[논문]한국산 남방돛양태[Bathycallionymus kaianus (돛양태과)] 자치어의 분자 동정 및 형태 기재

김진석; 김진구; 박정호; 지환성; 이해원

doi:10.5657/kfas.2020.0074

한국산 남방돛양태[Bathycallionymus kaianus (돛양태과)] 자치어의 분자 동정 및 형태 기재
Molecular Identification and Morphological Description for Larvae and Juveniles of Deepwater Dragonet Bathycallionymus kaianus (Callionymidae, PISCES) from Korea 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.53 no.1, 2020년, pp.74 - 82

김진석 (부경대학교 자원생물학과) , 김진구 (부경대학교 자원생물학과) , 박정호 (국립수산과학원 연근해자원과) , 지환성 (국립수산과학원 수산자원연구센터) , 이해원 (국립수산과학원 수산자원연구센터)

Abstract ▼ AI-Helper

Dragonet fish (Callionymidae), living in benthic upper 900 m of all subtropical, tropical and temperate oceans, comprises 200 species in 20 genera worldwide, of which 18 species in 6 genera occur in Korea. Although dragonet fish plays an important role in linking between top predators and lower trophic levels, there are only few studies about their early life history. Herein, we present molecular and morphological data on larvae and juveniles of Bathycallionymus kaianus (Günther, 1880) collected from the Korean waters. During 2016 to 2018, one preflexion larvae [2.69 in total length (TL)], three flexion larvae (3.65 and 4.77 mm TL), six postflexion larvae (6.07 and 7.94 mm TL), and three juveniles (10.81 and 12.26 mm TL) were collected in the East Sea, Korea Strait, and Jeju Island using Bongo net. Of them, 13 individuals were identified through molecular markers (COI or 16S rRNA) and morphologically described. The larvae of B. kaianus are well distinguished from other species of Callionymidae in melanophore distribution, body shape and development of preopercular spine. It was very similar to larvae of two Repomucenus species, R. valenciennei and R. virgis, but was clearly distinguished in melanophore distribution, preopercular spine development, and head shape.

주제어

표/그림 (8)

그림 Fig. 1. Map showing the sampling area of deepwater dragonet Bathycallionymus kaianus larvae (○).
그림 Fig. 2. Voucher specimen of deepwater dragonet Bathycallionymus kaianus (Günther, 1880); PKU 7927, southern sea (33°50'17.14"N,127°47'4.72"E), 2012.10.21, bottom trawl.
그림 Fig. 3. Neighbor-joining (NJ) tree showing the phylogenetic relationships of species of family Callionymidae including Bathycallionymus kaianus based on mitochondrial DNA 16S ribosomal RNA (16S rRNA; A) and cytochrome oxidase subunit I (COI; B).
표 Table 1. Measurements of larvae and juvenile of deepwater dragonet Bathycallionymus kaianus
표 Table 2. Preopercular spine, nostril and fn ray development of larvae and juvenile of deepwater dragonet Bathycallionymus kaianus
그림 Fig. 4. Larval development of Bathycallionymus kaianus.
그림 Fig. 5. Relative growth of various body part of larvae and juvenile of Bathycallionymus kaianus.
그림 Fig. 6. Postﬂexion larva of deepwater dragonet Bathycallionymus kaianus (A, 6.33 mm TL; PKUI 693), Valenciennes' dragonet Re-pomucenust valenciennei (B, 6.26 mm TL) and R. virgis (C, 7.40 mm TL).

AI 본문요약
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문제 정의

,2010). 따라서 본 연구에서는 우리나라 연안에서 채집된 돛양태과 자치어 1종을 대상으로 분자 마커를 이용하여 종 수준까지동정한 후 이들의 형태 특징을 상세히 제공하고자 한다.

