[논문]파킨슨유발제인 이산화망간으로 손상된 배양 대뇌 신경아교세포에 대한 노박덩굴 추출물의 보호

서영미

doi:10.15324/kjcls.2020.52.2.150

[국내논문] 파킨슨유발제인 이산화망간으로 손상된 배양 대뇌 신경아교세포에 대한 노박덩굴 추출물의 보호
Protective Effect of Celastrus orbiculatus Thunb Extract on Cultured Neuroglial Cells Damaged by Manganese Dioxide, a Parkinsonism Inducer 원문보기

Korean journal of clinical laboratory science : KJCLS = 대한임상검사과학회지, v.52 no.2, 2020년, pp.150 - 157

초록
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본 연구는 이산화망간(MnO₂)의 신경독성과 이에 대한 노박 덩굴 추출물의 보호 효과를 C6 glioma 세포를 배양하여 조사하였다. 본 연구를 위하여 세포생존율을 비롯하여 지질산화(LP) 억제능 및 XO 저해능과 같은 항산화 분석을 시행하였다. 그 결과 MnO₂는 배양 세포에 처리한 농도에 비례하여 세포생존율을 유의하게 감소시켰으며, 이 과정에서 XTT₅₀값은 146.7 μM로 나타나 Borenfreund and Puerner의 독성판정기준에 따라 중간독성(mid-cytotoxic)인 것으로 나타났다. 또한, 항산화제의 일종인 kaempferol (KAE)은 MnO₂의 독성에 의해 손상받은 세포의 생존율을 유의하게 증가시킴으로써 MnO₂의 독성을 방어하였다. 한편, MnO₂ 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향 조사에 있어서, CO 추출물은 배양 세포에 MnO₂만을 처리한 것에 비하여 세포생존율을 유의하게 증가시킴으로써 MnO₂의 독성을 효과적으로 방어하였다. 이와 동시에 높은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화 효과를 보여주었다. 이상의 결과에서 MnO₂의 독성에 산화적 손상이 관여하고 있음을 알 수 있었으며, CO 추출물은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화능에 의하여 MnO₂의 독성을 효과적으로 방어한 것을 확인였다. 따라서, CO 추출물과 같은 천연소재는 파킨슨병 유발제인 MnO₂와 같이 산화적 손상과 관련된 질환적 중금속 독성을 경감 내지는 개선할 수 있는 유용한 물질이라 생각된다.

Abstract ▼ AI-Helper

The protective effects of a Celastrus orbiculatus Thunb (CO) extract against manganese dioxide (MnO2)-induced cytotoxicity in cultured C6 glioma cells were examined. This study assessed the antioxidative effects, including the suppressive ability of lipid peroxidation (LP), the inhibitory ability of xanthine oxidase (XO), and the cell viability. MnO2 decreased the cell viability remarkably in a dose-dependent manner. The XTT50 value was determined to be 146.7 μM in these cultures. The cytotoxicity of MnO2 was calculated to be mid-toxic using Borenfreund and Puerner's toxic criteria. Kaempferol (KAE) increased the cell viability damaged by MnO2-induced cytotoxicity significantly. Regarding the protective effects of the CO extract on MnO2-induced cytotoxicity, the CO extract increased cell viability significantly compared to the MnO2-treated group. The CO extract also had inhibitory abilities against lipid peroxidation (LP) and xanthine oxidase (XO). From these findings, oxidative stress is involved in the cytotoxicity of MnO2. The CO extract effectively blocked the cytotoxicity induced by MnO2 via its antioxidative effects. Conclusively, natural resources, such as the CO extract, might be a useful agent for the diminution or improvement of the heavy metal cytotoxicity correlated with disease through oxidative stress, such as MnO2, a Parkinsonism inducer.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

