염 전환율 0.
- 활성 슬러지를 이용하여 AOB 및 ANAMMOX 미생물은 배양되었으며, 이를 이용하여 외부에서 공급되는 식종 슬러지 없이 고농도 질소를 함유하고 있는 반류수는 효과적으로 처리되었다. 본 연구를 통하여 국내 AOB 및 ANAMMOX 식종 슬러지 부족 문제를 해결할 수 있을 것으로 판단되며, 실 공정 규모에도 적용 가능할 것으로 판단된다.
- 효과적으로 배양된 AOB 및 ANAMMOX 이용하여 단일 반응 시스템을 구성할 경우 시운전 기간이 매우 짧은 것으로 나타났으며, 운전 9일 만에 기존 질소 제거 공법의 설계인자로써 많이 활용되고 있는 0.2 kgN/m3/d에 비해 높은 질소 제거 속도를 나타내었다.
후속연구
- , 2007). 따라서, 초기운전 단계에서 충분한 양의 ANAMMOX 미생물을 확보하는 것은 공정 상용화 시 필수적인 요건이 될 수 있을 것이다.
- 활성 슬러지를 이용하여 AOB 및 ANAMMOX 미생물은 배양되었으며, 이를 이용하여 외부에서 공급되는 식종 슬러지 없이 고농도 질소를 함유하고 있는 반류수는 효과적으로 처리되었다. 본 연구를 통하여 국내 AOB 및 ANAMMOX 식종 슬러지 부족 문제를 해결할 수 있을 것으로 판단되며, 실 공정 규모에도 적용 가능할 것으로 판단된다.
- 본 연구에서 제시된 활성 슬러지로부터 ANAMMOX미생물 배양 protocol은 ANAMMOX 식종 슬러지가 거의 없는 국내 현황을 고려할 때 공정 상용화를 위해 매우 효과적으로 이용 될 수 있을 것으로 판단된다.
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