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[국내논문] 해양 생물 유래 독소의 나노 기술 기반 신속 진단법 개발 동향
Trends in Rapid Detection Methods for Marine Organism-derived Toxins 원문보기

한국식품위생안전성학회지 = Journal of food hygiene and safety, v.35 no.4, 2020년, pp.291 - 303  

박찬영 (중앙대학교 화학과) ,  권소연 (중앙대학교 화학과) ,  문선희 (중앙대학교 화학과) ,  김민우 (중앙대학교 화학과) ,  하상도 (중앙대학교 식품공학부) ,  박종필 (중앙대학교 식품공학부) ,  박태정 (중앙대학교 화학과)

초록
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해양 생물 유래 독소는 그 치명적인 유독성으로 인해 비단 인류의 건강 뿐만 아니라 양식, 어업, 해양 생태계 전반에 걸쳐 경제적 손실을 비롯한 부정적인 영향을 미친다. 하지만, 종래에 사용되던 해양 독소 검출법만으로는 이를 다 파악하여 위협을 미연에 방지하기에는 아직 부족한 실정이다. 본 논문에서는 해산물의 해양 독소 잔존 여부를 판별하기 위해 종래에 사용되었던 시험법들의 한계를 개선하고자 각종 나노 재료 및 신규 기술들이 도입된 신속 검출법들에 대해 조사했으며, 대표적인 연구 결과들을 선정하여 사용한 나노 입자 및 전략에 대해 서술하였다. 특히 이러한 생물 유래 독소의 검출 기술을 대중화시키고 상용화하기 위해서는, 이를 생성하는 생물군으로부터 독소를 추출하는 전처리 과정을 간소화하는 것이 매우 중요하다. 해당 문제를 해결하고자 다양한 연구에서 표적 독소와 특이적으로 결합하는 항체를 고정화한 자성 나노 입자 기반의 전처리법을 보고했으며, 더 나아가 자성 나노 입자의 촉매 특성까지 활용해 검출 감도를 높이는 다양한 연구들도 발표되었다. 또한, 기존 효소 기반의 비색법검출 한계를 낮추고 검출 시스템의 안정성을 높이기 위해 양자점과 같은 형광 나노 입자를 도입하는 보고들도 있었다. 이 외에도 압타머와 나노 입자 복합체 기반의 전기화학 측정법 및 신규 기술들을 사용하고자 하는 연구들도 보고되었다. 하지만 해양 환경의 변화에 따라 생성된 신종 독소에 대한 대처는 아직 미흡한 실정이므로, 해양 독소 유도체 또한 아울러 진단 가능한 검출 기술에 대한 후속 연구가 필요하다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Marine organism-derived toxins have negative effects not only on human health but also in aquaculture, fisheries, and marine ecosystems. However, traditional analytical methods are insufficient in preventing this threat. In this paper, we reviewed new rapid methods of toxin detection, which have bee...

Keyword

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문제 정의

  • 본 연구에서는 이러한 한계를 극복하기 위해 생물을 사용하지 않고도 실제 검체내의 해양 독소 함량을 신속하게 판별하기 위해 고안된 검출 방식을 크게 종래의 분석 기법에 나노 물질을 도입함으로써 개선된 해양 독소의 검출기법과 전기화학법, 그리고 신규로 고안된 검출 기법으로 나눠 살펴보았으며, 각각의 대표적인 연구 결과에 대한 개요와 방법, 결과에 대해 고찰하였다.
  • 자세하게는, 금 미세 전극 사이에 간극을 만들고 여기에 전류가 흐르지 못할 정도로 소량의 금 나노 입자를 고정화한 뒤, 오카다산 특이 압타머를 정전기적 인력으로 금 나노 입자 표면에 흡착시킨다. 이후 이 사이에 표적 독소가 들어있는 검체를 투여하여 흡착된 압타머를 제거하고, 여기에 금나노 입자의 전구체인 HAuCl4와 포도당을 투여한 뒤 분화된 미세 전극 사이의 전도성 신호 증폭 정도를 통해 검체 내에 오카다산이 존재하는지 여부를 판단하는 것이다. 여기서 금 나노 입자의 자가 촉매 성장은 2단계를 거쳐 일어난다.