별아교세포는 뇌-혈관장벽(brain-blood barrier, BBB)을 형성하여 뇌조직을 보호하는 동시에 신경세포(neuron)에 충분한 영양분을 공급하여 세포생존력을 높여주고 있을 뿐만 아니라, 특히 외부 요인에 의한 뇌손상으로 유발되는 파킨슨병과 같은 질환이 발생된 경우에는 위의 기능과 함께 신진대사를 강화하면서 뇌회복을 돕는 중요한 역할을 한다[11]. 따라서, 본 연구는 내적이나 외적 요인으로 뇌질환에 이환될 경우, 가장 빨리 활성화되어 활발히 반응하는 신경아교세포 일종인 C6 glioma 세포주를 이용하여 파킨슨병 유발제인 MnO₂의 신경독성을 산화적 손상 측면에서 조사하였다. 또한, MnO₂의 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향을 지질과산화(LP) 억제능 및 잔틴옥시다제(XO) 저해능과 같은 항산화 측면에서 분석함으로써 파킨슨병의 환경적 요인 중 하나인 망간과 같이 산화적 손상과 관련된 중금속화합물의 독성에 대한 완화 및 치료적 대체물질을 천연물 소재로부터 알아보고자 하였다.
이같이 노박덩굴을 포함한 이들 추출물들은 모두 브롬이나 망간과 같은 중금속화합물의 산화적 손상을 모두 항산화능에 의하여 효과적으로 방어하였다는 연구결과를 보여주고 있다. 따라서, 본 연구에서는 이 같은 CO 추출물의 항산화능에 대해 알아보기 위하여 지질과산화(LP) 억제능과 XO 저해능을 각각 조사하였다. LP 억제는 산화적 손상에 의하여 막을 구성하고 있는 인지질이 산화됨으로서 막손상으로 인하여 세포의 퇴화나 사멸을 초래하게 되는데, 이를 억제함으로써 세포를 손상으로부터 보호하게 된다[16].
본 결과는 CO추출물이 MnO₂ 독성에 의한 산화적 손상을 방어한 것으로서, 이 같은 현상은 CO 추출물속에 함유된 kaempferol이나 quercetin, flavonoid 배당체와 같은 항산화 성분들의 생리활성에 의한 결과라고 생각한다. 따라서, 본 연구에서는 추출물 속에 함유된 항산화물질인 총폴리페놀과 총플라보노이드의 함량을 조사하였다. 위에서 열거한 추출물의 각 성분들은 이미 항산화 효능이 입증되어 있기 때문에 개개의 성분분석보다는 총체적인 성분함량에 대한 정량적 분석을 행하였다[22].
3333px;">2의 신경독성을 산화적 손상 측면에서 조사하였다. 또한, MnO₂의 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향을 지질과산화(LP) 억제능 및 잔틴옥시다제(XO) 저해능과 같은 항산화 측면에서 분석함으로써 파킨슨병의 환경적 요인 중 하나인 망간과 같이 산화적 손상과 관련된 중금속화합물의 독성에 대한 완화 및 치료적 대체물질을 천연물 소재로부터 알아보고자 하였다.

