꿀벌(Apis mellifera)에는 많은 항균성펩티드가 있습니다. 그러나 아직 많은 종류의 펩티드를 기능을 알려지지 않았다. 따라서, 알려지지 않은 기능성 펩티드의 특성화가 필요하다. 그래서 우리는 새로운 항균성 펩티드(AMP)를 분석 하였다. 우리는 Apis mellifera에서 total RNA를 분리하고 Illumina HiSeq 2500 차세대 시퀀싱(NGS) 기술을 사용하여 15,314 개의 펩티드 서열을 생성하여 새로운 AMP를 선발 하였다. AMP로서 기능을 가지는 AMP를 선발 하기 위해 AMP 서열의 특성 과 특징을 분석을 기초로 하여 알려지지 않은 펩티드 및 알려진 44 개의 펩티드가 확인 되었다. 그 중에서도 AMP5라는 특성화 되지 않은 펩티드를 선발 하였다. AMP5는 표피, 지방체, 독낭에서 발현된다. 항균 활성을 분석하기 위해 Gram-negative bacteria Escherichia coli KACC 10005 및 Bacillus thuringiensis KACC 10168에 대한 항균 활성을 합성한 AMP5 처리하여 시험 하였다. AMP5는 Gram-negative bacteria Escherichia coli에 대한 항균 활성을 나타냈다(MIC50 = 22.04±0.66 μM). 일벌에 Escherichia coli을 주사했을 때 AMP5는 체내에서 항균성 펩티드로 발현이 높아졌다. 이러한 결과는 Escherichia coli에 대한 항균 활성을 나타냄을 확인하였다.
꿀벌(Apis mellifera)에는 많은 항균성 펩티드가 있습니다. 그러나 아직 많은 종류의 펩티드를 기능을 알려지지 않았다. 따라서, 알려지지 않은 기능성 펩티드의 특성화가 필요하다. 그래서 우리는 새로운 항균성 펩티드(AMP)를 분석 하였다. 우리는 Apis mellifera에서 total RNA를 분리하고 Illumina HiSeq 2500 차세대 시퀀싱(NGS) 기술을 사용하여 15,314 개의 펩티드 서열을 생성하여 새로운 AMP를 선발 하였다. AMP로서 기능을 가지는 AMP를 선발 하기 위해 AMP 서열의 특성 과 특징을 분석을 기초로 하여 알려지지 않은 펩티드 및 알려진 44 개의 펩티드가 확인 되었다. 그 중에서도 AMP5라는 특성화 되지 않은 펩티드를 선발 하였다. AMP5는 표피, 지방체, 독낭에서 발현된다. 항균 활성을 분석하기 위해 Gram-negative bacteria Escherichia coli KACC 10005 및 Bacillus thuringiensis KACC 10168에 대한 항균 활성을 합성한 AMP5 처리하여 시험 하였다. AMP5는 Gram-negative bacteria Escherichia coli에 대한 항균 활성을 나타냈다(MIC50 = 22.04±0.66 μM). 일벌에 Escherichia coli을 주사했을 때 AMP5는 체내에서 항균성 펩티드로 발현이 높아졌다. 이러한 결과는 Escherichia coli에 대한 항균 활성을 나타냄을 확인하였다.
The European honeybee (Apis mellifera L.) has multiple anti-microbial peptides, but many were unknown and demands for their characterization have increased. This study therefore focused on identifying novel anti-microbial peptides (AMPs) from A. mellifera L. To obtain high-throughput transcriptome d...
The European honeybee (Apis mellifera L.) has multiple anti-microbial peptides, but many were unknown and demands for their characterization have increased. This study therefore focused on identifying novel anti-microbial peptides (AMPs) from A. mellifera L. To obtain high-throughput transcriptome data of the honeybee, we implemented next-generation sequencing (NGS), isolating novel AMPs from total RNA, and generated 15,314 peptide sequences, including 44 known, using Illumina HiSeq 2500 technology. The uncharacterized peptides were identified based on specific features of possible AMPs predicted in the sequencing analysis. AMP5, one such uncharacterized peptide, was expressed in the epidermis, body fat, and venom gland of the honeybee. We chemically synthesized this peptide and tested its anti-bacterial activity against Gram-negative Escherichia coli (KACC 10005) and Gram-positive Bacillus thuringiensis (KACC 10168) by anti-microbial assay. AMP5 exhibited anti-bacterial activity against E. coli (MIC50=22.04±0.66 μM) but not against B. thuringiensis. When worker bees were injected with E. coli, AMP5 was up-regulated in the body fat. This study therefore identified AMP5 in adult European honeybees and confirmed its anti-bacterial activity against Gram-negative E. coli.
