[논문]유연전극 구조를 가진 플라즈마 발생장치를 이용한 미생물 살균 효과 연구

이혁재; 송현제; 송민종

doi:10.4313/jkem.2020.33.1.70

유연전극 구조를 가진 플라즈마 발생장치를 이용한 미생물 살균 효과 연구
A Study on the Effect of Microbial Sterilization Using Plasma Generator with a Flexible Electrodes Structure 원문보기

전기전자재료학회논문지 = Journal of the Korean institute of electronic material engineers, v.33 no.1, 2020년, pp.70 - 77

이혁재 (광주보건대학교 임상병리과) , 송현제 (광주보건대학교 임상병리과) , 송민종 (광주보건대학교 방사선과)

Abstract ▼ AI-Helper

In this study, the sterilization property of E. coli was established using a plasma generator with a flexible electrode structure. The bacterial suspension was prepared based on the McFarland standard 0.50 (1.5×108 CFU/mL) concentration and a specific amount was inoculated on the plate medium. After the plasma was discharged 3 cm away from the plasma generator in the range of 30s to 5 min and the results compared to the control group, the observed colonies that were formed decreased significantly as the plasma discharge time increased.

주제어

표/그림 (11)

그림 Fig. 1. Schematic diagram and picture of flexible electrode type atmospheric pressure plasma system.
그림 Fig. 2. Structure of the flexible electrode.
그림 Fig. 3. Before (a) and after (b) the deformation of the flexible electrode cable.
그림 Fig. 4. Overview (a), plasma generation module (b) and plasma generated high voltage power supply module (c) of atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma generation system used in this study.
그림 Fig. 5. Optical emission spectrum measured from atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma.
그림 Fig. 6. Change of temperature according to atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma time.
그림 Fig. 7. Change of ozone concentrations according to the discharge time of atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma.
그림 Fig. 8. The colonies of E. coli exposed to atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma.
그림 Fig. 9. The colonies of E. coli exposed to atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma.
그림 Fig. 10. The inactivation of E. coli on tryptic soy agar plates by atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma time.
표 Table 1. Number of living bacteria and log value after atmospheric pressure dielectric barrier discharge plasma.

AI 본문요약
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문제 정의

본 연구에서는 chamber 내부에 매개물질 가스를 첨가제로 충전시키지 않고 주입기체인 반응기체나 촉매를 이용하지 않는 유연전극 구조를 가진 플라즈마 발생장치를 제작하여 DBD을 통해 플라즈마를 생성시켜 여러 가지 공정변수(챔버 내부 온도 변화, 방전시간 등)에 대한 미생물의 살균효과를 관찰하고자 하였다.

