[논문]기름가자미 Glyptocephalus stelleri의 군성숙도와 주 산란기

신소령; 김현진; 오한영; 이정식; 송혜진; 김재원

doi:10.23005/ksmls.2022.7.1.37

기름가자미 Glyptocephalus stelleri의 군성숙도와 주 산란기
Sexual Group Maturity and Main Spawning Period of Glyptocephalus stelleri (Teleostei: Pleuronectidae) 원문보기

한국해양생명과학회지 = Journal of marine life science, v.7 no.1, 2022년, pp.37 - 44

신소령 (전남대학교 수산생명의학과) , 김현진 (전남대학교 수산생명의학과) , 오한영 (전남대학교 수산생명의학과) , 이정식 (전남대학교 수산생명의학과) , 송혜진 (국립수산과학원 독도수산연구센터) , 김재원 (강원도립대학교 스마트해양양식학과)

초록
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연구는 기름가자미의 성비, 군성숙도 및 주 산란기에 관한 정보를 얻기 위해 수행하였다. 성비(암:수)는 1:0.54 (n=189:103, 암컷 64.7%)였으며, 전장이 증가함에 따라 암컷의 비율이 높아지는 경향을 보였다. 난모세포 발달패턴은 동일 난소 내에서 여러 단계의 난모세포군이 확인되는 난군동기발달형이었다. 로지스틱 회귀모델에 의해 분석된 50% 성숙 전장은 암, 수 각각 28.51 cm과 30.49 cm였다. GSI는 암, 수 각각 4월과 3월에 가장 높았으며, 주 산란기는 4-5월로 분석되었다.

Abstract ▼ AI-Helper

This study was performed to obtain information on the sex ratio, size at sexual group maturity, and main spawning period of Glyptocephalus stelleri. The sex ratio (female: male) was 1:0.54 (n=189:103, 64.7% female), and the frequency of females in the population tended to increase with total length. The oocyte development pattern was group synchronous development, in which oocyte groups at different stages were identified within the same ovary. The total length at 50% sexual group maturity was analyzed using a logistic regression model, and was determined to be 28.51 (female) and 30.49 cm (male). The gonadosomatic index (GSI) displayed the highest values in April (female) and March (male), and the main spawning period being in April to May.

주제어

표/그림 (9)

그림 Fig. 1. External morphology and morphometric characteristics of Glyptocephalus stelleri. BL: body length, TL: total length.
그림 Fig. 2. Monthly changes in gonadosomatic index (GSI) of Glyptocephalus stelleri and water temperature.
표 Table 1. Sex ratio with total length of Glyptocephalus stelleri
그림 Fig. 3. Ovarian developmental stage of Glyptocephalus stelleri. A: resting stage, B: growing stage, C: active vitellogenic oocytes of growing stage, D: mature stage, E: ripe stage, F: spent and degenerative stage. Do: degenerative oocytes, Eyg: eosinophilic yolk granules, Fl: follicle layer, N: nucleus, No:nucleolus, Oc" oocytes, Ol: ovarian lobule, Op: ooplasm, Zr: zona radiata. A, E and F: Masson trichrome stain. B-D: H-E stain.
그림 Fig. 4. Testicular developmental stage of Glyptocephalus stelleri. A: resting stage, B: growing stage, C and D: mature stage, E: ripe stage, F: spent and degenerative stage. Sc: spermatocytes, Sd: spermatids, Sg: spermatogonia, Sp: sperm, Tc: testicular cyst, Tl: testicular lobule, Uds: undischarged sperm. A-D: H-E stain. E and F: Masson trichrome stain.
그림 Fig. 5. Annual frequency of gonadal development stage in Glyptocephalus stelleri.
그림 Fig. 6. Monthly change in frequency of gonadal development stage in Glyptocephalus stelleri and water temperature.
그림 Fig. 7. Relationship between total length (TL) and sexual group maturity in Glyptocephalus stelleri.
표 Table 2. Sexual maturity with total length of Glyptocephalus stelleri

AI 본문요약
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문제 정의

본 연구는 우리나라 동해안에 서식하는 기름가자미의 성비, 성숙체장, 주 산란기 등을 분석하여 이들의 생식생물학적 정보를 제공하고자 하였다.

제안 방법

계측형질을 측정한 다음 해부하여 생식소를 적출한 후 10% 중성 포르말린으로 고정 및 수세 후, 파라핀 절편법에 의해 두께 4-6 μm의 연속절편을 제작하였다
생식소 발달단계는 각 발달단계에 속한 생식세포들의 우점 정도에 따라 암, 수 모두 휴지기(resting stage), 성장기(growing stage), 성숙기(mature stage), 완숙기(ripe stage), 방출 및 퇴화기(spent and degenerative stage)로 구분하였다.
5%의 성숙체장을 추정하였다. 성숙체장은 전장을 2.0 cm 간격으로 구분하여 같은 크기에 속하는 개체 가운데 성숙기 이후의 생식소 조직상을 보이는 개체를 성숙 개체로 판정하여 분석하였다.
연구에서는 로지스틱 모델을 사용하여 50%, 75%, 97.5%의 성숙체장을 추정하였다. 성숙체장은 전장을 2.

대상 데이터

연구에 사용된 기름가자미 Glyptocephalus stelleri는 2020년 1월에서 10월까지 경상북도 감포 근해에서 동해구 중형 외끌이 저인망으로 채집하였다. 전장 29.
전장 29.3 (±4.4) cm, 체중 215.2 (±122.6) g의 292개체를 사용하였다(Fig
제작된 조직표본은 Mayer's hematoxylin-0.5% eosin (H-E) 이중염색과 Masson 삼중염색을 실시하였다.

