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동일한 속 원핵생물들의 보존 유전자와 대사경로
Conserved Genes and Metabolic Pathways in Prokaryotes of the Same Genus 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.29 no.1 = no.225, 2019년, pp.123 - 128  

이동근 (신라대학교 바이오산업학부 제약공학전공) ,  이상현 (신라대학교 바이오산업학부 제약공학전공)

초록
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원핵생물 분류의 기본단위인 종(species)의 동정에 16S rDNA가 사용되지만 한계가 있고 원핵생물의 속(genus)에 대한 연구가 많지 않다. 본 연구에서는 보존 유전자를 확보한 COG database와 대사경로를 확보한 MetaCyc database에 공통적인 원핵생물 중 속이 같고 종이 다른 13개 속 28개의 원핵생물을 대상으로 속 수준에서 연구하였다. 전체 유전자에서 core-genome인 속 보존 유전자의 비율은 최저 27.62%(Nostoc 속)에서 71.76%(Spiribacter 속)의 범위로 평균 46.72%였다. 각 원핵생물에서 core-genome의 비율이 낮으면 특이한 생명현상을 보이거나 서식지가 다양할 수 있을 것이다. 속 수준의 공통 대사경로의 비율은 최저 58.79%(Clostridium 속)에서 최대 96.31%(Mycoplasma 속), 평균 75.86%로 core-genome의 비율보다 높았다. 비교대상을 확장하면 속 특이 보존 유전자와 대사경로는 확인할 수 없었다. 보존 유전자와 대사경로 보유 계통수에서는 대체로 같은 속의 구성원들이 가장 인접하였으며, Bacillus속과 Clostridium 속이 그룹을 형성하였고, 고세균끼리 그룹을 형성하였다. 보존 유전자 보유계통수에서는 Acidobacteria, Cyanobacteria, Proteobacteria 문(phylum)의 Granulicella, Nostoc, Bradyrhizobium의 3개 속이 하나의 그룹을 형성하였다. 본 연구 결과는 (i) 각 계통 단계에서 보존유전자와 대사경로의 확인, (ii) 수평적 유전자 전달 또는 부위 지정 돌연변이를 통한 균주의 개선 등의 분야에 기초자료로 활용될 수 있을 것이다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The use of 16S rDNA is commonplace in the determination of prokaryotic species. However, it has limitations, and there are few studies at the genus level. We investigated conserved genes and metabolic pathways at the genus level in 28 strains of 13 genera of prokaryotes using the COG database (conse...

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문제 정의

  •  이에 본 연구에서는 게놈분석이 완료된 13개 속의 28개 원핵생물의 보존적 유전자와 대사경로를 속 수준에서 비교하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
종은 무엇인가? 종(species)은 분류의 기본 단위이며 새롭게 발견된 생물의 분류학적 위치 파악과 식의약 등의 분야에서 미생물을 GRAS (generally regarded as safe)로 인정할 때 사용된다. 원핵생물은 대개 무성생식을 하며 이분법으로 증식하므로, 종의 판단에 생식독립성이 아닌 다른 기준이 필요하다[13].
보존적인 16S rDNA 염기서열을 통한 원핵생물의 분류에 의문이 제기된 이유는 무엇인가? 염기서열분석 기술의 발달로 모든 원핵생물에 보존적인 16S rDNA 염기서열을 이용한 분류가 일반화되어 97% 이상의 유사도가 같은 종의 기준이 되었다[13]. 하지만 16S rDNA는 원핵 생물의 게놈 하나에 1~15개가 분포하며 같은 게놈에서도 6.4%의 차이도 있고[14], 16S rRNA 유전자도 다른 종의 원핵 생물로 수평전달되는 사례도 있어[1] 분류에서 16S rDNA의 절대성에 의문이 제기되었다. 이에 게놈에 1개 분포하면서 원핵생물들에 보존적인 GroEL chaperonin, rpoB, gyrB, dnaK 유전자 등이 대안으로 사용되고 있고, 하나의 유전자가 게놈 전체를 대표할 수 없다는 생각에 여러 보존적 유전자들을 활용하는 MLSA (multi-locus sequence analysis) 방법과 DNA- DNA hybridization 혹은 전체 게놈염기서열을 비교하여 70% 이상의 유사도를 나타내면 같은 종으로 인정하자는 제안이 있었다[13].
원핵생물은 대개 어떤 생식을 통해 증식하는가? 종(species)은 분류의 기본 단위이며 새롭게 발견된 생물의 분류학적 위치 파악과 식의약 등의 분야에서 미생물을 GRAS (generally regarded as safe)로 인정할 때 사용된다. 원핵생물은 대개 무성생식을 하며 이분법으로 증식하므로, 종의 판단에 생식독립성이 아닌 다른 기준이 필요하다[13]. 전통적으로 원핵세포의 분류에는 세포모양과 크기, 편모 등의 형태학적 특성과 생화학적 시험이 사용되었다.
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참고문헌 (15)