제안 방법

1.5×108 CFU/mL 농도로 균 부유액을 조제하여 계열희석하여 50 μL 배지에 접종하고 플라즈마 발생장치에서 3 cm 이격하여 5분간 플라즈마 방전하였다.
Autopipette를 이용하여 균 부유액 50 μL를 nutrient agar plate에 옮긴 후, 1회용 L-shaped spreader를 이용하여 배지 전체에 접종하였다.
그림 7은 플라즈마 방전 시간에 따른 오존 농도를 나타내었고, 오존의 측정은 chamber 바닥에서 플라즈마 발생기 중간정도의 지점에서 총 5회 측정하여 평균 값을 산출하였다.
7 L 스테인리스강 소재를 사용하여 제작하였다. 또한 플라즈마 방전 상태와 특성측정 장치를 확인할 수 있도록 투명 아크릴을 이용하여 제작하였다. 유연전극 모듈은 3D 프린터로 설계한 직경이 8 cm인 ABS 수지(acrylonitrile butadienestyrene copolymer) 틀에 유전체 두께 35 mm, 길이 100 cm 유연전극을 부착하였다.
사멸률 경향을 살펴보기 위해 1.5×10 8 CFU/mL로 균 부유액을 조제하여 10배 계열희석 후 3 cm 거리에서 최초 30초부터 120초까지 15초 간격으로 플라즈마를 방전시켜 집락 형성 을 관찰하였다.
세균 현탁액의 탁도(turbidity)를 측정하는 탁도기(DensiCHECKTM plus)를 이용하여 McFarland standard 0.50 (1.5×108 CFU/mL) 농도로 조제 후, 균이 오랫동안 생존할 수 있지만, 증식하지 않는 인산 완충생리식염수(phosphate buffered saline)을 이용하여 107 ~102 CFU/mL로 10배씩 계열희석을 실시하였다.
시험균액 0.1 mL를 TSA에 접종하고 플라즈마 발생장치로부터 배지를 3 cm의 떨어뜨리고 각각 5분, 10분간 방전시킨 후, 35±1℃에서 24±2시간 동안 배양하여 배지의 형성된 집락 수를 확인하였다.
유연전극 구조를 가진 플라즈마 발생장치를 이용하여 여러 가지 공정변수에 대한 대장균의 살균능력을 확인하였다. 첫째, E.
유연전극 구조를 가진 플라즈마 발생장치를 이용하여 여러 가지 공정변수에 대한 병원성 세균인 그람음성 막대균인 대장균(Escherichia coli: E coli, KCCM 11569)의 살균 능력을 확인 결과 다음과 같은 결론을 얻었다.
유연전극 구조의 대기압 플라즈마 발생장치의 운전 조건으로 입력전압은 220 V, 주파수 40 kHz, 최종 방전전압 6,500 V로 플라즈마 방전시켰다. 그림 5는 대기압 플라즈마에서 방출되는 스펙트럼을 확인하기 위해 OES 방식으로 측정하였다.
유연전극이 내장된 플라즈마 발생장치로부터 배지를 3 cm 떨어뜨리고 30초에서부터 120초까지 15초 간격으로 플라즈마를 방전후 바로 35±1℃에서 24±2시간 배양하고, 형성된 균의 집락 수를 자동집락계수기(IncuCount TM 150)를 이용하여 확인하였다.
그림 2와 3은 플라즈마 발생을 위한 유연전극의 유전체 구성도이다. 이는 고전압 전극과 접지 전극(ground electrode) 사이의 유전체는 DBD 영역 및 대기압 플라즈마 발생 시 발현하는 120℃ 의 온도를 견딜 수 있는 내열성 실리콘 소재를 사용하 였고, 접지 전극은 3가닥, 8줄 형태의 50% 편조율로 제작되었으며, 스테인리스 강(steel use stainless) 재질을 사용하였으며, 제작된 유연전극은 케이블 유연성 확보와 전극 사이의 공극 증가를 통한 플라즈마 방전 효율 극대화를 위해 케이블 변형을 실시하여 계수적으로 균등한 플라즈마가 발생하도록 자체 제작하였다.
집락 형성 단위인 CFU/mL로 계수하였으며, 또한 시험균주를 tryptic soy broth (TSA) 에 접종하여 35±1℃에서 18~24시간 동안 배양한 후, 균 배양액을 멸균 생리식염수로 희석하여 생균수 5.6×105 CFU/mL로 조제하였다.
첫째, E. coli를 McFarland standard 0.50 (1.5×108 CFU/mL) 농도의 부유액으로 조제하여 일정 량의 시료를 평판배지에 도말한 후 3 cm 떨어뜨려 30초에서부터 120초까지 15초 간격으로 플라즈마 처리후 생성된 집락을 계수하여 플라즈마를 처리하지 않은 대조군과 비교 관찰하였고, 둘째, E. coli를 1.5×108 CFU/mL 농도의 부유액으로 조제하여 10배 계열희석하고, 일정량의 균부유액을 평판배지에 도말한 후, 3 cm 떨어뜨려 5분 동안 플라즈마를 방전시킨 후, 생성된 집락을 계수하여 플라즈마를 처리하지 않은 대조군과 비교 관찰하였으며, 셋째, E. coli를 5.6×105 CFU/mL로 조제된 균 부유액을 배지에 도말하여 플라즈마 발생장치로 부터 3 cm 떨어뜨려 5분, 10분간 플라즈마를 방전시켜 집락형성을 확인하였다.
플라즈마 방전에 따른 플라즈마 발생기와 chamber 내 온도 변화를 1분 간격으로 10분까지 측정하였다. 플라즈마 발생기로부터 약 50 mm 떨어진 아래 부분에서 열화상카메라로 3회 측정 측정하였고 chamber 내 온도는 살균 실험 시 균주가 접종된 배지가 놓이는 부위에 digital thermometer 온도 센서를 부착하여 3회 측정하여 평균값을 산출하였다. 플라즈마 발생기 온도는 1분에 40.
플라즈마 방전 시 발생되는 이온 및 라디칼(radical) 을 확인하기 위해 광 방출 분광진단기(optical emission spectroscopy, OES)인 flame spectrometer (FLAMES-XR1)를 이용하여 방출 스펙트럼을 측정하였다.
플라즈마 방전 후 발생된 오존 농도를 측정하기 위해서 1,000 ppm까지 측정 가능한 오존측정기(CY2000-03) 를 이용하여 10초 간격으로 180초까지 측정하였다. 플라즈마 발생장치와 chamber 내 온도 측정을 위해 열화 상카메라 FlIR (FLIR-E60)와 디지털 온도계(SDT46S)를 사용하였다.
플라즈마 방전에 따른 플라즈마 발생기와 chamber 내 온도 변화를 1분 간격으로 10분까지 측정하였다.
플라즈마로 처리된 세균이 배지에서 자라면서 형성 하는 집락(colony) 수를 세어서 살균효과를 평가하였고 이때 단위로 CFU (colony forming unit)를 사용 하였다. 세균 현탁액의 탁도(turbidity)를 측정하는 탁도기(DensiCHECKTM plus)를 이용하여 McFarland standard 0.

