$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

식물추출물 항산화효능 기전의 일부로서의 활성산소 발생 억제 효과
Suppression of reactive oxygen species generation as a part of antioxidative effect of plant extracts 원문보기

한국식품과학회지 = Korean journal of food science and technology, v.53 no.6, 2021년, pp.706 - 714  

송선범 (서울시립대학교 생명과학과) ,  정구준 (서울시립대학교 생명과학과) ,  정희진 (부산대학교 약학대학) ,  장정윤 (부산대학교 약학대학) ,  정해영 (부산대학교 약학대학) ,  김남득 (부산대학교 약학대학) ,  이지현 (인하대학교 생명과학과) ,  민경진 (인하대학교 생명과학과) ,  박순영 (다인내추럴) ,  곽충실 (서울대학교 의과대학 노화고령사회연구소) ,  황은성 (서울시립대학교 생명과학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

세포 내에서의 활성산소(ROS) 생성을 억제하는 일은 항산화제의 작동방식으로 기존에 알려진 ROS의 화학적 소거보다 조직의 산화적 손상을 줄이는 방법으로서 효과가 뛰어날 것으로 기대되지만, 이러한 전략은 지금까지의 연구들에서 거의 검토되지 않고 있다. 본 연구에서는 항산화 효능이 알려진 식물시료들이 실제로 세포에서 ROS 생성을 제어하여 항산화 효과를 발휘하는지를 쇠뜨기, 가죽나무잎, 달맞이순, 그리고 토마토의 에탄올 추출물을 가지고 조사하였다. 이 네 가지 식물 시료들은 모두 비슷하게 세포내 ROS의 수준을 감소시켰다. 그러나, 가죽나무잎, 달맞이순, 그리고 토마토 시료들만이 미토콘드리아 질을 개선하여 미토콘드리아로부터의 ROS 생성을 감소시켰는데, 이들은 또한 세포와 조직내 lipofuscin과 malondialdehyde의 축적을 줄여서 뚜렷한 산화적 손상을 억제하는 효과를 보였다. 이들은 나아가서 초파리의 수명을 연장시키는 효과도 보였다. 미토콘드리아 질 향상 효과가 거의 없었던 쇠뜨기 시료는 산화적 손상물과 초파리 수명에 거의 영향을 미치지 못하였다. 이러한 결과는 식물 시료들의 항산화 효과가 ROS의 화학적 소거와 미토콘드리아 질의 향상을 통해 발현될 수 있는데, 후자의 효과가 실제로 체내에서 산화적 손상을 억제하는데 중요하게 작용할 가능성을 시사해 준다. 향후, 식물시료들의 항산화 효능에 대해서 이러한 ROS 발생억제 기전을 대상으로 조사하는 일은 그 유용성을 판단하는데 있어서 큰 도움이 될 것으로 기대된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Chemical scavenging of reactive oxygen species (ROS) is considered a major mechanism of antioxidant effects, but preventing ROS generation can be more efficient in attenuating oxidative damage. In this study, the extracts of plants, Solanum lycopersicum, Ailanthus altissima, Equisetum arvense, and O...

주제어

표/그림 (4)

참고문헌 (45)

  1. Ali, S.F., LeBel, C.P., Bondy, S.C. Reactive oxygen species formation as a biomarker of methylmercury and trimethyltin neurotoxicity. Neurotoxicology. 13: 637-648 (1992) 

  2. Armstead W. Cyclooxygenase-2-dependent superoxide generation contributes to age-dependent impairment of G protein-mediated cerebrovasodilation. Anesthesiology. 98: 1378-1383 (2003) 

  3. Balaban RS, Nemoto S, Finkel T. Mitochondria, Oxidants, and Aging Cell. 120: 483-495 (2005) 

  4. Beckman JS, Crow JP. Pathological Implications of Nitric Oxide, Superoxide and Peroxynitrite Formation. Biochem. Soc. T. 21: 330-334 (1993) 

  5. Barth S, Glick D, Macleod KF. Autophagy: assays and artifacts. J. Pathol. 221: 117-124 (2010) 

  6. Borra MR, Smith BC, Denu JM. Mechanism of Human SIRT1 Activation by Resveratrol. J. Biol. Chem. 280: 17187-17195 (2005) 

