$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

라만 기반 치매 모델의 뇌조직 분광 특성 측정
Ex Vivo Raman Spectroscopy Measurement of a Mouse Model of Alzheimer's Disease 원문보기

한국광학회지 = Korean journal of optics and photonics, v.33 no.6, 2022년, pp.331 - 337  

고관휘 (연세대학교 공과대학 전기전자공학부) ,  서영희 (연세대학교 의과대학 신경외과학교실) ,  임성민 (연세대학교 공과대학 전기전자공학부) ,  이홍기 (연세대학교 공과대학 전기전자공학부) ,  박지영 (연세대학교 의과대학 신경외과학교실) ,  장원석 (연세대학교 의과대학 신경외과학교실) ,  김동현 (연세대학교 공과대학 전기전자공학부)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

비탄성적 산란에 의한 빛의 방출 현상을 이용한 라만 분광법 기술은 무표지 방식으로 분자를 식별하는 기술로 바이오 의학 및 재료 산업에 이르기까지 다양한 분야에서 연구되고 있다. 광프로브 기반 라만 분광기는 국소 부위의 화학 분석을 최소 침습 방식으로 측정할 수 있어 수술 중 실시간 진단 기술로 적용할 수 있는 가능성을 내포하고 있다. 본 연구에서는 화학 물질의 농도별 변화에 따른 라만 신호의 변화를 살펴보아 라만 실험 장치의 캘리브레이션을 진행하였으며, 정상 쥐와 아밀로이드 베타 플라크가 축적된 5xFAD 치매성 돌연변이 모델의 대뇌 조직을 대상으로 라만 신호 특성을 측정 및 비교 분석하여 알츠하이머씨 병의 진단을 위한 가능성을 탐구하였다. 또한 대표적인 치매 원인 물질인 아밀로이드 베타에 대한 라만 신호 측정을 병행하여 치매 진단에 대한 적용을 교차 검증하였다. 본 라만 분광법 연구를 통해 치매 진단에 있어 기존문진 검사 및 뇌 영상 진단을 대체하여 정밀하게 판별할 수 있는 하나의 진단 지표로서의 가능성을 보았으며, 추후 뇌신경계뿐만 아니라 인체의 다양한 장기 및 질병에 적용시켜 물리·공학·화학 등 다양한 연구분야에서의 원천기술로 활용될 수 있을 것으로 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Raman spectroscopy is an optical technique that can identify molecules in a label-free manner, and is therefore heavily investigated in various areas ranging from biomedical engineering to materials science. Probe-based Raman spectroscopy can perform minimally invasive chemical analysis, and thus ha...

주제어

표/그림 (8)

참고문헌 (29)

  1. M. Okada, N. I. Smith, A. F. Palonpon, H. Endo, S. Kawata, M. Sodeoka, and K. Fujita, "Label-free Raman observation of cytochrome c dynamics during apoptosis," Proc. Natl. Acad. Sci. 109, 28-32 (2012). 

  2. H. Lee, K. Kang, K. Mochizuki, C. Lee, K.-A. Toh, S. A. Lee, K. Fujita, and D. Kim, "Surface plasmon localization-based super-resolved Raman microscopy," Nano Lett. 20, 8951-8958 (2020). 

  3. H. Lee, H. Yoo, G. Moon, K.-A. Toh, K. Mochizuki, K. Fujita, and D. Kim, "Super-resolved Raman microscopy using random structured light illumination: concept and feasibility," J. Chem. Phys. 155, 144202 (2021). 

  4. M. Paraskevaidi, C. L. M. Morais, D. E. Halliwell, D. M. A. Mann, D. Allsop, P. L. Martin-Hirsch, and F. L. Martin, "Raman spectroscopy to diagnose Alzheimer's disease and dementia with lewy bodies in blood," ACS Chem. Neurosci. 9, 2786-2794 (2018). 

  5. R. Michael, C. Otto, A. Lenferink, E. Gelpi, G. A. Montenegro, J. Rosandic, F. Tresserra, R. I. Barraquer, and G. F. Vrensen, "Absence of amyloid-beta in lenses of Alzheimer patients: a confocal Raman microspectroscopic study," Exp. Eye Res. 119, 44-53 (2014). 

  6. N. M. Ralbovsky, L. Halamkova, K. Wall, C. Anderson-Hanley, and I. K. Lednev, "Screening for Alzheimer's disease using saliva: a new approach based on machine learning and Raman hyperspectroscopy," J. Alzheimer's Dis. 71, 1351-1359 (2019). 

  7. E. Ryzhikova, N. M. Ralbovsky, V. Sikirzhytski, O. Kazakov, L. Halamkova, J. Quinn, E. A. Zimmerman, and I. K. Lednev, "Raman spectroscopy and machine learning for biomedical applications: Alzheimer's disease diagnosis based on the analysis of cerebrospinal fluid," Spectrochim. Acta A: Mol. Biomol. Spectrosc. 248, 119188 (2021). 

  8. C. Carlomagno, M. Cabinio, S. Picciolini, A. Gualerzi, F. Baglio, and M. Bedoni, "SERS-based biosensor for Alzheimer disease evaluation through the fast analysis of human serum," J. Biophotonics 13, e201960033 (2020). 

  9. R. Prucek, A. Panacek, Z. Gajdova, R. Vecerova, L. Kvitek, J. Gallo, and M. Kolar, "Specific detection of Staphylococcus aureus infection and marker for Alzheimer disease by surface enhanced Raman spectroscopy using silver and gold nanoparticle-coated magnetic polystyrene beads," Sci. Rep. 11, 6240 (2021). 