대상 데이터

연구에 사용된 대장균(Escherichia coli, KCCM 11569)은 한국미생물보존센터(Korean Culture Center of Microorganism)로부터 분양을 받아서 무균작업대 (clean bench)에서 동결 건조된 균주에 멸균증류수 0.5 mL 첨가하여 골고루 현탁시킨 후, nutrient broth 에 접종하고 37℃에서 48시간 동안 배양한 다음 skim milk가 들어 있는 cryo-tube에 넣어 -80℃에서 냉동 보관하여 다음과 같은 방법으로 실험을 행하였다.
또한 플라즈마 방전 상태와 특성측정 장치를 확인할 수 있도록 투명 아크릴을 이용하여 제작하였다. 유연전극 모듈은 3D 프린터로 설계한 직경이 8 cm인 ABS 수지(acrylonitrile butadienestyrene copolymer) 틀에 유전체 두께 35 mm, 길이 100 cm 유연전극을 부착하였다. 플라즈마 발생 전원장치는 150 W급 고전압 변압기와 그 구성 모듈은 전원전압을 인가하여 출력전압이 6.
유연전극 케이블 제작은 플라즈마 방전 상태에 따라 유전체 두께를 35 mm 타입으로 제작하였다. 유연전극의 고전압 전극(high voltage electrode)은 class 6 등급의 wire 0.
유연전극의 고전압 전극(high voltage electrode)은 class 6 등급의 wire 0.18 SQ×7 가닥으로 제작하였으며, 최대 허용전류는 0.504 A이다.
챔버는 [180mm (H) × 180 mm (W) × 300 mm (D)], 체적 9.7 L 스테인리스강 소재를 사용하여 제작하였다.
플라즈마 방전 후 발생된 오존 농도를 측정하기 위해서 1,000 ppm까지 측정 가능한 오존측정기(CY2000-03) 를 이용하여 10초 간격으로 180초까지 측정하였다. 플라즈마 발생장치와 chamber 내 온도 측정을 위해 열화 상카메라 FlIR (FLIR-E60)와 디지털 온도계(SDT46S)를 사용하였다.

데이터처리

50 μL을 고체배지에 접종하여 동일 실험조건으로 5회 실시하였으며, 평균과 표준편차를 산출하였다.
1 mL를 TSA에 접종하고 플라즈마 발생장치로부터 배지를 3 cm의 떨어뜨리고 각각 5분, 10분간 방전시킨 후, 35±1℃에서 24±2시간 동안 배양하여 배지의 형성된 집락 수를 확인하였다. 실험은 동일 조건으로 5회 실시하였으며 평균(mean, M)과 표준편차(standard deviation, SD)를 산출하였다. 대조군은 동일하게 도말하고 플라즈마를 방전시키지 않았다.
6×10⁵CFU/mL로 조제된 균 부유액을 배지에 도말하여 플라즈마 발생장치로 부터 3 cm 떨어뜨려 5분, 10분간 플라즈마를 방전시켜 집락형성을 확인하였다. 실험은 동일 조건으로 5회 실시하였으며 평균과 표준편차를 산출하였다. 대조군은 동일하게 도말하고 플라즈마를 방전시키지 않았다.

