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[국내논문] Fenbendazole의 항암활성에서 활성산소종의 관련성
Involvement of reactive oxygen species in the anti-cancer activity of fenbendazole, a benzimidazole anthelmintic 원문보기

Korean journal of veterinary research = 대한수의학회지, v.60 no.2, 2020년, pp.79 - 83  

한용 (제주대학교 수의과대학 수의약리학실) ,  주홍구 (제주대학교 수의과대학 수의약리학실)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Fenbendazole (FBZ) is a benzimidazole anthelmintic that has been widely used in treatments for gastrointestinal parasites including pinworms and roundworms in animals. Recently, some studies demonstrated that FBZ has anti-cancer effects related to disruption of microtubule polymerization. In this st...

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문제 정의

  • FBZ는 현재 알려진 anti-tubulin effect 이외에 다른 기전을 통하여 항암작용을 갖는 지에 대해서는 연구가 미흡하다. 이에 본 연구에서는 사람 백혈병 세포의 일종인 HL-60세포에 FBZ를 처리하여 ROS와 연관된 항암효과가 유발되는 지 알아보았다.
  • 본 연구에서는 동물용 항기생충제이며, 최근 항암효과가 있는 것으로 알려진 FBZ의 항암효과 여부와 ROS 관련 작용기전을 알아보기 위해 연구를 진행하였다. 사람의 백혈병암 세포주(cell line)인 HL-60 세포에 FBZ를 처리한 결과 0.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Fenbendazole란? Fenbendazole (FBZ)은 시중에 유통되고 있는 동물용 항기생충제이며, 요충증을 포함한 다양한 기생충 감염의 치료에 사용되고 있는 약물이다[1-4]. 최근 FBZ의 항암효과가 발견되어 항암제로서의 사용가능성이 연구되고 있다[5-8].
Fenbendazole의 항암작용기전은? 최근 FBZ의 항암효과가 발견되어 항암제로서의 사용가능성이 연구되고 있다[5-8]. 현재 알려진 FBZ의 항암작용기전은 암세포의 microtubule 중합을 억제하는 anti-tubulin effect를 통해 세포분열을 억제하여 항암효과를 나타내는 것으로 보고되고 있다.
세포 내 ROS가 증가하면 무엇이 발생하는가? 산소는 체내에 존재하며 반응성이 매우 높은 기체로서, 산화적 대사 (oxidative metabolism)에 의해 생성되는 자유 전자(free electron)와 쉽게 반응하며, 세포 내에서 superoxide anion (O2−) hydroxyl radical (·O), H2O2와같은 활성산소(reactive oxygen species, ROS)를 생성한다[9]. ROS의 생산과 항산화물질 작용의 불균형으로 인해 세포 내 ROS가 증가하게 되면 oxidative stress가 발생하며, ROS는 DNA, 단백질 등과 반응하여 손상시키고 cell death를 유발한다[10]. 반면 항암제에 의한 ROS 생산으로 암세포의 사멸을 유도할 수 있다[11,12].
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참고문헌 (23)

  1. Pritchett KR, Johnston NA. A review of treatments for the eradication of pinworm infections from laboratory rodent colonies. Contemp Top Lab Anim Sci 2002;41:36-46. 

  2. Zajac AM. Developments in the treatment of gastrointestinal parasites of small animals. Vet Clin North Am Small Anim Pract 1993;23:671-681. 

  3. Muser RK, Paul JW. Safety of fenbendazole use in cattle. Mod Vet Pract 1984;65:371-374. 

  4. Hayes RH, Oehme FW, Leipold H. Safety of fenbendazole in swine. Am J Vet Res 1983;44:1112-1116. 

  5. Duan Q, Liu Y, Rockwell S. Fenbendazole as a potential anticancer drug. Anticancer Res 2013;33:355-362. 

  6. Duan Q, Liu Y, Booth CJ, Rockwell S. Use of fenbendazolecontaining therapeutic diets for mice in experimental cancer therapy studies. J Am Assoc Lab Anim Sci 2012;51:224-230. 

  7. Dogra N, Kumar A, Mukhopadhyay T. Fenbendazole acts as a moderate microtubule destabilizing agent and causes cancer cell death by modulating multiple cellular pathways. Sci Rep 2018;8:11926. 

  8. Lai SR, Castello SA, Robinson AC, Koehler JW. In vitro antitubulin effects of mebendazole and fenbendazole on canine glioma cells. Vet Comp Oncol 2017;15:1445-1454. 

  9. Li R, Jia Z, Trush MA. Defining ROS in Biology and Medicine. React Oxyg Species (Apex) 2016;1:9-21. 

  10. Auten RL, Davis JM. Oxygen toxicity and reactive oxygen species: the devil is in the details. Pediatr Res 2009;66:121-127. 

  11. Zaidieh T, Smith JR, Ball KE, An Q. ROS as a novel indicator to predict anticancer drug efficacy. BMC Cancer 2019;19:1224. 

  12. Ozben T. Oxidative stress and apoptosis: impact on cancer therapy. J Pharm Sci 2007;96:2181-2196. 

  13. Kim SY, Joo HG. Evaluation of adjuvant effects of fucoidan for improving vaccine efficacy. J Vet Sci 2015;16:145-150. 

  14. Moon SY, Joo HG. Anti-inflammatory effects of 4,4'- diaminodiphenyl sulfone (dapsone) in lipopolysaccharidetreated spleen cells: selective inhibition of inflammation-related cytokines. Korean J Vet Res 2015;55:199-204. 

  15. Galadari S, Rahman A, Pallichankandy S, Thayyullathil F. Reactive oxygen species and cancer paradox: To promote or to suppress? Free Radic Biol Med 2017;104:144-164. 

  16. Tafani M, Sansone L, Limana F, Arcangeli T, De Santis E, Polese M, Fini M, Russo MA. The interplay of reactive oxygen species, hypoxia, inflammation, and sirtuins in cancer initiation and progression. Oxid Med Cell Longev 2016;2016:3907147. 

  17. Ambudkar SV, Kimchi-Sarfaty C, Sauna ZE, Gottesman MM. P-glycoprotein: from genomics to mechanism. Oncogene 2003;22:7468-7485. 

  18. Ledoux S, Yang R, Friedlander G, Laouari D. Glucose depletion enhances P-glycoprotein expression in hepatoma cells: role of endoplasmic reticulum stress response. Cancer Res 2003;63:7284-7290. 

  19. Hu Z, Zeng Q, Zhang B, Liu H, Wang W. Promotion of p53 expression and reactive oxidative stress production is involved in zerumbone-induced cisplatin sensitization of non-small cell lung cancer cells. Biochimie 2014;107 Pt B:257-262. 

  20. Haugrud AB, Zhuang Y, Coppock JD, Miskimins WK. Dichloroacetate enhances apoptotic cell death via oxidative damage and attenuates lactate production in metformin-treated breast cancer cells. Breast Cancer Res Treat 2014;147:539-550. 

  21. Sun SY. N-acetylcysteine, reactive oxygen species and beyond. Cancer Biol Ther 2010;9:109-110. 

  22. Jeansonne DP, Koh GY, Zhang F, Kirk-Ballard H, Wolff L, Liu D, Eilertsen K, Liu Z. Paclitaxel-induced apoptosis is blocked by camptothecin in human breast and pancreatic cancer cells. Oncol Rep 2011;25:1473-1480. 

  23. Ferguson PJ, Phillips JR, Selner M, Cass CE. Differential activity of vincristine and vinblastine against cultured cells. Cancer Res 1984;44:3307-3312. 

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