$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

봄철 제주 남부해역 난·자치어의 수직 분포
Vertical Distribution of Icthyoplankton in the Southern Waters of Jeju Island During Spring 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.55 no.2, 2022년, pp.146 - 153  

이보람 (국립수산과학원 수산자원연구센터) ,  지환성 (국립수산과학원 수산자원연구센터) ,  유효재 (국립수산과학원 수산자원연구센터) ,  황강석 (국립수산과학원 독도수산연구센터) ,  김두남 (국립수산과학원 원양자원과)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The vertical distribution and abundance of icthyoplankton in the southern waters of Jeju Island during June 2020 were investigated. Fish eggs and larvae were identified using the mitochondrial DNA cytochrome c oxidase subunit I (mtDNA COI) and the 16S rRNA gene. During this period, fish eggs of 23 t...

주제어

표/그림 (7)

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

제안 방법

  • DNA 추출을 위해 에탄올에 고정된 type별 어란은 니들로 한 개씩 으깬 다음 GeneAll Exgene™ Clinic SV DNA extraction kit (GeneAll, Seoul, Korea)를 이용하여 추출하였다
  • 어란과 자치어의 형태 관찰은 입체해부현미경(SZX-16; Olympus, Tokyo, Japan)을 사용하였으며, 어란의 경우 멸치 어란을 제외한 기타 어란들을 대상으로 난경, 배체발생, 위란강 넓이 등의 특징으로 type을 구분하여 측정하였다. 어란은 해역별, 정점별로 type을 구분하여 각 type별로 5개체 이상씩 분자 동정하였으며, 자치어의 경우 형태 정보가 부족한 미동정 자어 및 부화 자 어를 대상으로 분자동정을 추가로 실시하였다.
  • 어란과 자치어의 형태 관찰은 입체해부현미경(SZX-16; Olympus, Tokyo, Japan)을 사용하였으며, 어란의 경우 멸치 어란을 제외한 기타 어란들을 대상으로 난경, 배체발생, 위란강 넓이 등의 특징으로 type을 구분하여 측정하였다. 어란은 해역별, 정점별로 type을 구분하여 각 type별로 5개체 이상씩 분자 동정하였으며, 자치어의 경우 형태 정보가 부족한 미동정 자어 및 부화 자 어를 대상으로 분자동정을 추가로 실시하였다.
  • 중합효소연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR)은 AccuPower® PCR Premix에 genomic DNA 4 μL를첨가한 후 20 μL가 될 때까지 3차 증류수를 넣고 Thermal cycler (C1000™; Bio-Rad, Hercules, CA, USA)를 이용하여 다음과 같이 PCR을 수행하였다[Initial denaturaion 95°C, 3 min; PCR reaction 37 cycle (denaturation 94°C, 3 sec; annealing 52°C, 30 sec; extension 72°C, 1 min); final extension 72°C, 5 min]

데이터처리

  • kr)에 등록된 일몰과 일출 시간을 기준으로 구분하였다. 어란과 자치어의 밀도에 대한 주∙야간 차이를 검정하기 위해 Mann-Whitney U test를 실시하였다.
  • , 2018)의 Kimura-2-param- eter 모델(Kimura, 1980)로 계산하였다. 종 동정은 NCBI (Na- tional Center for Biotechnology Information)에 등록된 유전정보들과 비교를 통해 실시하였다. 주∙야간 구분은 한국천문연구원 천문우주지식정보(Korea Astronomy and Space Science Institute, www.