이론/모형

유연전극 구조의 대기압 플라즈마 발생장치의 운전 조건으로 입력전압은 220 V, 주파수 40 kHz, 최종 방전전압 6,500 V로 플라즈마 방전시켰다. 그림 5는 대기압 플라즈마에서 방출되는 스펙트럼을 확인하기 위해 OES 방식으로 측정하였다. 300~400 nm 사이에서 방출 강도가 높게 나타남을 확인 할 수 있으며, 분석된 활성 화학종들 중에는 super oxide radical (O₂ - ), hydroxyl radical (OH, 수산화기)와 같은 활성 산소종 과 N₂- , N₂+ 와 같은 활성 질소종들이 주로 생성됨을 확인할 수 있었는데 이는 대기압 방전이므로 당연히 나타나는 결과로 생각된다.

성능/효과

1) E. coli를 McFarland standard 0.50 (1.5×10 8 CFU/ mL) 농도의 부유액으로 조제하여 일정량을 평판배 지에 도말한 후, 플라즈마 발생장치로부터 3 cm 떨어뜨리고 플라즈마 처리 시간에 따른 생성된 집락 수를 계수하여 플라즈마를 처리하지 않는 대조군과 비교한 결과 플라즈마 방전 시간이 길어질수록 현저히 집락 수가 감소함을 확인할 수 있었다.
2) E. coli를 1.5×10 8 CFU/mL 농도의 부유액으로 조제하여 10배 계열희석을 실시하고 일정량의 부유액을 평판배지에 도말한 후, 플라즈마 발생장치로부터 3 cm 떨어뜨리고 5분 동안 플라즈마 처리 후 생성된 집락 수를 계수하여 플라즈마를 처리하지 않는 대조군과 비교 관찰한 결과 10 7 CFU/mL에서는 77(M)± 16(SD), 10 6 CFU/mL에서는 27(M)±5(SD)의 집락이 형성되었고, 10 5 ~10 2 CFU/mL까지는 완전히 사멸되어 집락이 형성되지 않았음을 확인할 수 있었다.
3) E. coli를 5.6×10 5 CFU/mL로 조제된 균 부유액 일정량을 배지에 도말하여 플라즈마 발생장치로부터 3 cm 떨어뜨려 5분, 10분간 플라즈마를 방전시켰다.
그림 5는 대기압 플라즈마에서 방출되는 스펙트럼을 확인하기 위해 OES 방식으로 측정하였다. 300~400 nm 사이에서 방출 강도가 높게 나타남을 확인 할 수 있으며, 분석된 활성 화학종들 중에는 super oxide radical (O₂ - ), hydroxyl radical (OH, 수산화기)와 같은 활성 산소종 과 N₂- , N₂+ 와 같은 활성 질소종들이 주로 생성됨을 확인할 수 있었는데 이는 대기압 방전이므로 당연히 나타나는 결과로 생각된다. 또 다른 스펙트럼인 OH 스펙트럼은 대기 중에 존재한 수분에 의한 것이다.
5×10 ⁸CFU/mL로 균 부유액을 조제하여 10배 계열희석 후 3 cm 거리에서 최초 30초부터 120초까지 15초 간격으로 플라즈마를 방전시켜 집락 형성 을 관찰하였다. 30초, 45초, 60초, 75초에서는 형성된 집락 수가 너무 많아서 계수할 수 없었으나 90초에서 99.964%, 105초에서는 99.981%, 120초에서는 99.994% 의 사멸률을 보였다. 90초 정도부터 120초까지는 급격히 증가하고 그 이후 완만한 증가를 보였다.
5×10 ²CFU/mL 집락이 형성되었고, 10분간 방전한 배지에서는 13 CFU/mL 집락이 형성됨을 관찰하였다. 5분 방전 시 LR은 3.57로 99.973%의 사멸률을 보였고, 10분 에는 4.64로 99.997%의 사멸률을 보였다.