  1. Asai, T., Zaporojets, D., Squires, C. and Squires, C. L. 1999. An Escherichia coli strain with all chromosomal rRNA operons inactivated: complete exchange of rRNA genes between bacteria. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 96, 1971-1976. 

  2. Bassil, N. M. and Lloyd, J. R. 2017. Draft genome sequences of four alkaliphilic bacteria belonging to the Anaerobacillus genus. Genome Announc. 5, e01493-16. 

  3. Caspi, R., Altman, T., Dreher, K., Fulcher, C. A., Subhraveti, P., Keseler, I., Kothari, A., Krummenacker, M., Latendresse, M., Mueller, L. A., Ong, Q., Paley, S., Pujar, A., Shearer, A. G., Travers, M., Weerasinghe, D., Zhang, P. and Karp, P. D. 2012. The MetaCyc database of metabolic pathways and enzymes and the BioCyc collection of pathway/genome databases. Nuc. Acids Res. 40, D742-D753. 

  4. Galperin, M. Y., Makarova, K. S., Wolf, Y. I. and Koonin, E. V. 2015. Expanded microbial genome coverage and improved protein family annotation in the COG database. Nucleic Acids Res. 43, D261-D269. 

  5. Gan, H. M., Hudson, A. O., Rahman, A. Y., Chan, K. G. and Savka, M. A. 2013. Comparative genomic analysis of six bacteria belonging to the genus Novosphingobium: insights into marine adaptation, cell-cell signaling and bioremediation. BMC Genomics 28, 431. 

  6. Gupta, R. S. 2016. Impact of genomics on the understanding of microbial evolution and classification: the importance of Darwin's views on classification. FEMS Microbiol. Rev. 40, 520-553. 

  7. Han, K., Li, Z. F., Peng, R., Zhu, L. P., Zhou, T., Wang, L. G., Li, S. G., Zhang, X. B., Hu, W., Wu, Z. H., Qin, N. and Li, Y. Z. 2013. Extraordinary expansion of a Sorangium cellulosum genome from an alkaline milieu. Sci. Rep. 3, 2101. 

  8. Johnson, K. N. 2015. Bacteria and antiviral immunity in insects. Curr. Opin. Insect Sci. 8, 97-103. 

  9. Klein-Marcuschamer, D., Santos, C. N., Yu, H. and Stephanopoulos, G. 2009. Mutagenesis of the bacterial RNA polymerase alpha subunit for improvement of complex phenotypes. Appl. Environ. Microbiol. 75, 2705-2711. 

  10. Lee, D. G. and Lee, S. H. 2015. Investigation of conservative genes in 711 prokaryotes. J. Life Sci. 25, 1007-1013. 

  11. Lee, D. G. 2018. Comparison of metabolic pathways of less orthologous prokaryotes than Mycoplasma genitalium. J. Life Sci. 28, 369-375. 

  12. Qin, Q. L., Xie, B. B., Zhang, X. Y., Chen, X. L., Zhou, B. C., Zhou, J., Oren, A. and Zhang, Y. Z. 2014. A proposed genus boundary for the prokaryotes based on genomic insights. J. Bacteriol. 196, 2210-2215. 

  13. Rajendhran, J. and Gunasekaran, P. 2011. Microbial phylogeny and diversity : Small subunit ribosomal RNA sequence analysis and beyond. Microbiol. Res. 166, 99-110. 

  14. Wang,Y., Zhang, Z. and Ramanan, N. 1997. Theactinomycete Thermobispora bispora contains two distinct types of transcriptionally active 16S rRNA genes. J. Bacteriol. 179, 3270-3276. 

  15. Zhong, Z., Zhang, W., Song, Y., Liu, W., Xu, H., Xi, X., Menghe, B., Zhang, H. and Sun, Z. 2017. Comparative genomic analysis of the genus Enterococcus. Microbiol. Res. 196, 95-105. 

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