가설 설정

  • 게다가, 아직 발견되지 않은 해양 독소들의 이성질체들 및 신종 독소에 대한 대책이나 검출법 개발에는 지연이 발생할 수밖에 없다. 세 번째로는 센서를 구현하기 위해 사용되는 각종 나노 재료 및 생체 수용체의 대량 생산화가 어렵다는 것이다. 특히, 개발된 센서를 검증하기 위해서는 실제 독소를 표준 물질로 하여 무수히 많은 실험을 통해 검량 곡선을 만들고 이를 대입해야 하나, 시중에 해양 독소를 판매하는 업체가 적을뿐더러 취급하는 양이 적고 값이 비싸기 때문에 키트화한다 해도 이들에 대한 품질 관리가 어렵다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
ELISA 기법 무엇에 따라 분류되는가? 효소 결합 면역 흡착 검사법은 미지 시료 내 각종 표적 물질들의 정성 및 정량 평가를 위해 사용되는 실험 기법으로, 항원-항체 간 면역 반응을 검출의 근간으로 하며, 효소로 표지된 항원 또는 항체를 사용하여 효소 활성에 따라 나타나는 신호의 강도를 통해 존재 유무를 평가한다13). ELISA 기법은 사용하는 항원, 항체의 종류 및 실험 순서에 따라 크게 네 가지로 분류하며, 각각 직접 ELISA (direct ELISA), 간접 ELISA (indirect ELISA), 샌드위치 ELISA (sandwich ELISA), 경쟁적 ELISA이다 (competitive ELISA) (Fig. 1).
우리나라의 해산물 수요가 증가하는 근본적인 이유는? 음식의 섭취는 신체를 구성하고 유지하는 데 필요한 각종 탄수화물, 지방, 단백질, 미네랄 등과 같은 영양 성분을 공급하기 위한 수단으로, 생명체가 그 존재를 존속함에 있어 필수적인 행위이다. 특히, 해산물의 경우 칼슘과 인, 철분 등의 영양소가 많이 포함되어 있을 뿐만 아니라, 우리 몸에서 자체적으로 생성할 수 없는 해양 오메가3 지방산과 같은 이로운 성분들을 섭취할 수 있다는 장점이 있다1). 최근 우리나라의 국민 소득 수준이 증대됨에 따라 건강에 대한 관심이 높아지게 되었고, 2011년 보고된 식품 외식 경제 유럽 위원회 공동 연구 센터의 보고에서 한국이 연간 인당 78.
효소 결합 면역 흡착 검사법은 무엇인가? 효소 결합 면역 흡착 검사법은 미지 시료 내 각종 표적 물질들의 정성 및 정량 평가를 위해 사용되는 실험 기법으로, 항원-항체 간 면역 반응을 검출의 근간으로 하며, 효소로 표지된 항원 또는 항체를 사용하여 효소 활성에 따라 나타나는 신호의 강도를 통해 존재 유무를 평가한다13). ELISA 기법은 사용하는 항원, 항체의 종류 및 실험 순서에 따라 크게 네 가지로 분류하며, 각각 직접 ELISA (direct ELISA), 간접 ELISA (indirect ELISA), 샌드위치 ELISA (sandwich ELISA), 경쟁적 ELISA이다 (competitive ELISA) (Fig.
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참고문헌 (57)

  1. Hosomi, R., Yoshida, M., Fukunaga, K., Seafood consumption and components for health, Glob. J. Health Sci., 4, 72-86 (2012). 

  2. Guillen, J., Natale, F., Carvalho, N., Casey, J., Hofherr, J., Druon, J.N., Fiore, G., Gibin, M., Zanzi, A., Martinsohn, J.T., Global seafood consumption footprint, Ambio, 48, 111-122 (2019). 

  3. Wang, Q., Fang, J.R., Cao, D.X., Li, H.B., Su, K.Q., Hu, N., Wang, P., An improved functional assay for rapid detection of marine toxins, saxitoxin and brevetoxin using a portable cardiomyocyte-based potential biosensor, Biosens. Bioelectron., 72, 10-17 (2015). 

  4. Vilarino, N., Louzao, M.C., Vieytes, M.R., Botana, L.M., Biological methods for marine toxin detection, Anal. Bioanal. Chem., 397, 1673-1681 (2010). 

  5. Mok, J.S., Song, K.C., Lee, K.J., Kim, J.H., Variation and profile of paralytic shellfish poisoning toxins in Jinhae bay, Korea, Fish. Aquat. Sci., 16, 137-142 (2013). 

  6. Baek, S.H., First report for appearance and distribution patterns of the epiphytic dinoflagellates in the Korean peninsula, Korean J. Environ. Biol., 30, 355-361 (2012). 

  7. Ha, K.S., Shim, K.B., Yoo, H.D., Kim, J.H., Lee, T.S., Evaluation of the bacteriological safety for the shellfish growing area in Hansan.Geojeman, Korea, Kor. J. Fish. Aquat. Sci., 42, 449-455 (2009). 