제안 방법

CO 추출물의 독성조사는 추출물, 60∼150 μg/mL 농도 각각을 배양 세포에 48시간 동안 처리 후 세포생존율로 최대허용 한계농도를 측정하였고 이를 근거로 한계농도 바로 이하인 두 농도를 분석에 사용하였다.
KAE에 대한 항산화능 조사를 위해 35 μM H2O2를 배양 세포에 처리 전에 KAE, 50 μM과 70 μM 농도 각각을 2시간 동안 전처리한 후 이의 영향을 세포생존율로 조사하였다.
LP 활성은 대조군에 대한 백분율로, LP 억제능은 KAE를 양성대조군으로하여, LP 억제능(%)=100−[(시료첨가군의 흡광도/무첨가군의 흡광도)×100]으로 각각 나타냈다.
4 mL sodium carbonate로 1시간 동안 처리하여 ELISA reader, 725 nm에서 흡광도를 측정하였다. Tannic acid를 표준시약으로 하여 검량곡선을 작성하였다. 플라보노이드(flavonoid) 분석은 Nieva Moreno 등[15]의 방법으로, 25°C에서 시료용액 0.
XO 저해 활성은 대조군에 대한 백분율로, XO 저해능은 KAE를 양성대조군으로 하여, XO 저해능(%)=100−[(시료첨가군의 흡광도/무첨가군 의 흡광도)×100]으로 각각 나타냈다.
그러나 대조군과 150 μg/mL의 세포생존율이 통계적으로 차이를 보여, 대조군에 비하여 유의한 세포생존율의 감소를 나타내는 최대 허용한계 농도는 150 μg/mL 이상에서 나타나는 것으로 확인됨에 따라 본 실험에서는 CO 추출물 150 μg/mL 이하의 농도를 사용하였다.
또한, MnO2에 대한 CO 추출물의 영향조사를 위하여, XTT50 농도의 MnO2 처리전에 90 μg/mL 와 120 μg/mL 농도의 추출물을 각각 2시간 동안 처리 후 세포 생존율로서 이의 영향을 조사하였다.
또한, MnO2에 대한 KEA의 영향 조사는, XTT50 농도의 MnO2를 세포에 처리 전 50 μM과 70 μM KAE 농도 각각을 2시간 동안 전 처리 후 세포생존율을 조사하였다.
또한, MnO2의 제조는 무혈청의 minimum essential medium (MEM, Gibco, USA)을 사용하여 50, 100, 150, 200 μM의 각 저장액을 만들어 사용하였으며, XTT (50 μg/mL) 저장액은 필요한 농도로 희석 사용하였다.
배양 C6 glioma 세포에 MnO2가 120∼160 μM의 각각의 농도로 포함된 배양액에서 48시간 동안 처리한 후 세포생존율을 대조군과 비교 조사하였다.
세포생존율 측정은 Mosmann [13]의 방법에 따라 약제를 처리했거나 처리하지 않은 세포에 각 well당 10 μL의 XTT (50 μg/mL)를 넣고 항온기에서 4시간 동안 배양하였다. 배양 완료 후 isopropanol로 처리하여 ELISA reader (Spectra max 250, Molecular Devices, Sunnyvale, USA), 450 nm 에서 흡광도를 측정하여 세포생존율을 대조군과 비교 조사하였다. 또한, XTT₅₀값의 산출은 회귀직선식에 의해 구하였다.
본 연구는 이산화망간(MnO₂)의 신경독성과 이에 대한 노박덩굴 추출물의 보호 효과를 C6 glioma 세포를 배양하여 조사하였다. 본 연구를 위하여 세포생존율을 비롯하여 지질산화(LP) 억제능 및 XO 저해능과 같은 항산화 분석을 시행하였다.
)의 신경독성과 이에 대한 노박덩굴 추출물의 보호 효과를 C6 glioma 세포를 배양하여 조사하였다. 본 연구를 위하여 세포생존율을 비롯하여 지질산화(LP) 억제능 및 XO 저해능과 같은 항산화 분석을 시행하였다. 그 결과 MnO₂는 배양 세포에 처리한 농도에 비례하여 세포생존율을 유의하게 감소시켰으며, 이 과정에서 XTT₅₀값은 146.
따라서, 본 연구에서는 추출물 속에 함유된 항산화물질인 총폴리페놀과 총플라보노이드의 함량을 조사하였다. 위에서 열거한 추출물의 각 성분들은 이미 항산화 효능이 입증되어 있기 때문에 개개의 성분분석보다는 총체적인 성분함량에 대한 정량적 분석을 행하였다[22]. 그 결과 총폴리페놀과 총플라보노이드 함량은 각각 60.

대상 데이터

Manganese dioxide (MnO₂), kaempferol (KAE), trypsin, ethyl alcohol, hydroxyl chloride, ferrous chloride, phosphate buffered saline (PBS), isopropanol, hydrogen peroxide (H₂O₂), potassium phosphate, xanthine, linoleic acid 및 2,3-bis-[2-methoxy-4-nitro-5-sulfophenyl]-2Htetrazolium-5-caboxanilide, disodium salt (XTT), ammonium thiocyanate는 Sigma사(St. Louis, MO, USA)에서 구입하였다. 또한, MnO₂의 제조는 무혈청의 minimum essential medium (MEM, Gibco, USA)을 사용하여 50, 100, 150, 200 μM의 각 저장액을 만들어 사용하였으며, XTT (50 μg/mL) 저장액은 필요한 농도로 희석 사용하였다.
봄과 가을 사이에 전북 야산에서 전초를 채취한 후 잘 씻어 햇볕에서 말린 다음 시료로 보관 사용하였다. 추출은 배양 세포에 용매적 세포독성이 없는 열수추출[12]을 하기 위하여 보관시료 83.