제안 방법

10X PCR buffer 2.5 μL, 2.5 mM dNTP 2 μL, forward and reverse primer 각 1 μL, TaKaRa EX-Taq polymerase 0.2 μL (Ta KaRa Bio Inc., Shiga, Japan) 을 혼합한 혼합물에 genomic DNA 3 μL을 첨가한 후, 초순수를 넣어 총 volume을 20 μL로 맞추고 thermal cycler T-100 (BioRad)을 이용하여 다음과 같은 조건의 PCR 프로토콜을 실행하였다.
1차 반응에서 증폭이 되지 않은 경우 annealing 온도를 54°C로 변경하여 재실험을 진행하였다.
2) COI: Initial denaturation 95°C 5분; PCR reaction 35cycles (denaturation 95°C 1분, annealing 52°C 1분, extension 72°C 1분); final extension 72°C 5분. DNA sequencing은 ABI 3730XL sequencer (Applied Biosystems Inc., Waltham, Massachusetts, USA)에서 ABI bigdye terminator cycle sequencing ready reaction kit v3.1 (Applied Biosystems Inc., Waltham, Massachusetts, USA)을 이용하여 얻었다.
Chelex 100resin을 사용한 genomic DNA 추출의 경우, 10% Chelex 100resin 150 μL에 알코올을 제거한 눈 조직을 넣고 thermal cycler(Bio- Rad T-100, Hercules, California, USA)를 사용하여 60°C에서 20분, 99°C 25분동안 두었다. Genomic DNA extractionkit를 사용한 genomic DNA 추출은 제조사의 protocol을 따라 genomic DNA를 추출하였다. 추출된 genomic DNA는 실험 전까지 4°C에서 보관하였다.
Genomic DNA는 자치어의 눈에서 Chelex 100 resin (Biorad, Hercules, California, USA) 또는 DNA extraction kit (Bioneer, Daejeon, Korea)를 이용하여 추출하였다. Chelex 100resin을 사용한 genomic DNA 추출의 경우, 10% Chelex 100resin 150 μL에 알코올을 제거한 눈 조직을 넣고 thermal cycler(Bio- Rad T-100, Hercules, California, USA)를 사용하여 60°C에서 20분, 99°C 25분동안 두었다.
(1994a,1996)을 따랐다. 몸의 각 부위는 Mosaic 2.0 (Fuzhou Tucsenphoyonics, Fuzhou, China)을 이용하여 0.01 mm 단위까지 측정하였다. 측정된 측정값은 체장(standard length, SL) 또는 척색장(notochord length, NL)과 두장(head length, HL)에 대한비율값(%)으로 변환하여 나타내었다.
자치어의 외부형태는 입체현미경(SZH-16, Olympus, Tokyo,Japan)을 이용하여 관찰하였다. 자치어의 종 동정, 계수 및 계측과 용어는 Okiyama (2014)와 Eda et al.
중합효소연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR)은 mitochondria DNA 16s ribosomal RNA (16s rRNA)영역을 대상으로 진행하였으며, 16s rRNA 영역에서 증폭되지 않은 시료를 대 상으로 cytochrome c oxidase subunit I (COI) 영역에서의 추가분석을 진행하였다. 사용된 primer는 Ward et al.
1). 채집된 자치어는 채집 즉시 10% 포르말린에서 1시간 고정후 99% 알코올로 치환하여 보관하였으며, 이후 부경대학교 어류학실험실로 운반하여 정밀 분석을 수행하였다. 관찰표본은부경대학교 어류학실험실 어류플랑크톤표본실(Pukyung National University, Ichthyoplankton Laboratory, PKUI)에 등록및 보관하였다(PKUI 691-703).
01 mm 단위까지 측정하였다. 측정된 측정값은 체장(standard length, SL) 또는 척색장(notochord length, NL)과 두장(head length, HL)에 대한비율값(%)으로 변환하여 나타내었다.

대상 데이터

본 연구는 2016년 6월부터 2018년 11월까지 남, 동해 및 제주도 주변 해역에서 채집된 돛양태과 자치어 1종에 대한 외부형태 및 분자동정을 실시하였다. 분석결과 16S rRNA 및 COI 영역에서 남방돛양태 성어의 염기서열과 잘 일치하였고, 같은 과에 속한 다른 종들과 유의한 유전거리를 나타내어 최종적으로 본 종을 남방돛양태로 동정하였으며 그에 따른 면밀한 형태기재를 수행하였다.
본 연구에서 채집된 자치어는 2016년 6월에서 2018년 11월에 걸쳐 우리나라 남해, 동해 및 제주연안에서 봉고네트(망구80 cm, 망목 550 μm)를 사용한 경사인망으로 채집하였다(Fig.1).
사용된 primer는 Ward et al. (2005)의 VF2 (5′-TCA ACC AAC CAC AAA GAC ATT GGC AC-3′) 와 Fish R2 (5′-ACT TCA GGG TGA CC G AAG AAT CAG AA-3′), Palumbi (1996)의 16Sar (5’-CGC CTG TTT ATC AAA AAC AT-3’), 16Sbr (5’-CCG GTC TGA ACT CAG ATC AGG T-3’)를 사용하였다.
, 2018)를 이용하여 작성하고 bootstrap는 1,000번 수행하였다. 얻어진 염기서열을 비교하기 위하여 NCBI (national center for biotechnology information) 에 등록되어 있는 돛양태과 어류 7종(남방돛양태, KF265033, KF266849; Bathycallionymus formosanus, KY371209; Bathycallionymus sokonumeri, KY371213; 네점알롱양태, MK657511, DQ532968; 도화양태, AP006027; Callionymus maculatus, KJ204760, KJ128721; Callionymus lyra, KJ128720)의 염기서열을 이용하였고, NCBI 상에 등록되어 있지 않은 종의 염기서열은 부경대학교에 등록되어 있는 성어 확증 표본의 염기서열을 이용하였다(남방돛양태, PKU 7927, Fig. 2; 도화양태, PKU 7824, 7825; 실양태, PKU 7437; 망토돛 양태, PKU 7840; 돛양태, PKU 8405; 꽃돛양태, PKU 12724)