이론/모형

  • , 1994)를 사용하여 정렬하였다. 염기서열 간유 전거리는 Mega X (Kumar et al., 2018)의 Kimura-2-param- eter 모델(Kimura, 1980)로 계산하였다. 종 동정은 NCBI (Na- tional Center for Biotechnology Information)에 등록된 유전정보들과 비교를 통해 실시하였다.
  • 1을 이용하여 다음과 같은 조건으로 cycle sequenc- ing하여 얻었다[PCR reaction 35 cycles (denaturation 94°C, 10 sec; annealing 56°C, 10 sec; extension 60°C, 3 min)]. 염기서열의 정렬은 BioEdit version 7 (Hall, 1999)의 Clustal W (Thompson et al., 1994)를 사용하여 정렬하였다. 염기서열 간유 전거리는 Mega X (Kumar et al.
  • 종 동정은 NCBI (Na- tional Center for Biotechnology Information)에 등록된 유전정보들과 비교를 통해 실시하였다. 주∙야간 구분은 한국천문연구원 천문우주지식정보(Korea Astronomy and Space Science Institute, www.kasi.re.kr)에 등록된 일몰과 일출 시간을 기준으로 구분하였다. 어란과 자치어의 밀도에 대한 주∙야간 차이를 검정하기 위해 Mann-Whitney U test를 실시하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (44)

  1. Boehlert GW, Watson W and Sun LC. 1992. Horizontal and vertical distributions of larval fishes around an isolated oceanic island in the tropical Pacific. Deep Sea Res Part I Oceanogr Res Pap 39, 439-466. https://doi.org/10.1016/0198-0149(92)90082-5. 

  2. Coombs SH. 1981. A density-gradient column for determining the specific gravity of fish eggs, with particular reference to eggs of the mackerel Scomber scombrus. Mar Biol 63, 101-106. https://doi.org/10.1007/BF00394667. 

  3. Coombs SH, Boyra G, Rueda LD, Uriarte A, Santos M, Conway DVP and Haliday NC. 2004. Buoyancy measurements and vertical distribution of eggs of sardine (Sardina pilchardus) and anchovy (Engraulis encrasicolus). Mar Biol 145, 959-970. https://doi.org/10.1007/s00227-004-1389-4. 

  4. Fiksen O and Giske J. 1995. Vertical distribution and population dynamics of copepods by dynamic optimization. ICES J Mar Sci 52, 483-503. https://doi.org/10.1016/1054-3139(95)80062-X. 

  5. Fiksen O, Jorgensen C, Kristiansen T, Vikebo F and Huse G. 2007. Linking behavioural ecology and oceanography: larval behaviour determines growth, mortality and dispersal. Mar Ecol Prog Ser 347, 195-205. https://doi.org/10.3354/meps06978. 

  6. Gronkjaer P and Wieland K. 1997. Ontogenetic and environmental effects on vertical distribution of cod larvae in the Bornholm Basin, Baltic Sea. Mar Ecol Prog Ser 154, 91-105. https://doi.org/10.3354/meps154091. 

  7. Hall TA. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp 41, 95-98. 

  8. Hyun KH, Pang IC, Rho HK and Kim JT. 1998. Tsushima Warm current passing through Cheju-Goto channel. Bull Mar Res Inst Cheju Nat Univ 22, 91-104. 

  9. Irisson JO, Paris CB, Guigand C and Planes S. 2010. Vertical distribution and ontogenetic ''migration'' in coral reef fish larvae. Limol Ocenogr 55, 909-919. https://doi.org/10.4319/lo.2010.55.2.0909. 

  10. Ji HS, Yoo HJ, Kim JK, Kim DN, Kim ST, Kim JN, Kim HJ, Moon SY, Shin DH, Oh TY, Yoo JT, Yoon EA, Lee SK, Lee HW, Lee HB, Im YJ, Jeong JM, Choi JH and Hwang KS. 2020. Fish eggs, larvae and juveniles of Korea. Hangeul Graphics, Busan, Korea, 442. 

  11. Johnson DL and Fogarty MJ. 2013. Intercalibration of MOCNESS and Bongo nets: Assessing relative efficiency for ichthyoplankton. Prog Oceangr 108, 43-71. https://doi.org/10.1016/j.pocean.2012.10.007. 

  12. Jung KM, Kang S, Cha HK, Choi KH and MS Myksvoll. 2013. Buoyancy and vertical distribution of mackerel Scomber japonicus eggs in korean waters. Korean J Fish Aquat Sci 46, 957-965. https://doi.org/10.5657/KFAS.2013.0957. 

