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[국내논문] 낙동강 수계에서 분리한 녹조류 2종의 질소와 인의 결핍에 따른 생장 및 지방산 변화 연구
Effects of Nitrogen and Phosphorus Starvation on Growth and Fatty Acid Production in Newly Isolated Two Freshwater Green Microalgae from Nakdonggang River 원문보기

한국해양바이오학회지 = Journal of marine bioscience and biotechnology, v.11 no.2, 2019년, pp.81 - 88  

임경준 (국립낙동강생물자원관 미생물연구실) ,  박한울 (인하대학교 해양과학.생물공학과) ,  이창수 (국립낙동강생물자원관 미생물연구실) ,  조복연 (국립낙동강생물자원관 산업화지원실) ,  남승원 (국립낙동강생물자원관 미생물연구실) ,  이철균 (인하대학교 해양과학.생물공학과) ,  김지훈 (국립낙동강생물자원관 미생물연구실)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, effects of nitrogen (N) and phosphorus (P) starvation on the cell growth and fatty acid (FA) production of newly isolated freshwater microalgae were investigated. The microalgae were identified as Chlorella sp. and Parachlorella sp. through 18S rRNA sequencing. Optimal culture tempera...

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문제 정의

  • 와 Parachlorella sp.를 이용하여 질소와 인의 결핍조건에서 생장, 지방산의 함량과 생산성에 미치는 연구를 진행하고자 하였다. 이를 통해 효과적인 스트레스 인자를 선별하여 고지질 미세조류 생산에 적용하고자 한다.
  • 를 이용하여 질소와 인의 결핍조건에서 생장, 지방산의 함량과 생산성에 미치는 연구를 진행하고자 하였다. 이를 통해 효과적인 스트레스 인자를 선별하여 고지질 미세조류 생산에 적용하고자 한다.
  • 질소, 인, 광원 등 단일 스트레스 인자에 대한 미세조류의 생장과 지방산 생산 연구는 많이 진행되어 있는데 반해, 복합적인 스트레스를 통한 미세조류의 생장과 지방산의 변화 연구는 미비하다. 본 연구에서는 낙동강 상주보에서 녹조류 2종을 분리·동정하였으며, 분리한 2종의 배지 내 질소 또는 인의 단일과 복합결핍 조건에 따른 생장과 지방산의 변화에 대해 분석하고자하였다. 연구 결과로부터 Chlorella sp.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
미세조류란? 미세조류는 수서환경에서 이산화탄소, 물, 무기영양염 및 태양에너지를 이용하여 생장을 하며, 무기탄소를 흡수 및 고정할 수 있는 광합성 미생물이다. 지구 생태계의 1차 생산자이며, 전체 생산의 약 절반을 담당하고 있다.
최근 대기 중 이산화탄소 농도가 증가한 주된 원인은? 최근 들어 급격하게 상승한 대기 중 이산화탄소 농도는 인류와 생태계에 심각한 위협이 되고 있다. 이러한 이산화탄소 농도는 대부분이 화석연료의 과도한 사용에 기인한 것이다. 이와 동시에 현대 산업사회를 떠받히는 화석연료의 감소로 인해 이를 대체할 미래의 에너지원에 대한 연구가 활발히 진행되고 있다.
산업적으로 미세조류가 가지고있는 장점은? 육상식물보다 빠른 광합성작용을 통해 지구 탄소 순환에 중요한 역할을 하여 지구 대기환경에 큰 영향을 미친다고 알려져 있다[1,2]. 산업적으로 불포화 지방산, 단백질, 색소 등과같은 고부가가치 생리활성물질 생산과 대량배양이 용이하다는 장점을 통해 바이오에너지, 건강보조식품, 화장품, 식약품 등으로 활용 가치가 더욱 높아지고 집중적인 연구가 활발히 진행 중에 있다[3-5].
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참고문헌 (19)

  1. Benemann, J. R. 1997. $CO_2$ mitigation with microalgae systems. Energ. Convers. Manage. 38, S475-S479. 

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  3. Borowitzka, M. A. 2013. High-value products from microalgae-their development and commercialisation. J. Appl. Phycol. 25, 743-756. 

  4. Joshi, S., R. Kumari and V. N. Upasani. 2018. Applications of algae in cosmetics: An overview. Int. J. Innov. Res. Sci. Eng. Technol. 7, 1269-1278. 