이론/모형

, 2018) 를 이용하여 pairwise distance를 Kimura-2-parameter모델 (Kimura, 1980)로 계산하였다. 근린결합수(Neighbor joining tree)는 Mega X (Kumar et al., 2018)를 이용하여 작성하고 bootstrap는 1,000번 수행하였다. 얻어진 염기서열을 비교하기 위하여 NCBI (national center for biotechnology information) 에 등록되어 있는 돛양태과 어류 7종(남방돛양태, KF265033, KF266849; Bathycallionymus formosanus, KY371209; Bathycallionymus sokonumeri, KY371213; 네점알롱양태, MK657511, DQ532968; 도화양태, AP006027; Callionymus maculatus, KJ204760, KJ128721; Callionymus lyra, KJ128720)의 염기서열을 이용하였고, NCBI 상에 등록되어 있지 않은 종의 염기서열은 부경대학교에 등록되어 있는 성어 확증 표본의 염기서열을 이용하였다(남방돛양태, PKU 7927, Fig.
분석된 염기서열의 정렬은 BioEdit version 7 (Hall, 1999)의 Cluster W multiple alignment (Thompson et al., 1994)를 이 용하여 정렬하였다. 유전거리는 Mega X (Kumar et al.
, 1994)를 이 용하여 정렬하였다. 유전거리는 Mega X (Kumar et al., 2018) 를 이용하여 pairwise distance를 Kimura-2-parameter모델 (Kimura, 1980)로 계산하였다. 근린결합수(Neighbor joining tree)는 Mega X (Kumar et al.
자치어의 외부형태는 입체현미경(SZH-16, Olympus, Tokyo,Japan)을 이용하여 관찰하였다. 자치어의 종 동정, 계수 및 계측과 용어는 Okiyama (2014)와 Eda et al. (1994a)를 따랐으며, 계수형질 4개, 계측형질 11개 등 총 15개 형태 형질을 측정 및 계수하였다. 척색말단 굴곡에 따른 발달단계는 Eda et al.
(1994a)를 따랐으며, 계수형질 4개, 계측형질 11개 등 총 15개 형태 형질을 측정 및 계수하였다. 척색말단 굴곡에 따른 발달단계는 Eda et al. (1994a,1996)을 따랐다. 몸의 각 부위는 Mosaic 2.