  8. Yoo, H.D., Ha, K.S., Shim, K.B., Kang, J.Y., Lee, T.S., Kim, J.H., Microbiological quality of the shellfish-growing waters and mussels in Changseon, Namhae, Korea, Kor. J. Fish. Aquat. Sci., 43, 298-306 (2010). 

  9. Bodero, M., Gerssen, A., Portier, L., Klijnstra, M.D., Hoogenboom, R.L., Guzman, L., Hendriksen, P.J., Bovee, T.F., A strategy to replace the mouse bioassay for detecting and identifying lipophilic marine biotoxins by combining the Neuro-2a bioassay and LC-MS/MS analysis, Mar. Drugs, 16, 501-515 (2018). 

  10. Gao, S., Zheng, X., Hu, B., Sun, M., Wu, J., Jiao, B., Wang, L., Enzyme-linked, aptamer-based, competitive biolayer interferometry biosensor for palytoxin, Biosens. Bioelectron., 89, 952-958 (2017). 

  11. Rodriguez, I., Vieytes, M.R., Alfonso, A., Analytical challenges for regulated marine toxins. Detection methods, Curr. Opin. Food Sci., 18, 29-36 (2017). 

  12. Kafa, N., Hani, Y., El Mhamedi, A., Sustainability performance measurement for green supply chain management, IFAC Proceedings Volumes, 46, 71-78 (2013). 

  13. Crowther, J.R., 2000. The ELISA guidebook, Humana Press, Totowa, NJ, USA, pp. 1-8. 

  14. Waritani, T., Chang, J., McKinney, B., Terato, K., An ELISA protocol to improve the accuracy and reliability of serological antibody assays, MethodsX, 4, 153-165 (2017). 

  15. Labus, K., Wolanin, K., Radosinski, L., Comparative study on enzyme immobilization using natural hydrogel matrices-experimental studies supported by molecular models analysis, Catalysts, 10, 489-512 (2020). 

  16. Hosseini, S., Vazquez-Villegas, P., Rito-Palomares, M., Martinez-Chapa, S.O., 2018. Advantages, disadvantages and modifications of conventional ELISA, Springer, Singapore, pp. 67-115. 

  17. Campas, M., Reverte, J., Rambla Alegre, M., Campbell, K., Gerssen, A., Diogene, J., A fast magnetic bead-based colorimetric immunoassay for the detection of tetrodotoxins in shellfish, Food Chem. Toxicol., 140, 111315 (2020). 

  18. Lai, W., Wei, Q., Zhuang, J., Lu, M., Tang, D., Fenton reaction-based colorimetric immunoassay for sensitive detection of brevetoxin B, Biosens. Bioelectron., 80, 249-256 (2016). 

  19. Tan, C., Gao, N., Deng, Y., Deng, J., Zhou, S., Li, J., Xin, X., Radical induced degradation of acetaminophen with $Fe_3O_4$ magnetic nanoparticles as heterogeneous activator of peroxymonosulfate, J. Hazard. Mater., 276, 452-460 (2014). 

  20. Tsai, T.T., Huang, T.H., Chen, C.A., Ho, N.Y.J., Chou, Y.J., Chen, C.F., Development a stacking pad design for enhancing the sensitivity of lateral flow immunoassay, Sci. Rep., 8, 1-10 (2018). 

  21. Goux, H.J., Raja, B., Kourentzi, K., Trabuco, J.R., Vu, B.V., Paterson, A.S., Kirkpatrick, A., Townsend, B., Lee, M., Truong, V.T.T., Evaluation of a nanophosphor lateral-flow assay for self-testing for herpes simplex virus type 2 seropositivity, PLoS One, 14, e0225365 (2019). 

  22. Koczula, K.M., Gallotta, A., Lateral flow assays, Essays Biochem., 60, 111-120 (2016). 

  23. Shen, H., Xu, F., Xiao, M., Fu, Q., Cheng, Z., Zhang, S., Huang, C., Tang, Y., A new lateral-flow immunochromatographic strip combined with quantum dot nanobeads and gold nanoflowers for rapid detection of tetrodotoxin, Analyst, 142, 4393-4398 (2017). 

  24. Ivase, T.J.P., Nyakuma, B.B., Oladokun, O., Abu, P.T., Hassan, M.N., Review of the principal mechanisms, prospects, and challenges of bioelectrochemical systems, Environ. Prog. Sustain. Energy, 39, 13298-13306 (2020). 

  25. Eissa, S., Siaj, M., Zourob, M., Aptamer-based competitive electrochemical biosensor for brevetoxin-2, Biosens. Bioelectron., 69, 148-154 (2015). 