  13. Kendal AW and Naplin NA. 1981. Diel-depth distribution of summer ichthyoplankton in the Middle Atlantic Bight. Fish Bull 79, 705-726. 

  14. Kim J and Lo NCH. 2001. Temporal variation of seasonality of egg production and the spawning biomass of Pacific anchovy, Engraulis japonicus, in the southern waters of Korea in 1983-1994. Fish Oceanogr 10, 297-310. https://doi.org/10.1046/j.1365-2419.2001.00175.x. 

  15. Kim SR, Kim JJ, Stockhausen WT, Kim CS, Kang S, Cha HK, Ji HW, Jang SH and Baek HJ. 2019. Characteristics of the eggs and larval distribution and transport process in the early life stage of the chub mackerel Scomber japonicus near Korean waters. Korean J Fish Aquat Sci 52, 666-684. https://doi.org/10.5657/KFAS.2019.0666. 

  16. Kim JY and Choi YM. 1988. Vertical distribution of anchovy, Engraulis japonica eggs and larvae. Korean J Fish Aquat Sci 21, 139-144. 

  17. Kimura M. 1980. A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. J Mol Evol 16, 111-120. https://doi.org/10.1007/bf01731581. 

  18. Kristiansen T, Joergensen C, Lough RG, Vikeboe F and Fiksen O. 2009. Modeling rule-based behavior: habitat selection and the growth-survival trade-off in larval cod. Behav Ecol 20, 490-500. https://doi.org/10.1093/beheco/arp023. 

  19. Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C and Tamura K. 2018. MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol Biol Evol 35, 1547-1549. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096. 

  20. Lampert W, McCauley E and Manly BFJ. 2003. Trade-offs in the vertical distribution of zooplankton: ideal free distribution with costs?. Proc R Soc Lond B 270, 765-773. https://doi.org/10.1098/rspb.2002.2291. 

  21. Lee SJ and Go YB. 2005. Occurrence and distribution of the eggs and larvae of anchovy, Engraulis japonicus, in Jeju Strait, Korea, with descriptions of environmental characteristics. J Oceanogr 61, 603-611. https://doi.org/10.1007/s10872-005-0068-5. 

  22. Lee EK, Yoo JM, Kim S and Lee YC. 1996. Vertical distribution of anchovy, Engraulis japonicus larvae in the Korea Strait. Korean J Ichthyol 8, 47-56. 

  23. Lee SJ, Go YB and Kim BJ. 2006. Seasonal variation of species composition and distribution of fish eggs and larvae in the western part of Jeju Island, Korea. Korean J Ichthyol 18, 129-140. 

  24. Lee SJ, Kim JB and Han SH. 2016. Distribution of mackerel, Scomber japonicus eggs and larvae in the coast of Jeju Island, Korea in spring. J Korean Soc Fish Technol 5, 121-129. https://doi.org/10.3796/KSFT.2016.52.2.121. 

  25. Lockwood SJ, Nichols JH and Dawson WA. 1981. The estimation of a mackerel (Scomber scombrus L.) spawning stock size by plankton survey. J Plankton Res 3, 217-233. https://doi.org/10.1093/ plankt/3.2.217. 

  26. MABIK (Marine Biodiversity Institute of Korea). 2021. National list of marine species. Namu Press, Seocheon, Korea. 

  27. Munk P, Kiorboe T and Christensen V. 1989. Vertical migrations of herring, Clupea harengus, larvae in relation to light and prey distribution. Environ Biol Fishes 26, 87-96. https://doi.org/10.1007/bf00001025. 

  28. Nissling A. 2004. Effects of temperature on egg and larval survival of cod (Gadus morhua) and sprat (Sprattus sprattus) in the Baltic Sea - implications for stock development. Hydrobiologia 514, 115-123. https://doi.org/10.1007/978-94-017-0920-0_11. 