  10. K. A. Willets and R. P. Van Duyne, "Localized surface plasmon resonance spectroscopy and sensing," Annu. Rev. Phys. Chem. 58, 267-297 (2007). 

  11. K. Kim, J.-W. Choi, K. Ma, R. Lee, K.-H. Yoo, C.-O. Yun, and D. Kim, "Nanoislands-based random activation of fluorescence for visualizing endocytotic internalization of adenovirus," Small 6, 1293-1299 (2010). 

  12. K. Kim, J. Yajima, Y. Oh, W. Lee, S. Oowada, T. Nishizaka, and D. Kim, "Nanoscale localization sampling based on nanoantenna arrays for super-resolution imaging of fluorescent monomers on sliding microtubules," Small 8, 892-900 (2012). 

  13. W. Lee, Y. Kinosita, Y. Oh, N. Mikami, H. Yang, M. Miyata, T. Nishizaka, and D. Kim, "Three-dimensional superlocalization imaging of gliding Mycoplasma mobile by extraordinary light transmission through arrayed nanoholes," ACS Nano 9, 10896-10908 (2015). 

  14. K. Kim, W. Lee, K. Chung, H. Lee, T. Son, Y. Oh, Y.-F. Xiao, D. H. Kim, and D. Kim, "Molecular overlap with optical nearfields based on plasmonic nanolithography for ultrasensitive label-free detection by light-matter colocalization," Biosens. Bioelectron. 96, 89-98 (2017). 

  15. T. Son, D. Lee, C. Lee, G. Moon, G. E. Ha, H. Lee, H. Kwak, E. Cheong, and D. Kim, "Superlocalized three-dimensional live imaging of mitochondrial dynamics in neurons using plasmonic nanohole arrays," ACS Nano 13, 3063-3074 (2019). 

  16. H. Lee, W. J. Rhee, G. Moon, S. Im, T. Son, J.-S. Shin, and D. Kim, "Plasmon-enhanced fluorescence correlation spectroscopy for super-localized detection of nanoscale subcellular dynamics," Biosens. Bioelectron. 184, 113219 (2021). 

  17. M. Kirsch, G. Schackert, R. Salzer, and C. Krafft, "Raman spectroscopic imaging for in vivo detection of cerebral brain metastases," Anal. Bioanal. Chem. 398, 1707-1713 (2010). 

  18. M. Jermyn, K. Mok, J. Mercier, J. Desroches, J. Pichette, K. Saint-Arnaud, L. Bernstein, M. C. Guiot, K. Petrecca, and F. Leblond, "Intraoperative brain cancer detection with Raman spectroscopy in humans," Sci. Transl. Med. 7, 274ra19 (2015). 

  19. K. Hrubesova, M. Fouskova, L. Habartova, Z. Fisar, R. Jirak, J. Raboch, and V. Setnicka, "Search for biomarkers of Alzheimer's disease: Recent insights, current challenges and future prospects," Clin. Biochem. 72, 39-51 (2019). 

  20. W. G. Tharp and I. N. Sarkar, "Origins of amyloid-β," BMC Genom. 14, 290 (2013). 

  21. S. Sadigh-Eteghad, B. Sabermarouf, A. Majdi, M. Talebi, M. Farhoudi, and J. Mahmoudi, "Amyloid-beta: a crucial factor in Alzheimer's disease," Med. Princ. Pract. 24, 1-10 (2015). 

  22. C. Haass and D. J. Selkoe, "Soluble protein oligomers in neurodegeneration: lessons from the Alzheimer's amyloid betapeptide," Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8, 101-112 (2007). 

  23. F. Panza, M. Lozupone, G. Logroscino, and B. P. Imbimbo, "A critical appraisal of amyloid-β-targeting therapies for Alzheimer disease," Nat. Rev. Neurol. 15, 73-88 (2019). 

  24. C. S. Garcia, M. N. Abedin, S. K. Sharm, A. K. Misra, S. Ismail, U. Singh, T. F. Refaat, H. E. Ali, and S. Sandford, "Remote pulsed laser Raman spectroscopy system for detecting water, ice, and hydrous minerals," Proc. SPIE 6302, 630215 (2006). 

  25. M. J. Egan, S. K. Sharma, and T. E. Acosta-Maeda, "Modified spatial heterodyne Raman spectrometer for remote-sensing analysis of organics," Proc. SPIE 10779, 107790L (2018). 

  26. K. Maquelin, C. Kirschner, L. P. Choo-Smith, N. van den Braak, H. P. Endtz, D. Naumann, and G. J. Puppels, "Identification of medically relevant microorganisms by vibrational spectroscopy," J. Microbiol. Methods 51, 255-271 (2002). 

  27. E. Staniszewska-Slezak, K. Malek, and M. Baranska, "Complementary analysis of tissue homogenates composition obtained by Vis and NIR laser excitations and Raman spectroscopy," Spectrochim. Acta A: Mol. Biomol. Spectrosc. 147, 245-256 (2015). 

  28. B. Lochocki, B. D. C. Boon, S. R. Verheul, L. Zada, J. J. M. Hoozemans, F. Ariese, and J. F. de Boer, "Multimodal, label-free fluorescence and Raman imaging of amyloid deposits in snap-frozen Alzheimer's disease human brain tissue," Commun. Biol. 4, 474 (2021). 

  29. G. Moon, J. Lee, H. Lee, H. Yoo, K. Ko, S. Im, and D. Kim, "Machine learning and its applications for plasmonics in biology," Cell Rep. Phys. Sci. 3, 101042 (2022). 

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로