성능/효과

4E). 개체의 크기가 커지면서 그 끝이 분기되어 기존 방향에 수직인 새로운 극의 형성이 시작었으며(Fig. 4F), 치어시기의 전새개부 극의 형태는 성어의 극의 형태와는 차이를 보였다.
4에 나타내었다. 남방돛양태의 자치어는 같은 과에 속하고 비슷한 시기에 출현하는 실양태(Repomucenusvalenciennei), 망토돛양태(Repomucenus virgis)의 자치어와 형태적으로 매우 유사하지만 복강 하부의 흑색소포의 유무(흑색소포가 거의 없음; 남방돛양태 vs. 매우 조밀하게 분포; 실양태, 망토돛양태), 체측 흑색소포의 유무(두정부 앞까지 조밀하게 분포; 남방돛양태 vs. 체측의 배쪽에 조밀하게 분포; 실양태, 망토돛양태), 주둥이의 형태(아래로 경사지다; 남방돛양태 vs.위로 돌출되어있다; 실양태, 망토돛양태) 등에서 외부형태 차이를 보여 잘 구별되었다(Eda et al., 1994b, 1996; Fig. 6).
미토콘드리아 DNA 16S rRNA 영역을 대상으로 진행된 PCR결과, 자치어 총 8개체의 약 510 bp 영역이 증폭되어 NCBI에 등록하였고(NCBI 등록번호, MN795469-795476) 남방돛양태 성어 확증표본의 염기서열(PKU 7927; MN795477)과 비교했을 때 잘 일치하였다(K2P genetic distance, d =0.000-0.006;Fig. 3A). 한편, 동정된 자치어 8개체는 다른 돛양태과 어류와뚜렷한 유전거리를 보이며 잘 구별되었다: 돛양태(d =0.
미토콘드리아 DNA COI 영역을 대상으로 진행된 PCR 결과,자치어 총 5개체 약 530bp 영역이 증폭되어 NCBI에 등록하였고(NCBI 등록번호, MN794191-794195) 남방돛양태 성어 확증표본(PKU 7927; MN794196) 및 NCBI에 등록된 남방돛양태의 염기서열과 거의 일치하였다(d =0.000-0.011; Fig. 3B).한편, 동정된 자치어 5개체는 다른 돛양태과 어류와 뚜렷한 유전거리를 보이며 잘 구별되었다: 도화양태(d =0.
본 연구는 2016년 6월부터 2018년 11월까지 남, 동해 및 제주도 주변 해역에서 채집된 돛양태과 자치어 1종에 대한 외부형태 및 분자동정을 실시하였다. 분석결과 16S rRNA 및 COI 영역에서 남방돛양태 성어의 염기서열과 잘 일치하였고, 같은 과에 속한 다른 종들과 유의한 유전거리를 나타내어 최종적으로 본 종을 남방돛양태로 동정하였으며 그에 따른 면밀한 형태기재를 수행하였다. 수행된 형태기재에 따른 자치어의 형태발달은 Table 2와 Fig.
한 쌍의 콧구멍이 관찰되었다. 성장에 따른 계측값을 체장 및 두장에 대한 비율로 나타냈을 때, 항문전장, 체고, 가슴지느러미 앞 길이, 두장, 안경 및 주둥이 길이 모두 성장에 따라 증가하는 경향을 보였다(Fig. 5).
한 쌍의 콧구멍이 관찰되며 새개부에는 전새개부 극의 형성이 시작되었다. 치어(10.81-12.26 mm TL; Fig. 4E, 4F) 시기에는 모든 지느러미 줄기가 정수에 도달하며, 제 1등지느러미 및 배지느러미의형성이 뚜렷하게 관찰되었다. 머리는 점점 납작해지며, 눈은 동그란 형태에서 타원형으로 변하며 머리의 등쪽으로 돌출되기 시작하였다.
3B).한편, 동정된 자치어 5개체는 다른 돛양태과 어류와 뚜렷한 유전거리를 보이며 잘 구별되었다: 도화양태(d =0.212-0.215),실양태(d =0.222-0.227), 망토돛양태(d =0.262-0.271), 네점알롱양태(d =0.212-0.215), Callionymus maculatus (d =0.260-0.266), Bathycallionymus formosanus (d =0.137-0.144), Bathycallionymus sokonumeri (d =0.134-0.141).
3A). 한편, 동정된 자치어 8개체는 다른 돛양태과 어류와뚜렷한 유전거리를 보이며 잘 구별되었다: 돛양태(d =0.110-0.112), 꽃돛양태(d =0.105-0.110), 도화양태(d =0.158-0.164),네점알롱양태(d =0.259-0.262), Repomucenus calcaratus (d =0.138), Callionymus maculatus (d =0.222-0.228), Callionymus lyra (d =0.237).
흑색소포는 점점 큰 별모양으로 변하였으며 아래턱의 흑색소포는 입을 제외한 나머지 부분에서 거의 관찰되지 않았다. 후기자어(Fig. 4D)에 들어서면서 복강하부의 흑색소포는 거의 사라지게 되어 관찰되지 않았으며 반대로 체측의 흑색소포 분포가 더 조밀하게 분포하는 경향을 보였다. 주둥이 끝과 두정부에는 흑색소포가 조밀하게 분포하였으나 아래턱에는 거의 관찰되지 않았다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	돛양태과 어류가 분포하는 해역의 특징은?	돛양태과(Callionymidae) 어류는 전세계의 열대, 아열대 및 온대 해역의 900 m 이하 수심의 저서생태계에 광범위하게 분포하며(Nelson et al., 2016), 전세계적으로 20속 200종(Fricke etal.
	우리나라에 서식하는 돛양태과 어류의 식성은?	, 2019; Froese and Pauly, 2019), 일본에 14속 37종(Nakabo, 2013), 국내에 6속 18종(MABIK, 2018)이 보고되어 있다. 우리나라에 서식하는 돛양태과 어류들은 상업적으로 이용되지는 않으나 우리나라 연안의 저층 생태계에서 단각류, 이매패류, 갯지렁이류 등을 섭식하고(Huh and Baeck, 2003; Choi et al.,2016) 황아귀, 홍어, 대구 등 주요 상업종의 먹이생물로 이용되어(Baeck and Huh, 2003; Baeck et al.
	돛양태과 어류를 대상으로 한 국외의 연구는?	, 2016), 생식주기 및 산란생태(Baeck and Huh, 2004) 등이 있으나, 자치어에 관한 연구는 전무한 실정이다. 반면, 국외의경우, 날돛양태(Eda et al., 1994a), 동갈양태 및 실양태(Eda etal., 1994b), 춤양태(Gonzales et al., 1996), Callionymus enneactis (Eda et al., 1996)의 성장에 따른 자치어의 형태발달 연구, 미국 동부 대서양 연안에 출현한 C. pauciradiatus 및 C. bairdi자치어의 계절변동 및 형태연구(Olney and Sedberry, 1983), 영국 해협 Plymouth 연안에 출현한 C. reticulatus, C. lyra 및 C.maculatus 난·자치어의 종별 형태비교, 계절변동, 식성에 관한연구(Russell, 1976) 등 다수의 연구가 보고된 바 있다.