데이터처리

실험자료는 SPSS/WIN (18.0)을 이용하여 Mean±SD로 표시하였으며, 군간의 비교는 one way ANOVA를 시행 후 Tukey HSD로 사후 분석을 하였다.

이론/모형

LP 활성은 Kikuzaki와 Nakatani [16]의 방법으로, 시료 3.9 mL, 에탄올에 녹인 linoleic acid, 0.05 M phosphate buffer를 혼합하여 40°C에서 24시간 동안 반응시켰다.
XO 저해 활성 측정은 Stirpe와 Corte [17]의 방법으로, 시료 추출물 0.1 mL, 0.1 M potassium phosphate buffer (pH 7.5), xanathine 기질액, xanthine 0.1 mL를 가하여 25°C에 서 15분 동안 반응시켰다.
배양 완료 후 isopropanol로 처리하여 ELISA reader (Spectra max 250, Molecular Devices, Sunnyvale, USA), 450 nm 에서 흡광도를 측정하여 세포생존율을 대조군과 비교 조사하였다. 또한, XTT₅₀값의 산출은 회귀직선식에 의해 구하였다.
세포생존율 측정은 Mosmann [13]의 방법에 따라 약제를 처리했거나 처리하지 않은 세포에 각 well당 10 μL의 XTT (50 μg/mL)를 넣고 항온기에서 4시간 동안 배양하였다.
폴리페놀분석(polyphenol)은 AOAC [14] 방법에 의하여, 시료 0.2 mL와 phenol reagent 0.2 mM을 3분간 반응시킨 후 0.4 mL sodium carbonate로 1시간 동안 처리하여 ELISA reader, 725 nm에서 흡광도를 측정하였다. Tannic acid를 표준시약으로 하여 검량곡선을 작성하였다.
플라보노이드(flavonoid) 분석은 Nieva Moreno 등[15]의 방법으로, 25°C에서 시료용액 0.1 mL와 10% aluminum nitrate, 1 M potassium acetate 혼합물 및 에탄올을 40분 동안 반응시킨 다음 ELISA reader, 415 nm에서 흡광도를 측정하였으며 rutin을 표준시약으로 하여 검량곡선을 작성하였다.