5×10 ²CFU/mL 집락이 형성되었고, 10분간 방전한 배지에서는 13 CFU/mL 집락이 형성됨을 관찰하였다. 5분 방전 시 LR은 3.57로 99.973%의 사멸률을 보였고, 10분 에는 4.64로 99.997%의 사멸률을 보였다.
5분간 방전시킨 배지에서는 1.5×10 2 CFU/mL 집락이 형성되었고, 10분간 방전시킨 배지에서는 13 CFU/mL의 집락이 형성됨을 관찰하였다.
5분간 방전시킨 배지에서는 1.5×10 2 CFU/mL 집락이 형성되었고, 10분간 방전한 배지에서는 13 CFU/mL 집락이 형성됨을 관찰하였다.
결과에서 보듯 오존에 노출되는 시간이 증가할수록 E. coli의 사멸도도 비례하게 증가함을 확인할 수 있었 다. Son 등은 살균효과를 극대화시키기 위해서는 오존 발생 농도를 높이거나 오존과의 살균 유효시간을 늘리는 것이라 하였고 [14], 플라즈마에 노출되는 시간이 증가하게 되면 활성종의 농도가 일정하더라도 미생물의 손상 정도는 증가하고 그에 따라 사멸률이 증가하는 것으로 보고하였다 [18-20].
6℃ 정도 상승하였다. 또한 추가 적으로 플라즈마 방전 후 20분까지 연속적으로 온도변 화를 1분 간격으로 측정한 결과 11분에 27.8℃, 15분 28.8℃, 20분에는 29.5℃로 약 1.7℃ 상승하는 정도를 보였다. 플라즈마 발생기 자체 발생 열은 chamber 내온도에 큰 영향을 미치지 못하였음을 확인할 수 있었 다.
오존은 염소보다 산화력이 강하며 불안정한 기체로 최종적으로 산소원자와 산소분자로 해리되어 2차적인 환경오염을 발생시키지 않는 물질로 기타 살균제 보다 훨씬 넓은 적용범위를 가지며 부가적인 화학제의 첨가 없이 미생물을 빠르고 효과적으로 사멸시키는 것으로 알려져 있다. 외부공기 유입을 차단하고 오존농도를 측정한 결과 방전을 시작하기 전 chamber 내의 오존농도는 4 ppm 이내였고, 방전 후 초기 30초까지는 거의 변화가 없었으나, 이후 급격히 증가하여 약 170초 이내에 1,000 ppm 농도까지 상승하는 것을 확인하였다. 측정에 사용된 오존 계측기가 최대 1,000 ppm까지만 측정 가능하므로 3분 이후의 오존농도에 대해서는 정확히 측정할 수 없었다.
플라즈마 발생기로부터 약 50 mm 떨어진 아래 부분에서 열화상카메라로 3회 측정 측정하였고 chamber 내 온도는 살균 실험 시 균주가 접종된 배지가 놓이는 부위에 digital thermometer 온도 센서를 부착하여 3회 측정하여 평균값을 산출하였다. 플라즈마 발생기 온도는 1분에 40.1℃, 5분에 51.1℃, 10분에는 60.7℃이었으며 방전 시작 전 측정된 chamber 내 온도는 21.6℃, 5분에 24.9℃, 10분에는 27.2℃가 됨을 확인하였다. 플라즈마를 이용한 살균 실험에 있어 여러 가지 요소들이 고려되어야 하겠지만 그중에서도 방전시 발생하는 열에 의해서 실험균주의 살균에 미치는 영향을 생각할 필요가 있을 것이다 [13].
방전시간에 따라 집락 수가 현저히 줄어들었으나 90초까지는 형성된 집락수가 너무 많아서 계수가 불가능하거나 어려웠 고, 105초에서는 251(M)±23(SD) CFU/mL, 120초에는 72(M)±11(SD) CFU/mL를 보였다. 플라즈마 방전 시간이 길어질수록 현저한 집락 수 감소가 관찰되었다.