  29. Okiyama M. 2014. An atlas of the early stage fishes in Japan. (2nd edition). Tokai University Press, Tokyo, Japan, 1639. 

  30. Park S and Chu PC. 2006. Thermal and haline fronts in the Yellow/East China Seas: Surface and subsurface seasonality comparison. J Ocengr 62, 617-638. https://doi.org/10.1007/s10872-006-0081-3. 

  31. Palumbi SR. 1996. Nucleic acids II: The polymerase chain reaction. In: Molecular systematics. Hilli DM, Moritz C and Mable BK, eds. Sinauer and Associates Inc., Sunderland, MA, U.S.A., 205-247. 

  32. Pipe PK, Coombs SH and Clarke KR. 1981. On the sample validity of the Longhurst-Hardy plankton recorder for fish eggs and larvae. J Plankton Res 3, 675-683. https://doi.org/10.1093/plankt/3.4.675. 

  33. Roepke A. 1993. Do larvae of mesopelagic fishes in the Arabian Sea adjust their vertical distribution to physical and biological gradients?. Mar Ecol Progs Ser 101, 1969-1984. https://doi.org/10.3354/MEPS101223. 

  34. Sassa C. 2001. Ecological study of myctophid fish larvae and juveniles in the western North Pacific. Ph.D. Dissertation, University of Tokyo, Tokyo, Japan. 

  35. Sassa C, Moser HG and Kwaguchi K. 2002. Horizontal and vertical distribution patterns of larval myctophid fishes in the Kuroshio current region. Fish Oceanogr 11, 1-10. https://doi.org/10.1046/j.1365-2419.2002.00182.x. 

  36. Sassa C and Kawaguchi K. 2006. Occurrence patterns of mesopelagic fish larvae in Sagami Bay, Central Japan. J Oceanogr 62, 143-153. https://doi.org/10.1007/s10872-006-0040-z. 

  37. Smart TI, Siddon EC and Duffy-Anderson JT. 2013. Vertical distributions of the early life stages of walleye pollock (Theragra chalcogramma) in the Southeastern Bering Sea. Deep Sea Res II Top Stud Oceanogr 94, 201-210. https://doi.org/10.1016/j.dsr2.2013.03.030. 

  38. Smith KA and Suthers IM. 1999. Displacement of diverse ichthyoplankton assemblages by a coastal upwelling event on the Sydney shelf. Mar Ecol Prog Ser 176, 49-62. https://doi.org/10.3354/meps176049. 

  39. Thompson JD, Higgins DG and Gibson TJ. 1994. Clustal W: Improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic acids Res 22, 4673-4680. https://doi.org/10.1093/nar/22.22.4673. 

  40. Uehara D, Shoji J, Ochi Y, Yamaguchi S, Nakaguchi K, Shibata J and Tomiyama T. 2018. Diel changes in the vertical distribution of larval cutlassfish Trichiurus japonicus. J Mar Biol Assoc U K 99, 517-523. https://doi.org/10.1017/S002531541800019X. 

  41. Ward RD, Zemlak TS, Innes BH, Last PR and Hebert PDN. 2005. DNA barcoding Australia's fish species. Phil Trans R Soc B 360, 1847-1857. https://doi.org/10.1098/rstb.2005.1716. 

  42. Watanabe H, Moku M, Kawaguchi K, Ishimaru K and Ohno A. 1999. Diel vertical migration of myctophid fishes (Family Myctophidae) in the transitional waters of the western North Pacific. Fish Oceanogr 8, 115-127. https://doi.org/10.1046/j.1365-2419.1999.00103.x. 

  43. Watanabe T. 1970. Morphology and ecology of early stages of life in Japanese common mackerel, Scomber japonicus Houttuyn, with special reference to fluctuation of population. Bull Tokai Reg Fish Res Lab 62, 1-283. 

  44. Wiebe PH, Burt KH, Boyd SH and Morton AW. 1976. A multiple opening/closing net and environmental sensing system for sampling zooplankton. J Mar Res 34, 313-326. 

저자의 다른 논문 :

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로