The European honeybee (Apis mellifera L.) has multiple anti-microbial peptides, but many were unknown and demands for their characterization have increased. This study therefore focused on identifying novel anti-microbial peptides (AMPs) from A. mellifera L. To obtain high-throughput transcriptome data of the honeybee, we implemented next-generation sequencing (NGS), isolating novel AMPs from total RNA, and generated 15,314 peptide sequences, including 44 known, using Illumina HiSeq 2500 technology. The uncharacterized peptides were identified based on specific features of possible AMPs predicted in the sequencing analysis. AMP5, one such uncharacterized peptide, was expressed in the epidermis, body fat, and venom gland of the honeybee. We chemically synthesized this peptide and tested its anti-bacterial activity against Gram-negative Escherichia coli (KACC 10005) and Gram-positive Bacillus thuringiensis (KACC 10168) by anti-microbial assay. AMP5 exhibited anti-bacterial activity against E. coli (MIC50=22.04±0.66 μM) but not against B. thuringiensis. When worker bees were injected with E. coli, AMP5 was up-regulated in the body fat. This study therefore identified AMP5 in adult European honeybees and confirmed its anti-bacterial activity against Gram-negative E. coli.
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문제 정의
이 외에 꿀벌 유전체 연구의 결과로 아직 기능이 알려지지 않은 많은 펩티드가 존재한다. 본 연구에서는 서양종 꿀벌(A. mellifera L.)의 유전체 분석 (NGS, Next Generation Sequencing) 분석 결과, 기존에 알려 있지 않은 항균 펩티드인 AMP5의 기능을 연구하였다.
제안 방법
96 well 플레이트에 박테리아를 접종하고(105cfu/well) 합성한 AMP5를 처리 하였다[11]. 37℃에서 24시간 동안 플레이트 배양하고 microplate reader (Biotek synergy HT Multi-Detection)를 사용하여 흡광도를 측정 하였다. 최소 억제 농도(MIC)는 50% 박테리아 성장 억제를 나타내는 합성한 AMP5의 최저 농도로서 계산하였다.
지방체로부터 RNA 추출 및 합성 cDNA를 합성 하였다. A. mellifera에서 AMP5와 면역계 사이의 상호 작용을 확인하기 위해 세균감염에 대한 반응으로 알려진 유전자를 선택 하였다. AMP5, apidaecin, defensin에 대한 cDNA를 RT-PCR에 의해 cDNA로부터 증폭시켰다.
mellifera에서 AMP5와 면역계 사이의 상호 작용을 확인하기 위해 세균감염에 대한 반응으로 알려진 유전자를 선택 하였다. AMP5, apidaecin, defensin에 대한 cDNA를 RT-PCR에 의해 cDNA로부터 증폭시켰다. PCR 프라이머를 RT-PCR 반응에 사용 하였다 : AMP5 forward 5'-TCGTGCAATGTCTGTCAATGA-3', reverse 5'-TTTGGGTCATCGTCACTGGT-3', apidaecin forward 5'-AGACC ACCTCATCCGCGTCT-3', reverse 5'-CCGGGTTCAGCTTCCGGTTT-3'; 및 defensin forward 5'-GAACCGCTGCTACCACTACG-3', reverse 5'-CCATTTCTGCAACTACCGC-3'.
AMP5는 Gram negative bacteria인 E. coli 항균 활성을 나타내므로 항균 펩티드임을 확인 하였다. AMP5는 기존에 알려진 항균 펩티드와 유사하게 세포벽에 결합 하고 세포벽 붕괴를 유도 하여 항균 활성을 나타내는 것으로 사료된다[1, 8].
ASCII Q-score offset 이 64인 CASAVA v.1.8.2을 기본 소프트웨어를 사용하여 이미지에서 개별적인 FASTQ 파일(forward and reverse)로 완전한 paired-end sequences 확인하였다. PHRED가있는 Adaptor sequences 및 저 품질 베이스 점수 (Q) ≤ 20을 제거하였다.