참고문헌 (34)

Aranishi F, Okimoto T and Izumi S. 2005. Identification of gadoid species (Pisces, Gadidae) by PCR-RFLP analysis. J Appl Genet 46, 69-73.

상세보기
Baeck GW and Huh SH. 2003. Feeding habits of juvenile Lophius litulon in the coastal waters of Kori, Korea. Korea J Kor Fish Soc 36, 695-699. https://doi.org/10.5657/kfas.2003.36.6.695.
Baeck GW and Huh SH. 2004. Maturation and spawning of Repomucenus valenciennei collected in Gwangyang bay, Korea. Korean J Ichthyol 16, 87-93.
Baeck GW, Huh SH, Park JM and Pack SC. 2007. Feeding habits of pacific cod (Gadus macrocephalus) in the coastal waters off Gadeok-do, Korea. Korean J Ichthyol 19, 318-323.
Choi HC, Youn SH, Park JM and Huh SH. 2016. Feeding habits of whitespotted dragonet Callionymus beniteguri in the coastal waters off Taean, Korea. Korean J Fish Aquat Sci 49, 694-700. https://doi.org/10.5657/KFAS.2016.0694.
Eda H, Fujiwara T and Takita T. 1994a. Embryonic, larval and juvenile development in laboratory-reared dragonets, Repomucenus beniteguri. Japan J Ichthyol 40, 465-473. https://doi.org/10.11369/jji1950.40.465.
Eda H, Takita T and Uno Y. 1994b. Larval and juvenile development of two dragonets, Repomucenus richardsonii and R. valenciennei, reared in a laboratory. Japan J Ichthyol 41, 149-158. https://doi.org/10.11369/jji1950.41.149.
Eda H, Fujiwara T, Kuno Y and Takita T. 1996. Larval and juvenile development of the dragonet, Paradiplogrammus enneactis, reared in a laboratory. Ichthyol Res 44, 77-81. https://doi.org/10.1007/BF02672761.
Fricke R, Eschmeyer WN and Fong JD. 2019. Species by family/subfamily. World Wide Web electronic publication. Retrieved from www.researcharchive.calacademy.org on Nov 25, 2019.
Froese R and Pauly D. 2019. Fish base. World wide web electronic publication. Retrieved from www.fishbase.org on Nov 25, 2019.
Gozales JB, Okamura O and Taniguchi N. 1996. Spawning behavior of laboratory-reared dragonet, Repomucenus huguenini, and development of its eggs and prolarvae. Suisanzoshoku 44, 7-15. https://doi.org/10.11233/aquaculturesci1953.44.7.

상세보기
Hall TA. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp Ser 41, 95-98.
Huh SH and Baeck GW. 2003. Feeding habits of Repomucenus valenciennei collected in the coastal waters of Gadeok-do, Korea. Korean J Ichthyol 15, 289-294.
Hubert N, Delrieu-Trottin E, Irisson JO, Meyer C and Planes S. 2010. Identifying coral reef fish larvae through DNA barcoding: A test case with the faillies Acanthuridae and Holocentridae. Mol Phylogenetics Evol 55, 1195-1203. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2010.02.023.