  7. Brand MD. Mitochondrial generation of superoxide and hydrogen peroxide as the source of mitochondrial redox signaling. Free Radical Bio. Med. 100: 14-31 (2016) 

  8. Chung HY, Kim DH, Lee EK, Chung KW, et al. Redefining Chronic Inflammation in Aging and Age-Related Diseases: Proposal of the Senoinflammation Concept. Aging Dis. 10: 367-382 (2019) 

  9. Cuervo AM, Bergamini E, Brunk UT, Droge W, Ffrench M, Terman A. Autophagy and aging: the importance of maintaining "clean" cells. Autophagy. 1: 131-140 (2005) 

  10. Dai DF, Chiao YA, Marcinek DJ, Szeto HH, Rabinovitch PS. Mitochondrial oxidative stress in aging and health span. Longev. Healthspan. 3:6. Doi: 10.1186/2046-2395-3-6. eCollection (2014) 

  11. Foti MC. Antioxidant properties of phenols. J. Pharm. Pharmacol. 59: 1673-1685 (2007) 

  12. Ge P, Dawson VL, Dawson TM. PINK1 and Parkin mitochondrial quality control: a source of regional vulnerability in Parkinson's disease. Mol. Neurodegener. 15: 20-32 (2020) 

  13. Gordon MH. The mechanism of antioxidant action in vivo. Food Antioxidants. Springer, Dordrecht. University of Reading. UK. pp. 1-18 (1990) 

  14. Harman, D. Aging: a theory based on free radical and radiation chemistry. J. Gerontol. 11: 298-300 (1956) 

  15. Haigis MC, Yankner BA. The Aging Stress Response. Mol. Cell. 40: 333-344 (2010) 

  16. Hall JA, Dominy JE, Lee YJ, Puigserver P. The sirtuin family's role in aging and age-associated pathologies. J. Clin. Invest. 123: 973 (2013) 

  17. Hwang ES, Song SB. Nicotinamide is an inhibitor of SIRT1 in vitro, but can be a stimulator in cells. Cell. Mol. Life Sci. 74: 3347-3362 (2017) 

  18. Jang SY, Kang HT, Hwang ES. Nicotinamide-induced Mitophagy: Event mediated by high NAD+/NADH ratio and SIRT1 Protein activation. J. Biol. Chem. 287: 19304-19314 (2012) 

  19. Jiang LN, Liu YB, Li BH. Lycopene exerts anti-inflammatory effect to inhibit prostate cancer progression. Asian J. Androl. 21: 80-85 (2019) 

  20. Jin M, Bae KH, Chang HW, Son JK. Anti-inflammatory Compounds from the Leaves of Ailanthus altissima. Biomol. Ther. 17: 86-91 (2009) 

  21. Jin SM, Youle R. PINK1- And Parkin-mediated Mitophagy at a Glance. J. Cell Sci. 125: 795-799 (2012) 

  22. Jung KJ, Lee EK, Kim SJ, Song CW, Maruyama N, Ishigami A, Kim ND, Im DS, Yu BP, Chung HY. Anti-inflammatory activity of SMP30 modulates NF-κB through protein tyrosine kinase/phosphatase balance. J. Mol. Med. 93: 343-356 (2015) 

  23. Kang HT, Hwang ES. Nicotinamide enhances mitochondria quality through autophagy activation in human cells. Aging Cell. 8: 426-438 (2009) 

  24. Kang HT, Lee HI, Hwang ES. Nicotinamide extends replicative lifespan of human cells. Aging Cell. 5: 423-436 (2006) 

  25. Kim EY, Baik IH, Kim JH, Kim SR, Rhyu MR. Screening of the Antioxidant Activity of Some Medicinal Plants. Kor. J. Food Sci. Tech. 36: 333 (2004) 

  26. Kong MR, Lee YS. Anti-oxidative and Anti-aging Properties of Hot Water Extracts from Fertile and Sterile E. arvense Stems. J. Invest. Cosmetology. 11: 315-324 (2015) 