Apis mellifera L. cDNA로부터 AMP5유전자를 동정 하였다.Amp5는 총 393의 염기 서열로 이루어져 있고 130개의 아미노산으로 구성되어져 있다.
PBS 주사 그룹을 대조군으로 사용 하였다. Apis mellifera L. 일벌 복부에 주사하고, 감염 후 1, 3, 6, 9 또는 12시간에 Apis mellifera L. 일벌 지방 체를 수집 하였다. 지방체로부터 RNA 추출 및 합성 cDNA를 합성 하였다.
coli-immunized)로부터의 서열 판독 값을 참조하여 전사체에 개별적으로 mapping 하였다. Cufflink (Ver.1.3.0) 및 Cuffdiff (Ver. 2.0.2)를 사용하여 RPKM (kilobase per million) 정규화로 판독 프로파일을 계산하였다[15]. 최소 2 배의 상향 및 하향 조절을 나타내는 유전자를 1 ≤ log2 (fold-change [FC]) 값으로 isoforms expression dataset에서 필터링하고 WEON 웹 서버를 사용하여 Gene Ontology (GO) 주석을 분류하였다[21].
대장균 및 멸균수를 주사한 샘플(주사 후 18시간)로부터 RNA를 분리 하였다. RNA를 Nano-drop 분광 광도계(Thermo Scientific, USA)를 사용하여 정량화 하고 RNA 6000 Nano 분석 키트(Agilent, USA) 및 Bioanalyser2100 (Agilent, USA)을 사용하여 품질을 평가하였다. 제조사의 프로토콜에 따라 TruSeq RNA 샘플 준비 키트(Illumina, USA)를 사용하여 1 μg의 RNA로부터 NGS sequencing libraries를 생성 하였다.
개별 서열의 정량적 발현 패턴을 특성화하기 위해, TopHat(1.3.3 Ver)의 기본 parameters 와 함께 Bowtie (Ver.0.12.7)를사용하여 두 libraries (Control, E. coli-immunized)로부터의 서열 판독 값을 참조하여 전사체에 개별적으로 mapping 하였다. Cufflink (Ver.
그 중 보고 된 항균 펩티드 유전자를 제외하고 아직 그 기능을 밝혀 지지 않은 유전자를 선발 하였다. 그 중 기존에 보고 되어진 항균 펩티드 서열과 비교 하여 후보 군을 선발 하였다. 이 중 펩티드 서열이 짧은 펩티드 선발 하였다.
꿀벌(Apis mellifera L.)에 세균 감염 시켜 유전체 분석을 하였고 발현이 증가 하는 유전자를 선발 하였다. 그 중 보고 된 항균 펩티드 유전자를 제외하고 아직 그 기능을 밝혀 지지 않은 유전자를 선발 하였다.
coli; KACC10005)을 Luria–Bertan I (LB) 배지에 배양하고 3,000 rpm으로 원심 분리 후 pellet을 멸균수로 희석 하여 5 μl (1×104)를 일벌 복부에 주사 하였고 대조군은 멸균수를 주사하였다. 대장균 및 멸균수를 주사한 샘플(주사 후 18시간)로부터 RNA를 분리 하였다. RNA를 Nano-drop 분광 광도계(Thermo Scientific, USA)를 사용하여 정량화 하고 RNA 6000 Nano 분석 키트(Agilent, USA) 및 Bioanalyser2100 (Agilent, USA)을 사용하여 품질을 평가하였다.
면역반응에 유무 및 조직내에서의 AMP5의 발현 양상을 확인 하기 위해 E. coli를 A. mellifera에 감염 시켜 지방체을 채취하여 발현 양상 RT-PCR을 통해 비교 하였다. 대조군으로 선천성 면역반응 유전자인 apidaecin 과 defensin을 사용하였다.
추론 된 아미노산 서열은 생물 정보학 전략을 사용하여 항균 펩티드 예측 분석에 적용하였다. 물리 화학적 특성에 기초한 분자 성향 및 응집성 성향의 펩티드 특성을 결정하였고, 항균 펩티드는 정의 되어진 parameters를 갖는 생물 정보학 전략을 사용하여 확인하였다[23]. 항균 펩티드는 CAMP 데이터베이스[16]와 mapping되었고 신규 및 알려진 AMP로 분류하였다.