  5. Kim, Z.-H., H. Park, Y.-J. Ryu, D.-W. Shin, S.-J. Hong, H.-L. Tran, S.-M. Lim, and C.-G. Lee. 2015 Algal biomass and biodiesel production by utilizing the nutrients dissolved in seawater using semi-permeable membrane photobioreactors. J. Appl. Phycol. 27, 1763-1773. 

  6. Baicha, Z., M.J. Salar-Garcia, V.M. Ortiz-Martinez, F.J. Hernandez-Fernandez, A.P. De los Rios, N. Labjar, E. Lotfi and M. Elmahi. 2016. A critical review on microalgae as an alternative source for bioenergy production: A promising low cost substrate for microbial fuel cells. Fuel Process. Technol. 154, 104-116. 

  7. Park, H., and C. -G. Lee. 2016. Theoretical calculations on the feasibility of microalgal biofuels: utilization of marine resources could help realizing the potential of microalgae. Biotechnol. J. 11, 1461-1470. 

  8. Duong, V. T., F. Ahmed, S. R. Thomas-Hall, S. Quigley, E. Nowak, and P. M. Schenk, 2015. High protein-and high lipid-producing microalgae from northern Australia as potential feedstock for animal feed and biodiesel. Front. Bioeng. Biotechnol. 3, 53. 

  9. Solovchenko, A., I. Khozin-Goldberg, S. Didi-Cohen, Z. Cohen, and M. Merzlyak. 2008. Effects of light intensity and nitrogen starvation on growth, total fatty acids and arachidonic acid in the green microalga Parietochloris incisa. J. Appl. Phycol. 20, 245-251. 

  10. Kim, Z.-H, Lee, H.-S. and C.-G. Lee. 2009. Red and Blue Photons Can Enhance the Production of Astaxanthin from Haematococcus pluvialis. Algae 24, 121-127. 

  11. Benvenuti, G., R. Bosma, M. Cuaresma, M. Janssen, M. J. Barbosa, and R.H. Wijffels. 2015. Selecting microalgae with high lipid productivity and photosynthetic activity under nitrogen starvation. J. Appl. Phycol. 27, 1425-1431. 

  12. Takeshita, T., S. Ota, T. Yamazaki, A. Hirata, V. Zachleder, and S. Kawano. 2014. Starch and lipid accumulation in eight strains of six Chlorella species under comparatively high light intensity and aeration culture conditions. Bioresour. Technol. 158, 127-134. 

  13. Ruangsomboon, S., M. Ganmanee, and S. Choochote. 2013. Effects of different nitrogen, phosphorus, and iron concentrations and salinity on lipid production in newly isolated strain of the tropical green microalga, Scenedesmus dimorphus KMITL. J. Appl. Phycol. 25, 867-874. 

  14. Tamura, K., G. Stecher, D. Peterson, A. Filipski, and S. Kumar. 2013. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Mol. Biol. Evol. 30, 2725-2729. 

  15. Heo, J., Cho, D.-H., R. Ramanan, Oh, H.-M., and Kim, H.-S. 2015. PhotoBiobox: A tablet sized, low-cost, high throughput photobioreactor for microalgal screening and culture optimization for growth, lipid content and $CO_2$ sequestration. Biochem. Eng. J. 103, 193-197. 

  16. Choi, G.-G., Kim, B.-H., Ahn, C.-Y., and Oh, H.-M. 2011. Effect of nitrogen limitation on oleic acid biosynthesis in Botryococcus braunii. J. Appl. Phycol. 6. 1031-1037. 

  17. Kamalanathan, M., M. Pierangelini, L. A. Shearman, R. Gleadow, and J. Beardall. 2016. Impacts of nitrogen and phosphorus starvation on the physiology of Chlamydomonas reinhardtii. J. Appl. Phycol. 28, 1509-1520. 

  18. Li, Y., M. Horsman, B. Wang, N. Wu, and C. Q. Lan. 2008. Effects of nitrogen sources on cell growth and lipid accumulation of green alga Neochloris oleabundans. Appl. Micobiol. Biotechnol. 81, 629-636 

  19. Woo, S.-G., and Park, J.-H. 2012. Effects of phosphorus starvation on fatty acid production by microalgae cultivated from wastewater environment. KSCE. J. Civ. Eng. 4, 253-259. 

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