  27. Korolchuk V, miwa S, Carroll B, von zglinicki T. Mitochondria in Cell Senescence: Is Mitophagy the Weakest Link? EbioMedicine 21: 7-13 (2017) 

  28. Kwak JY, Ham HJ, Kim CM, Hwang ES. Nicotinamide exerts antioxidative effects on senescent cells. Mol. Cells 38: 229-235 (2015) 

  29. Kwak CS, Lee JH. In vitro Antioxidant and Anti-inflammatory Effects of Ethanol Extracts from Sprout of Evening Primrose (Oenothera laciniata) and Gooseberry (Actinidia argute). J Korean Soc. Food Sci. Nutr. 43: 207-215 (2014) 

  30. Liu T, Zhang L, Joo D, Sun SC. NF-κB signaling in inflammation. Signal Transduct. Target Ther. 2: 17023 (2017) 

  31. Liu Z, Ren Z, Zhang J, Chuang CC, Kandaswamy E, Zhou T, Zuo L. Role of ROS and nutritional antioxidants in human diseases. Front. Physiol. 9: 477 (2018) 

  32. Meo SD, Reed TT, Venditti P, Victor VM. Role of ROS and RNS sources in physiological and pathological conditions. Oxid. Med. Cell Longev. 1245049 (2016) 

  33. Moore K, Roberts LJ. Measurement of Lipid Peroxidation. Free Radical Res. 28: 659-671 (1998) 

  34. Mori T, Ishigami A, Seyama K, Onai R, Kubo S, Shimizu K, Maruyama N, Fukuchi Y. Senescence Marker protein-30 Knockout Mouse as a Novel Murine Model of Senile Lung. Pathol. Int. 54: 167-173 (2004) 

  35. Namiki M. Antioxidants/antimutagens in food. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 9: 273-300 (1990) 

  36. Ohkawa H, Ohishi N, Yagi N. Assay for lipid peroxides in animal tissue by thiobarbituric acid reaction. Anal. Biochem. 95: 351-358 (1979) 

  37. Perveen R, Suleria HAR, Anjum FM, et al. Tomato (Solanum lycopersicum) Carotenoids and Lycopenes Chemistry; Metabolism, Absorption, Nutrition, and Allied Health Claims-A Comprehensive Review. Critic. Rev. Food Sci. Nutr. 55: 919-929 (2015) 

  38. Rudeman NB, Xu XJ, Nelson L, Cacicedo JM, Saha AK, Lan F, Ido Y. AMPK and SIRT11: a long-standing partnership? Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 298: E751-760 (2010) 

  39. Salminen A, Kaarniranta K. AMP-activated protein kinase (AMPK) controls the aging process via an integrated signaling network. Ageing Res. Rev. 11: 230-241 (2012) 

  40. Santos-Sanchez NF, Salas-Coronado R, Villanueva-Canongo C, Hernandez-Carlos B. Antioxidant Compounds and Their Antioxidant Mechanism. In: Antioxidants. IntechOpen. (2019) 

  41. Scialo F, Fernandez-Ayala DJ, Sanz A. Role of Mitochondrial Reverse Electron Transport in ROS Signaling: Potential Roles in Health and Disease. Front. Physiol. 8: 428 (2017) 

  42. Sohal RS, Brunk UT. Lipofuscin as an indicator of oxidative stress and aging. Adv. Exp. Med. Biol. 266:17-26 (1989) 

  43. Song YS, Lee BY, Hwang ES. Dinstinct ROS and biochemical profiles in cells undergoing DNA damage-induced senescence and apoptosis. Mech. Ageing Dev. 126: 580-590 (2005) 

  44. Song SB, Jang SY, Kang HT, Wei B, Jeoun UW, Yoon GS, Hwang ES. Modulation of Mitochondrial Membrane Potential and ROS Generation by Nicotinamide in a Manner Independent of SIRT1 and Mitophagy. Mol. Cells. 40: 503-514 (2017) 

  45. Yoshii SR, Mizushima N. Monitoring and measuring autophagy. Int. J. Mol. Sci. 18: 1865 (2017) 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로