발현 분석 무작위로 선택된 Apis mellifera L. 일벌을 얼음 위에서 해부하고 표피, 지방체, 중장, 근육 및 독낭을 샘플링 하였다[12]. 제조사의 프로토콜을 따라 RNeasy Mini Kit (Qiagen, German)를 사용하여 조직 샘플로부터 RNA를 분리하고 cDNAEcodry (Takara, Japan)를 이용하여 cDNA 합성하였다.
방사형 확산 검정을 사용하여 박테리아에 대한 합성한AMP5 및 양성 대조군 melittin을 시험 하였다. 50 ml sodium phosphate 에5 ml의 Luria–Bertani (LB) 배지와 5 g agarose를 첨가하여 물을 사용하여 500 ml의 underlay gels을 제조 하였다(pH 7.
일벌 RNA를 분리 하였다. 분리한 RNA는 사용하여 Ecodry (Takara, Japan)를 사용하여 cDNA을 합성하였다. 합성한 cDNA로부터 AMP5를 클로닝 하기 위해 RT-PCR을 하였다.
생성 된 cDNA libraries를 Illumina HiSeq TM 2500 시스템과 paired-end sequenced (2×101 bp)하였다.
서양종꿀벌 (Apis mellifera L.)의 많은 전사체 데이터를 얻기 위해 Illumina 기반 NGS sequencing을 실시하였다(3BIGSCO., LTD). 항균 단백질 및 펩티드의 과 발현(over expression)을 유도(up-regulation)하기 위하여 국립농업과학원 미생물은행에서 분양 받은 대장균(E.
PHRED가있는 Adaptor sequences 및 저 품질 베이스 점수 (Q) ≤ 20을 제거하였다. 선발 된 서열은 NCBI GenBank로부터 구축 된 박테리아 데이터베이스를 사용하여 박테리아 오염 여부를 확인 하였다. 전처리 된 sequences를 기본 매개 변수와 함께 Bowtie2를 사용하여 박테리아 데이터베이스에mapping하였고 mapping 된 sequences는 제거 하였다.
항균 펩티드는 CAMP 데이터베이스[16]와 mapping되었고 신규 및 알려진 AMP로 분류하였다. 예측 된 항균 펩티드를 신규로 분류하기 위해, 서열은 길이가 20 bp 이하인 서열에 대한 PatMatch 및 길이가 20 bps 이상인 서열에 대한 BLASTP (1E-05)의 두 프로그램을 사용하여 CAMP 데이터베이스에 서열을 일치시켰다[16]. BLAST 결과는 유사성 점수 ≥ 90으로 필터링 하였다.
제조사의 프로토콜에 따라 TruSeq RNA 샘플 준비 키트(Illumina, USA)를 사용하여 1 μg의 RNA로부터 NGS sequencing libraries를 생성 하였다. 요약하면, poly-A-containing RNA 분자는 poly-T oligo 부착된 자성 비드를 사용하여 정제 하였다. 정제 후, 총 poly A + RNA를 높은 온도에서 2가 양이온을 사용하여 작은 조각으로 단편화 하였다.
이 결과로 새로운 항균 펩티드 및 선천성 면역반응 유전자인 AMP5를 확인 하였다.
선발 된 서열은 NCBI GenBank로부터 구축 된 박테리아 데이터베이스를 사용하여 박테리아 오염 여부를 확인 하였다. 전처리 된 sequences를 기본 매개 변수와 함께 Bowtie2를 사용하여 박테리아 데이터베이스에mapping하였고 mapping 된 sequences는 제거 하였다. HiSeq2500으로부터의 전처리 된 전체 서열을 pooled 하고 assembled 하여 Trinity assembler ver.
정제 후, 총 poly A + RNA를 높은 온도에서 2가 양이온을 사용하여 작은 조각으로 단편화 하였다. 절단된 mRNA 단편을 랜덤 프라이머를 사용하여 제 1 가닥 cDNA로 역전사 시켰다. 짧은 단편을 sequencing 어댑터와 연결 하였다.
요약하면, poly-A-containing RNA 분자는 poly-T oligo 부착된 자성 비드를 사용하여 정제 하였다. 정제 후, 총 poly A + RNA를 높은 온도에서 2가 양이온을 사용하여 작은 조각으로 단편화 하였다. 절단된 mRNA 단편을 랜덤 프라이머를 사용하여 제 1 가닥 cDNA로 역전사 시켰다.