상세보기
Huh SH, Kim JM, Park JM and Baeck GW. 2013. Feeding habits of moon dragonet Repomucenus lunatus in the coastal waters off Gori, Korea. Korean J Ichthyol 25, 17-24.
Jeong JM, Kim HJ, Baeck GW, Ye SJ and Huh SH. 2015. Feeding habits of ocellate spot skate, Okamejei kenojei in the coastal waters of Gadoek-do, Korea. J Kor Soc Fish Technol 51, 265-271. http://dx.doi.org/10.3796/KSFT.2015.51.2.265.

원문보기 상세보기
Kimura M. 1980. A simple method for estimating evolutionary rate of base substitution through comparative studies of nucleotide sequences. J Mol Evol 16, 111-120. https://doi.org/10.1007/BF01731581.

상세보기
Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C and Tamura K. 2018. MEGA X: Molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol Biol Evol 35, 1547-1549. http://doi.org/10.1093/molbev/msy096.

상세보기
Lee CL and Kim IS. 1993. Synopsis of dragonet fish, family Callionymidae (Pisces, Perciformes) from Korea. Korean J Ichthyol 5, 1-40.
Leis JM and Carson-Ewart BM. 2000. Morphology. In: The larvae of Indo-Pacific coastal fishes: an identification guide to marine fish larvae. Leis JM and Carson-Ewart BM, eds. Brill, Boston, MA, U.S.A., 9-24.
Miller BS and Kendall AW. 2009. Early life history of marine fishes. University of California Press, Berkeley, CA, U.S.A., 1-85.
MABIK (Marine Biodiversity Institute of Korea). 2018. National list of marine species. Namu Press, Seocheon, Korea.
Neira FJ, Miskiewicz and Trnski T. 1998. Methods. In: Larvae of temperate Australian fishes: laboratory guide for larval fish identification. Neira FJ, Miskiewicz and Trnski T, eds. University of Western Australia Press, Melbourne, Australia, 11-19.
Nakabo T. 2013. Fishes of Japan with pictorial keys to the species, 3rd ed. Tokai University Press, Kanagawa, Japan, 1331-1346.
Nelson JS, Grande TC and Wilson VH. 2016. Fishes of the world, 5th edition. John Wiley and Sons Inc., New Jersey, NJ, U.S.A., 412-413.
Onley JE and Sedberry GR. 1983. Dragonet larvae (Teleostei, Callionymidae) in continental shelf waters off the eastern United States. Bio Oceanogr 3, 103-122. https://doi.org/10.1080/01965581.1983.10749473.
Okiyama M. 2014. An atlas of the early stage fishes in Japan. Tokai University Press, Tokyo, Japan, 1208-1214.
Palumbi SR. 1996. Nucleic acids II: the polymerase chain reaction. In: Molecular systematics. Hillis DM, Moritz C and Mable BK. Sinauer & Associates Inc., Sunderland, MA, U.S.A., 205-247.
Pegg GG, Sinclair B, Briskey L and Aspden WJ. 2006. MtDNA barcode identification of fish larvae in the southern Great Barrier Reef, Australia. Sci Mar 70, 7-12. https://doi.org/10.3989/scimar.2006.70s27.

상세보기
Russell FS. 1976. The eggs and planktonic stages of British marine fishes. Academic press, London, U.K., 20-294.
Song HB and Choi SS. 2000. Reproductive ecology and early life history of paradise fish, Macropodus chinensis (Pisces; Belontidae) in aquarium. Korean J Limnol 33, 282-294.
Thompson JD, Higgins DG and Gibson TJ. 1994. Clustal W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Res 22, 4673-4680. https://doi.org/10.1093/nar/22.22.4673.

상세보기
Vandersea MW, Litaker RE, Marancik KE, Hare JA, Walsh HJ, Lem S, West MA, Wyanski DM, Laban EH and Tester PA. 2008. Identification of larval sea basses (Centropristis) using ribosomal DNA-specific molecular assays. Fish Bull 106, 183-193.
Ward RD, Zemlac TC, Innes BH, Last PR and Hebert PDN. 2005. DNA barcoding Australia's fish species. Phil Trans Biol Sci 360, 1847-1857. http://doi.org/10.1098/rstb.2005.1716.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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