성능/효과

CO 추출물에 대한 LP 활성 측정을 위하여 CO 추출물 90 μg/mL와 CO 추출물 120 μg/mL 농도를 각각 처리하여 분석한 결과, CO 추출물 90 μg/mL 처리에서는 활성이 대조군에 비하 여 74.4% (0.32±0.02)로 나타났으며, 120 μg/mL의 처리에서는 60.5% (0.26±0.01)로 나타났다(Table 6).
CO 추출물에 대한 XO 저해 활성 측정 분석결과 CO 추출물 90 μg/mL 처리에서는 저해 활성이 77.4% (0.48±0.02)로 나타났으며, CO 추출물 120 μg/mL의 처리에서는 71.0% (0.44±0.02)로 나타났다(Table 7).
CO 추출물에 대한 XO 저해능의 사후분석결과 KAE, 120 μg/mL CO 추출물, 90 μg/mL CO 추출물, 대조군 순으로 저해능이 높았다.
CO 추출물에 대한 독성분석 결과 60 μg/mL와 90 μg/mL 농도에서 세포생존율이 대조군에 비하여 97.8% (0.44±0.03)와 95.6% (0.43±0.03)로 각각 나타났다.
KAE의 항산화능 조사 결과, H2O2의 처리에서는 세포생존율이 대조군에 비하여 36.5% (0.23±0.01)로 나타난 반면, 50 μM과 70 μM의 KAEA의 처리에서는 각각 54.0% (0.34±0.02)와 71.4% (0.45±0.02)로 나타나 H2O2만을 처리한 것보다 모두 유의한 세포생존율 증가를 나타냈다(P＜0.001) (Table 2).
LP 억제능의 사후분석 결과 KAE, 120 μg/mL CO 추출물과 90 μg/mL CO 추출물, 대조군 순으로 억제능이 높은 것으로 나타났다.
MnO2, 120 μM, 140 μM, 160 μM에서 대조군에 비해 각각 65.0%, 55.0%, 40.0%의 세포생존율을 보였으며, XTT50 값은 146.7 μM 처리에서 나타났다(Table 1).
MnO₂의 독성조사 결과, MnO₂의 처리농도에 따라 세포생존율이 유의한 감소를 보임으로서 독성을 나타냈다(P＜0.001). MnO₂, 120 μM, 140 μM, 160 μM에서 대조군에 비해 각각 65.
MnO2의 세포독성에 대한 CO 추출물의 영향 검증결과, MnO2의 처리에서는 세포생존율이 대조군에 비하여 45.9% (0.28±0.03)로 나타난데 비하여 90 μg/mL CO 추출물 처리에서는 54.1% (0.33±0.02)로 나타났다.
MnO2의 세포독성에 대한 CO 추출물이 미치는 영향에 대한 사후분석결과 대조군, 120 μg/mL CO 추출물, 90 μg/mL CO 추출물, MnO2 순으로 세포생존율이 높게 나타났다.
MnO2의 세포독성에 대한 KAE 영향에 대한 사후분석결과 대조군, 70 μM KAE과 50 μM KAE, MnO2 (XTT50) 순으로 세포생존율이 높은 것을 알 수 있었다.
MnO2의 세포독성에 대한 사후분석 결과 160 μM, 140 μM과 120 μM, 대조군의 순으로 세포독성이 높은 것으로 나타났다.
MnO2의 세포독성에 대한 항산화제인 KAE의 영향조사 결과, MnO2의 처리에서 세포생존율이 대조군에 비하여 48.2%(0.26±0.01)로 나타난 것에 비하여 50 μM KAE과 70 μM KAE 의 처리에서 각각 63.0% (0.34±0.01)와 79.6% (0.43±0.04) 로 나타났다(P＜0.001) (Table 3).
그 결과 MnO2는 배양 세포에 처리한 농도에 비례하여 세포생존율을 유의하게 감소시켰으며, 이 과정에서 XTT50값은 146.7 μM로 나타나 Borenfreund and Puerner의 독성판정기준에 따라 중간독성(mid-cytotoxic)인 것으로 나타났다.
그 결과 XTT50값은 146.7 μM로 Borenfreud와 Puerner [19]의 독성판정기준에 따라 중간독성 (mid-cytotoxic)이다.
위에서 열거한 추출물의 각 성분들은 이미 항산화 효능이 입증되어 있기 때문에 개개의 성분분석보다는 총체적인 성분함량에 대한 정량적 분석을 행하였다[22]. 그 결과 총폴리페놀과 총플라보노이드 함량은 각각 60.1 mg/g과 30.8 mg/g으로 나타났다. 이 같은 함량은 개미취(Aster tataricus L.
따라서, 90 μg/mL와 120 μg/mL 농도에서 LP 억제능은 각각 25.6%와 39.5%로 이는 모두 대조군보다 유의한 억제능을 보였다.
따라서, XO 저해능은 90 μg/mL와 120 μg/mL에서 각각 22.6%와 29.0%로 이는 대조군에 비하여 유의한 저해능을 나타냈으며(P＜0.001), 특히 추 출물 120 μg/mL의 농도에서는 양성대조군인 KAE 저해능인 75.8% (P＜0.001)의 35% 이상인 것으로 나타났다.
따라서, 본 연구에서는 MnO2에 대한 신경독성을 알아보기 위하여 배양 C6 glioma 세포에 120∼160 μM의 MnO2를 각각 처리한 결과, MnO2의 처리 농도에 비례하여 유의하게 세포생존율이 감소되었다.