제조사의 프로토콜에 따라 RNeasy Mini Kit (Qiagen,German)를 사용하여 Apis mellifera L. 일벌 RNA를 분리 하였다. 분리한 RNA는 사용하여 Ecodry (Takara, Japan)를 사용하여 cDNA을 합성하였다.
제조사의 프로토콜에 따라 TruSeq RNA 샘플 준비 키트(Illumina, USA)를 사용하여 1 μg의 RNA로부터 NGS sequencing libraries를 생성 하였다.
일벌을 얼음 위에서 해부하고 표피, 지방체, 중장, 근육 및 독낭을 샘플링 하였다[12]. 제조사의 프로토콜을 따라 RNeasy Mini Kit (Qiagen, German)를 사용하여 조직 샘플로부터 RNA를 분리하고 cDNAEcodry (Takara, Japan)를 이용하여 cDNA 합성하였다. RTPCR 반응에 사용한 프라이머는 다음과 같다 : A.
일벌 지방 체를 수집 하였다. 지방체로부터 RNA 추출 및 합성 cDNA를 합성 하였다. A.
최소 2 배의 상향 및 하향 조절을 나타내는 유전자를 1 ≤ log2 (fold-change [FC]) 값으로 isoforms expression dataset에서 필터링하고 WEON 웹 서버를 사용하여 Gene Ontology (GO) 주석을 분류하였다[21].
37℃에서 24시간 동안 플레이트 배양하고 microplate reader (Biotek synergy HT Multi-Detection)를 사용하여 흡광도를 측정 하였다. 최소 억제 농도(MIC)는 50% 박테리아 성장 억제를 나타내는 합성한 AMP5의 최저 농도로서 계산하였다. MIC 값은 평균 ± 표준 편차(SD)로 표시 하였다.
추론 된 아미노산 서열은 생물 정보학 전략을 사용하여 항균 펩티드 예측 분석에 적용하였다. 물리 화학적 특성에 기초한 분자 성향 및 응집성 성향의 펩티드 특성을 결정하였고, 항균 펩티드는 정의 되어진 parameters를 갖는 생물 정보학 전략을 사용하여 확인하였다[23].
합성한 AMP5를 40~2.5 μg/well을 처리하고 melittin은 40 μg/well을 처리 하여 확인 하였다.
분리한 RNA는 사용하여 Ecodry (Takara, Japan)를 사용하여 cDNA을 합성하였다. 합성한 cDNA로부터 AMP5를 클로닝 하기 위해 RT-PCR을 하였다. RT-PCR 반응에 사용한 프라이머는 다음과 같다; A.
합성한 항균 펩티드 후보 물질인 AMP5의 균 성장 억제와 항균 활성을 확인 하였다. 대조군으로 벌독 유래 항균 펩티드인 melittin을 사용 하였다.
항균 단백질 및 펩티드의 과 발현(over expression)을 유도(up-regulation)하기 위하여 국립농업과학원 미생물은행에서 분양 받은 대장균(E. coli; KACC10005)을 Luria–Bertan I (LB) 배지에 배양하고 3,000 rpm으로 원심 분리 후 pellet을 멸균수로 희석 하여 5 μl (1×104)를 일벌 복부에 주사 하였고 대조군은 멸균수를 주사하였다.
대상 데이터
coli 주사는 [12]에 기술 된 바와 같이 수행하였다. PBS 주사 그룹을 대조군으로 사용 하였다. Apis mellifera L.
)에 세균 감염 시켜 유전체 분석을 하였고 발현이 증가 하는 유전자를 선발 하였다. 그 중 보고 된 항균 펩티드 유전자를 제외하고 아직 그 기능을 밝혀 지지 않은 유전자를 선발 하였다. 그 중 기존에 보고 되어진 항균 펩티드 서열과 비교 하여 후보 군을 선발 하였다.
95% 유사 서열 제거하기 위해 CD-HIT-EST [10]를 사용하였다. 기준 전사체에 포함시키기 위해 500 bp 초과의 전사체를 선택 하였다.
합성한 항균 펩티드 후보 물질인 AMP5의 균 성장 억제와 항균 활성을 확인 하였다. 대조군으로 벌독 유래 항균 펩티드인 melittin을 사용 하였다. 방사형 확산법을 통해 균 성장 억제를 확인 하였다.
mellifera에 감염 시켜 지방체을 채취하여 발현 양상 RT-PCR을 통해 비교 하였다. 대조군으로 선천성 면역반응 유전자인 apidaecin 과 defensin을 사용하였다. 그 결과 apidaecin과 defensin의 발현이 증가하였고[19], AMP5 유전자의 발현 양상 또한 증가 하는 양상을 보였다(Fig.