성능/효과

1월부터 10월까지 난소 발달단계 출현율은 성숙기 33.7%, 성장기 28.9%, 휴지기 18.7%, 방출 및 퇴화기 11.8%, 완숙기 7.0%로 나타났다(Fig. 5).
휴지기의 난소에서는 주로 난원세포와 난황형성전기의 난모세포들이 관찰되었으며(Fig. 3A), 성장기 난소에서는 난황형성전기의 난모세포와 난황형성개시기의 난모세포들과 일부 난황형성활성기의 난모세포들이 관찰되었다. 난황형성전기의 난모세포는 H-E 염색에서 세포질이 호염기성을 보였다.
개체의 크기에 따른 성비 (암:수)는 전장이 증가함에 따라 암컷의 비율이 높아지는 경향을 보였다. 전체 292개체 가운데 암컷은 189개체, 수컷은 103개체로 성비는 1:0.
기름가자미의 난모세포 발달패턴은 성장기 및 성숙기 난소 내에서 여러 단계의 난모세포군이 확인되는 난군동기발달형이었다. 휴지기의 난소에서는 주로 난원세포와 난황형성전기의 난모세포들이 관찰되었으며(Fig.
기름가자미의 연중 정소 발달단계 출현율은 휴지기와 성장기가 각각 30.5%, 성숙기 20.0%, 완숙기 10.5%, 방출 및 퇴화기 8.6%로 나타났다(Fig. 5).
난소 발달단계별 출현율의 월 변화는 1월에는 성장기와 성숙기가 각각 41.7%와 50.0%로 높은 비율을 차지하였고, 2월에는 성숙기와 완숙기가 각각 54.6%, 18.2%로 성숙기의 비율이 증가하였다. 3월에는 성숙기가 50.
난황형성전기의 난모세포는 H-E 염색에서 세포질이 호염기성을 보였다. 난황형성개시기의 난모세포는 인의 수가 증가하였으며, 난황형성활성기에는 여포세포층이 발달하고 세포질의 대부분은 호산성 난황과립으로 채워져 있었다(Fig. 3B, C).
3A), 성장기 난소에서는 난황형성전기의 난모세포와 난황형성개시기의 난모세포들과 일부 난황형성활성기의 난모세포들이 관찰되었다. 난황형성전기의 난모세포는 H-E 염색에서 세포질이 호염기성을 보였다. 난황형성개시기의 난모세포는 인의 수가 증가하였으며, 난황형성활성기에는 여포세포층이 발달하고 세포질의 대부분은 호산성 난황과립으로 채워져 있었다(Fig.
4D, E). 방출 및 퇴화기에 정소의 수질부에서는 방정 후 잔존 정자들이 관찰되었으나 피질부에서는 정모세포와 정세포들이 주를 이루고 있었다(Fig. 4F).
3E). 방출 및 퇴화기에는 산란 후 잔존 난모세포의 퇴화 및 흡수가 관찰되었다(Fig. 3F).
3B, C). 성숙기의 난소에서는 성숙 난모세포들이 주를 이루었는데, 이들은 거치화되고 동물극으로 이동한 핵을 가지며, 잘 발달된 여포세포층과 호산성의 방사대 그리고 세포질의 대부분은 호산성 난황과립들이 차지하고 있었다(Fig. 3D).
4B). 성숙기의 정소에서는 확장된 정소 소낭 내에 H-E 염색에서 호염기성으로 반응하는 정세포를 주로 확인할 수 있었으며(Fig. 4C), 완숙기의 정소는 H-E 염색에서 강한 호염기성을 나타내는 정자들로 채워져 있었다(Fig.
96 cm였다. 수컷의 50% 성숙 전장은 30.49 cm였으며, 75%, 97.5% 성숙 전장은 각각 39.38 cm, 60.12 cm였다(Fig. 7).
79로 가장 낮은 값을 보였다. 수컷의 GSI는 1월과 2월에 증가하기 시작하여 3월에는 1.70으로 가장 높은 값을 나타냈으며, 5월에는 0.40으로 가장 낮은 값을 보였다(Fig. 2).
암컷 189개체, 수컷 103개체를 전장 2 cm 구간으로 구분하여 성숙도를 조사한 결과는 Table 2와 같으며, 이를 로지스틱 식에 의해 분석한 결과, 기름가자미 암컷의 50% 성숙 전장은 28.51 cm였으며, 75%, 97.5% 성숙 전장은 각각 34.95 cm, 49.96 cm였다. 수컷의 50% 성숙 전장은 30.
암컷의 GSI는 2월과 3월에서는 각각 8.01, 7.86으로 증가하기 시작하여 4월에 9.34로 조사 기간 중 가장 높았으며 5월에는 5.01로 감소하기 시작하여 6월에 2.79로 가장 낮은 값을 보였다. 수컷의 GSI는 1월과 2월에 증가하기 시작하여 3월에는 1.
개체의 크기에 따른 성비 (암:수)는 전장이 증가함에 따라 암컷의 비율이 높아지는 경향을 보였다. 전체 292개체 가운데 암컷은 189개체, 수컷은 103개체로 성비는 1:0.54로 암컷의 비율이 높았으며, 암컷의 비율은 64.7%였다(Table 1).
5). 정소 발달단계의 출현율 변화는 1월에는 성장기와 성숙기가 각각 66.7%와 16.7%를 차지하였으며, 2월에는 성장기와 성숙기가 44.4%와 33.3%로 성숙기의 비율이 증가하였다. 3월에는 성숙기 및 완숙기의 비율이 각각 12.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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