따라서, 본 연구에서는 MnO2의 독성이 산화적 손상과 관련이 있는 가를 알아보기 위하여, 항산화제의 일종인 kaempferol (KAE)을 배양세포에 XTT50 농도의 MnO2를 처리하기 전에 50 μM과 70 μM 의 KAE를 각각 처리한 결과, 세포생존율이 MnO2의 처리인 48.2%에 비하여 각각 63.0%와 79.6%로 나타나 모두 MnO2의 처리에 비하여 유의한 세포생존율의 증가를 보였다.
또한 120 μg/mL CO 추출물 처리에서는 68.9% (0.42±0.02)로 나타나 MnO2만의 처리에 비하여 유의한 증가를 보였다(P＜0.001) (Table 5).
또한, CO 추출물의 XO 저해능에 대한 조사의 경우, 추출물 90 μg/mL와 120 μg/mL에서 각각 22.6%와 29.0%로 나타나 대조군에 비하여 모두 높은 저해능을 보였다.
9%로 세포생존율이 유의하게 증가하였다. 본 결과는 CO추출물이 MnO₂ 독성에 의한 산화적 손상을 방어한 것으로서, 이 같은 현상은 CO 추출물속에 함유된 kaempferol이나 quercetin, flavonoid 배당체와 같은 항산화 성분들의 생리활성에 의한 결과라고 생각한다. 따라서, 본 연구에서는 추출물 속에 함유된 항산화물질인 총폴리페놀과 총플라보노이드의 함량을 조사하였다.
6%로 나타나 모두 MnO₂의 처리에 비하여 유의한 세포생존율의 증가를 보였다. 본 결과는 Lee 등[7]이 MnO₂의 독성이 항산화 효소인 catalase에 의하여 방어되었다는 연구 보고와 일치함을 알 수 있었으며, MnO₂의 독성에 산화적 손상이 관여하고 있음을 증명하고 있다. 한편, MnO₂의 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향조사에 있어서, 배양 세포에 MnO₂를 처리하기 전에 CO 추출물 90 μg/mL 와 120 μg/mL 농도를 각각 세포에 처리한 결과 MnO₂의 처리인 45.
이와 동시에 높은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화 효과를 보여주었다. 이상의 결과에서 MnO₂의 독성에 산화적 손상이 관여하고 있음을 알 수 있었으며, CO 추출물은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화능에 의하여 MnO₂의 독성을 효과적으로 방어한 것을 확인였다. 따라서, CO 추출물과 같은 천연소재는 파킨슨병 유발제인 MnO₂와 같이 산화적 손상과 관련된 질환적 중금속 독성을 경감 내지는 개선할 수 있는 유용한 물질이라 생각된다.
한편, MnO₂ 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향 조사에 있어서, CO 추출물은 배양 세포에 MnO₂만을 처리한 것에 비하여 세포생존율을 유의하게 증가시킴으로써 MnO₂의 독성을 효과적으로 방어하였다. 이와 동시에 높은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화 효과를 보여주었다. 이상의 결과에서 MnO₂의 독성에 산화적 손상이 관여하고 있음을 알 수 있었으며, CO 추출물은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화능에 의하여 MnO₂의 독성을 효과적으로 방어한 것을 확인였다.
또한, 항산화제의 일종인 kaempferol (KAE)은 MnO₂의 독성에 의해 손상받은 세포의 생존율을 유의하게 증가시킴으로써 MnO₂의 독성을 방어하였다. 한편, MnO₂ 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향 조사에 있어서, CO 추출물은 배양 세포에 MnO₂만을 처리한 것에 비하여 세포생존율을 유의하게 증가시킴으로써 MnO₂의 독성을 효과적으로 방어하였다. 이와 동시에 높은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화 효과를 보여주었다.
한편, MnO2의 독성에 대한 노박덩굴(CO) 추출물의 영향조사에 있어서, 배양 세포에 MnO2를 처리하기 전에 CO 추출물 90 μg/mL 와 120 μg/mL 농도를 각각 세포에 처리한 결과 MnO2의 처리인 45.9%에 비하여 각각 54.1%, 68.9%로 세포생존율이 유의하게 증가하였다.
한편, 본 연구에서 CO 추출물의 LP 억제능은 90 μg/mL와 120 μg/mL에서 각각 25.6%와 39.5%로 나타나 대조군에 비하여 모두 높은 억제능을 보였다.

후속연구

CO 추출물에서 나타난 높은 LP 억제능과 XO 저해능과 같은 항산화능은 개미취나 한련초와 같은 타추출물처럼 추출물 속에 함유된 kaempferol이나 quercetin을 비롯한 tannin, saponin과 같은 항산화 성분들의 단독 또는 복합적인 생리활성 작용에 기인한 것으로 생각된다. 그러나 천연성분들에 대한 생리활성의 자세한 작용기전이나 현상을 밝히기 위해서는 차후 다양한 측면에서 지속적인 연구의 필요성이 요구된다.

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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