  26. Eissa, S., Ng, A., Siaj, M., Tavares, A.C., Zourob, M., Selection and identification of DNA aptamers against okadaic acid for biosensing application, Anal. Chem., 85, 11794-11801 (2013). 

  27. Zhao, Z., Chen, H., Ma, L., Liu, D., Wang, Z., A label-free electrochemical impedance aptasensor for cylindrospermopsin detection based on thionine-graphene nanocomposites, Analyst, 140, 5570-5577 (2015). 

  28. Hou, L., Jiang, L., Song, Y., Ding, Y., Zhang, J., Wu, X., Tang, D., Amperometric aptasensor for saxitoxin using a gold electrode modified with carbon nanotubes on a selfassembled monolayer, and methylene blue as an electrochemical indicator probe, Microchim. Acta., 183, 1971-1980 (2016). 

  29. Leonardo, S., Rambla Alegre, M., Samdal, I.A., Miles, C.O., Kilcoyne, J., Diogene, J., O'Sullivan, C.K., Campas, M., Immunorecognition magnetic supports for the development of an electrochemical immunoassay for azaspiracid detection in mussels, Biosens. Bioelectron., 92, 200-206 (2017). 

  30. Leonardo, S., Kiparissis, S., Rambla Alegre, M., Almarza, S., Roque, A., Andree, K.B., Christidis, A., Flores, C., Caixach, J., Campbell, K., Detection of tetrodotoxins in juvenile pufferfish Lagocephalus sceleratus (Gmelin, 1789) from the North Aegean Sea (Greece) by an electrochemical magnetic bead-based immunosensing tool, Food Chem., 290, 255-262 (2019). 

  31. Pan, Y., Wan, Z., Zhong, L., Li, X., Wu, Q., Wang, J., Wang, P., Label-free okadaic acid detection using growth of gold nanoparticles in sensor gaps as a conductive tag, Biomed. Microdevices, 19, 33-40 (2017). 

  32. Eissa, S., Ng, A., Siaj, M., Zourob, M., Label-free voltammetric aptasensor for the sensitive detection of microcystin-LR using graphene-modified electrodes, Anal. Chem., 86, 7551-7557 (2014). 

  33. Singh, M., Kaur, N., Comini, E., The role of self-assembled monolayers in electronic devices, J. Mater. Chem. C, 8, 3938-3955 (2020). 

  34. Nerngchamnong, N., Yuan, L., Qi, D.C., Li, J., Thompson, D., Nijhuis, C.A., The role of van der Waals forces in the performance of molecular diodes, Nat. Nanotechnol., 8, 113-118 (2013). 

  35. Leonardo, S., Toldra, A., Rambla Alegre, M., Fernandez Tejedor, M., Andree, K.B., Ferreres, L., Campbell, K., Elliott, C.T., O'Sullivan, C.K., Pazos, Y., Self-assembled monolayer-based immunoassays for okadaic acid detection in seawater as monitoring tools, Mar. Environ. Res., 133, 6-14 (2018). 

  36. Quan, P.L., Sauzade, M., Brouzes, E., dPCR: A technology review, Sensors, 18, 1271-1298 (2018). 

  37. Lim, D.R., Kim, H.R., Park, M.J., Chae, H.G., Ku, B.K., Nah, J.J., Ryoo, S.Y., Wee, S.H., Park, Y.R., Jeon, H.S., An improved reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay for sensitive and specific detection of serotype O foot-and-mouth disease virus, J. Virol. Methods, 260, 6-13 (2018). 

  38. de Souza, D.F., da Silva, P.P.F., Fontenele, L.F.A., Barbosa, G.D., de Oliveira Jesus, M., Efficiency, quality, and environmental impacts: A comparative study of residential artificial lighting, Energy Rep., 5, 409-424 (2019). 

  39. Geng, T., Novak, R., Mathies, R.A., Single-cell forensic short tandem repeat typing within microfluidic droplets, Anal. Chem., 86, 703-712 (2014). 

  40. Wood Bouwens, C., Lau, B.T., Handy, C.M., Lee, H., Ji, H.P., Single-color digital PCR provides high-performance detection of cancer mutations from circulating DNA, J. Mol. Diagn., 19, 697-710 (2017). 

  41. Lee, H.G., Kim, H.M., Min, J., Park, C., Jeong, H.J., Lee, K., Kim, K.Y., Quantification of the paralytic shellfish poisoning dinoflagellate Alexandrium species using a digital PCR, Harmful Algae, 92, 101726 (2020). 

  42. Kim, J.S., Park, K.W., Youn, S.H., Lim, W.A., Yoo, Y.D., Seong, K.A., Yih, W.H., Species diversity of the dinoflagellate genus Alexandrium in the coastal waters of Korea during summer 2013, The Sea, 21, 158-170 (2016). 