데이터처리
MIC 값은 평균 ± 표준 편차(SD)로 표시 하였다.
이론/모형
Genomic DNA PCR 반응 프라이머는 다음과 같다: forward 5‘-TTGAGTCAAATGATTTCTCCGC-3’, reverse 5‘-TTAATTTGTGAATTCATATAATAGC-3’. PCR 증폭에는 AccuPower Host-start PCR premix (Bioneer, korea)가 사용하였고, 제조사의 프로토콜에 따라 반응을 진행 하였다.
대조군으로 벌독 유래 항균 펩티드인 melittin을 사용 하였다. 방사형 확산법을 통해 균 성장 억제를 확인 하였다. 합성한 AMP5를 40~2.
합성한 AMP5의 항균 활성은 [3, 24]에서 설명한 방법에 따라 측정하였다. 96 well 플레이트에 박테리아를 접종하고(105cfu/well) 합성한 AMP5를 처리 하였다[11].
성능/효과
5 μg/well을 처리하고 melittin은 40 μg/well을 처리 하여 확인 하였다. 그 결과 Gram negative bacteria인 E. coli 의 성장을 억제하는 것을 확인 하였고, Gram positive bacteria인 B. thuringlensis는 성장 억제 효과를 나타내지 않았다(Fig. 1). 또한 항균 활성을 확인한 결과 Gram negative bacteria인 E.
또한 항균 활성을 확인한 결과 Gram negative bacteria인 E. coli에 대한 22.04±0.66μM의 MIC50 값을 보이며 Gram positive bacteria인 B. thuringiensis에서는 항균 활성이 없음을 확인 하였다(Table 2).
벌 조직 내에서의 AMP5의 발현을 확인 하기 위해 표피, 지방체, 중장, 근육, 독낭 조직을 이용하여 RT-PCR로 확인 한 결과(Fig. 3) 표피, 지방체, 독낭에서 AMP5 유전자가 발현 되는 것을 확인 하였다. 합성된AMP5의 항균 활성 결과로 보았을 때 조직에서 발현되는 AMP5 유전자는 면역반응에 의해 발현되는 유전자로 사료된다.
후속연구
AMP5 와 같은 새로운 항균 펩티드를 선발 함으로써 항생제 내성을 가진 미생물에 대한 새로운 항균제 대안으로 사용 가능할 것으로 기대 된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
항균성 펩티드는 숙주를 무엇으로 부터 보호하는가?
이러한 미생물 침입으로부터 방어하기 위해 지방체와 혈구에서 체액성 인자가 분비 된다[13]. 선천성 면역 반응에 의해 분비 된 체액성 인자 중 하나인 항균성 펩티드(AMP)는 세균, 곰팡이, 바이러스 감염으로부터 숙주를 보호한다[22].
체액성 인자 중 하나인 항균성 펩티드는 어디에서 분비되는가?
병원체와 기생충 침입에 대한 곤충의 첫번째 방어체계는 표피이지만 일단 표피의 뚫고 침입하게 되면 선천적 면역반응의 복잡한 상호 작용에 의해 미생물 침입으로부터 방어 한다[2]. 이러한 미생물 침입으로부터 방어하기 위해 지방체와 혈구에서 체액성 인자가 분비 된다[13]. 선천성 면역 반응에 의해 분비 된 체액성 인자 중 하나인 항균성 펩티드(AMP)는 세균, 곰팡이, 바이러스 감염으로부터 숙주를 보호한다[22].
AMP의 4가지 유형은?
edu/AP/)에서 많은 곤충 종 에서 발견되어진 항균 펩티드를 확인 할 수 있다[17]. 아미노산 서열 또는 구조에 기초하여, AMP는 4가지 유형으로 분류 된다; α-helical peptides (cecropin and moricin), cysteine-rich peptides (insect defensin and drosomycin), proline-rich peptides (apidaecin, drosocin, and lebocin), and glycine-rich peptides (attacin and glocerin) [22]. defensin, cecropin, proline-rich peptides 및 glycine-rich peptides와 같은 AMPs 두 가지 이상의 곤충 종 에서 발견 됬지만,moricin, gloverin은 나비목에서만 발견 되었다[22].
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