후속연구

오존은 반감기가 짧아 금방 분해되어 잔존하지 않지만 본 실험처럼 오존이 고농도로 발생되는 형태의 장치를 이용한 실험을 실시할 경우는 안전보호 장구와 오존을 외부로 효과적으로 배출할 수 있는 시스템 안에서 이루어져 실험자의 안전이 충분히 보장받을 수 있을 것이다. 또한 이를 상용화된 제품으로 개발하고자 한다면 여러 가지 방법을 통해 제거하여 오존 노출에 대한 안전 문제를 해결해야 할것으로 보인다.
Ryu 등은 대기압 DBD 플 라즈마 처리에서 인가 전력, 노출 거리, 노출 시간이 증가될수록 활성종인 오존, 일산화질소 등의 농도가 증가된다고 보고하였다 [13]. 오존은 반감기가 짧아 금방 분해되어 잔존하지 않지만 본 실험처럼 오존이 고농도로 발생되는 형태의 장치를 이용한 실험을 실시할 경우는 안전보호 장구와 오존을 외부로 효과적으로 배출할 수 있는 시스템 안에서 이루어져 실험자의 안전이 충분히 보장받을 수 있을 것이다. 또한 이를 상용화된 제품으로 개발하고자 한다면 여러 가지 방법을 통해 제거하여 오존 노출에 대한 안전 문제를 해결해야 할것으로 보인다.
저온 플라즈마 방식으로 미생물을 사멸시키기 위해 서는 경제적 비용과 멸균시간 단축이 중요하며, 이는 다른 방식의 멸균기보다 상대적으로 낮은 온도와 단시 간에 살균공정이 가능하므로 열, 압력, 습기에 취약한 의료기구 및 의료용품 등을 효과적으로 살균처리 할수 있을 것으로 생각된다. 유연전극 구조를 가진 플라 즈마 발생장치를 통하여 종래의 살균법의 단점을 보완할 수 있음을 확인하였고 살균하는 대상에 따라 다양한 구조 및 형태의 플라즈마 발생장치의 개발도 가능 하여 보다 폭넓게 활용할 수 있을 것이다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	플라즈마(plasma)는 무엇인가?	플라즈마(plasma)를 제4의 물질상태라 불리며, 기체 상태의 물질보다 높은 에너지를 가지게 되었을 때, 이온과 전자로 분리되면서 이들이 갖는 에너지가 서로 평행을 이루는 상태를 의미한다 [5]. 플라즈마를 산업 적으로 응용하려는 연구는 그동안 꾸준히 이루어져 왔으며 물리, 화학, 금속, 재료, 섬유 등의 다양한 분야 에서 플라즈마를 적용하고 있으며, 근래에는 대기압 상태에서 플라즈마를 발생시킴과 동시에 경제적?기술적 효율성도 살린 저온 대기압 플라즈마 장치의 개발로 살균, 의학, 바이오 분야에서 폭넓게 응용되고 연구가 활발히 진행되고 있다 [6,7].
	플라즈마에서 생성되는 자외선, 활성산소종, 활성질소종, 오존 등이 미생물에 미치는 영향은?	대기압 플라즈마에 의한 박테리아 살균은 플라즈마에서 생성되는 자외선, 활성산소종, 활성질소종, 오존 등이 주요한 인자로 알려져 있다 [8]. 이러한 성분들은 미생물의 세포벽이나 세포막을 통해 확산되면서 주요 구성성분인 다당류, 지질, 단백질 그리고 세포 내의 DNA 와 같은 거대 분자들과 반응하여 구조를 변화시켜 세포를 손상시키는 것으로 보고되었다 [9-12].
	플라즈마는 어떠한 산업분야에 이용될 수 있는가?	플라즈마(plasma)를 제4의 물질상태라 불리며, 기체 상태의 물질보다 높은 에너지를 가지게 되었을 때, 이온과 전자로 분리되면서 이들이 갖는 에너지가 서로 평행을 이루는 상태를 의미한다 [5]. 플라즈마를 산업 적으로 응용하려는 연구는 그동안 꾸준히 이루어져 왔으며 물리, 화학, 금속, 재료, 섬유 등의 다양한 분야 에서 플라즈마를 적용하고 있으며, 근래에는 대기압 상태에서 플라즈마를 발생시킴과 동시에 경제적?기술적 효율성도 살린 저온 대기압 플라즈마 장치의 개발로 살균, 의학, 바이오 분야에서 폭넓게 응용되고 연구가 활발히 진행되고 있다 [6,7].

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K. N. Lee, K. H. Paek, W. T. Ju, and Y. H. Lee, Korean J. Microbiol., 44, 269 (2006).

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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