  43. Martin Gracia, B., Martin Barreiro, A., Cuestas Ayllon, C., Grazu, V., Line, A., Llorente, A., de la Fuente, J.M., Moros, M., Nanoparticle-based biosensors for detection of extracellular vesicles in liquid biopsies, J. Mat. Chem. B, 8, 6710-6738 (2020). 

  44. Wu, X., Chen, G., Shen, J., Li, Z., Zhang, Y., Han, G., Upconversion nanoparticles: a versatile solution to multiscale biological imaging, Bioconjugate Chem., 26, 166-175 (2015). 

  45. Mocan, T., Matea, C.T., Pop, T., Mosteanu, O., Buzoianu, A.D., Puia, C., Iancu, C., Mocan, L., Development of nanoparticle-based optical sensors for pathogenic bacterial detection, J. Nanobiotechnol., 15, 25-39 (2017). 

  46. Sun, A.L., Chai, J.Y., Xiao, T.T., Shi, X.Z., Li, X.J., Zhao, Q.L., Li, D.X., Chen, J., Development of a selective fluorescence nanosensor based on molecularly imprinted-quantum dot optosensing materials for saxitoxin detection in shellfish samples, Sens. Actuator B-Chem., 258, 408-414 (2018). 

  47. Bera, D., Qian, L., Tseng, T.K., Holloway, P.H., Quantum dots and their multimodal applications: A review, Materials, 3, 2260-2345 (2010). 

  48. Zhu, Y., Li, L., Zhang, C.G., Casillas, G., Sun, Z.Z., Yan, Z., Ruan, G.D., Peng, Z.W., Raji, A.R.O., Kittrell, C., Hauge, R.H., Tour, J.M., A seamless three-dimensional carbon nanotube graphene hybrid material, Nat. Commun., 3, 1-7 (2012). 

  49. Baig, N., Ihsanullah, Sajid, M., Saleh, T.A., Graphene-based adsorbents for the removal of toxic organic pollutants: A review, J. Environ. Manage., 244, 370-382 (2019). 

  50. Hu, X.G., Mu, L., Wen, J.P., Zhou, Q.X., Immobilized smart RNA on graphene oxide nanosheets to specifically recognize and adsorb trace peptide toxins in drinking water, J. Hazard. Mater., 213, 387-392 (2012). 

  51. Wang, Q., Fang, J.R., Cao, D.X., Li, H.B., Su, K.Q., Hu, N., Wang, P., An improved functional assay for rapid detection of marine toxins, saxitoxin and brevetoxin using a portable cardiomyocyte-based potential biosensor, Biosens. Bioelectron., 72, 10-17 (2015). 

  52. Ling, S.M., Xiao, S.W., Xie, C.J., Wang, R.Z., Zeng, L.M., Wang, K., Zhang, D.P., Li, X.L., Wang, S.H., Preparation of monoclonal antibody for brevetoxin 1 and development of ic-elisa and colloidal gold strip to detect brevetoxin 1, Toxins, 10, 75-85 (2018). 

  53. Cao, C.T., Li, P., Liao, H.M., Wang, J.P., Tang, X.H., Yang, L.B., Cys-functionalized AuNP substrates for improved sensing of the marine toxin STX by dynamic surfaceenhanced Raman spectroscopy, Anal. Bioanal. Chem., 412, 4609-4617 (2020). 

  54. Molinero Abad, B., Perez, L., Izquierdo, D., Escudero, I., Arcos-Martinez, M.J., Sensor system based on flexible screen-printed electrodes for electrochemical detection of okadaic acid in seawater, Talanta, 192, 347-352 (2019). 

  55. Zhang, Z.X., Zhang, C.Y., Luan, W.X., Li, X.F., Liu, Y., Luo, X.L., Ultrasensitive and accelerated detection of ciguatoxin by capillary electrophoresis via on-line sandwich immunoassay with rotating magnetic field and nanoparticles signal enhancement, Anal. Chim. Acta, 888, 27-35 (2015). 

  56. Elshafey, R., Siaj, M., Zourob, M., DNA aptamers selection and characterization for development of label-free impedimetric aptasensor for neurotoxin anatoxin-a, Biosens. Bioelectron., 68, 295-302 (2015). 

  57. Wang, R.Z., Zhong, Y.F., Wang, J.C., Yang, H., Yuan, J., Wang, S.H., Development of an ic-ELISA and immunochromatographic strip based on IgG antibody for detection of omega-conotoxin MVIIA, J. Hazard. Mater., 378, 120510 (2019). 

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