표 해양생태계 내 먹이망에서 원생생물들의 역할 (Jeong et al. 2010). HT bacteria: 종속영양성 세균. Cyanobacteria: 남세균. Diatom: 규조류. ATD (autotrophic dinoflagellate): 독립영양성 와편모류. MTD (mixotrophic dinoflagellate): 혼합영양성 와편모류. HTD (Heterotrophic dinoflagellate): 종속영양성 와편모류. Ciliate: 섬모충류. ANF (autotrophic nanoflagellate): 독립영양성 미소편모류. MNF (mixotrophic nanoflagellate) : 혼합영양성 미소편모류. HNF (Heterotrophic nanoflagellate): 종속영양성 미소 편모류
표 해양원생생물의 영양방식 (trophic mode)
표 해양 원생생물로부터 분리된 생리활성 화합물
표 해양원생생물의 산업적 이용
표 통합 오믹스를 이용한 환경과 생물반응의 상관관계 연구
표 Fluxomics and integrated multi-omics approach (자료: Metabolites 2014, 4(1), 53-70; doi:10.3390/metabo4010053, Croat Med J. 2012;53:529-34 doi:10.3325/cmj.2012.53.529)
표 Regularities in translational pausing and structural motifs (자료: Ebrahim et al. 2016)
표 은편모류 기반 해양 원생생물 연구 관련국내외 기술개발 현황
표 사업단의 단계별 목표 및 최종 목표
표 연구개발과제의 구성 및 체계도
표 본 연구에서 채집된 난균강 원생생물 A Olpidiopsis sp. 2. B Olpidiopsis sp. 1. C Olpidiopsis koreanae. D Olpidiopsis pyropiae. E Pythium porphyrae. Scale bar=10㎛
표 일본에서 보고된 Olpidiopsis porphyrae와 연구팀에서 채집한 Olpidiopsis porphyrae var. koreanae의 18S rRNA 유전자 구조 모식도
표 18S rRNA, Cox1, Cox2 유전자를 이용한 계통분석
표 스코틀랜드 Olpidiopsis sp. 1의 18S rRNA 유전자 구조 모식도
표 Olpidiopsis 인트론 서열 유사도 (%) 분석
표 18S rRNA, Cox2 유전자를 이용한 Olpidiopsis sp.1 (스코틀랜드)의 계통분석
표 Pythium porphyrae의 감염과정과 분리배양에 따른 유성생식 (뉴질랜드) A Pyropia plicata after 1 day. B 3 days. C 9 days. Dark cells are newly infected, light cells were older infected cells, after 9 days almost all cells are dead. P. porphyrae hyphae between cells visible. D Free hyphae in Arasaki B Medium. E Hyphae swelling. F Germinating spore, with emergent germ tube and empty spore body. G Oogonium, with a single oospore, with attached antheridium (arrowhead). Scale bars represent: A-D E & G, 20 μm. (Diehl N., Kim G.H., Zuccarello G.C., 2017)
표 난균강 원생생물 균주 확보 현황
표 채집된 난균강 원생생물 A. Olpidiopsis heterosiphoniae sp. nov. B. Olpidiopsis pyropiae 2. C. Pythium porphyrae 2. D. Pythium porphyrae 3. E. Pythium porphyrae 4. Scale bar=20 ㎛
표 18S rRNA, cox1, cox2 유전자를 이용한 Olpidiopsis heterosiphoniae의 계통분석
표 Olpidiopsis의 감염에 따른 숙주의 형태적 차이. A. Olpidiopsis pyropiae 2. B. Olpidiopsis var. koreanae. C. Olpidiopsis sp
표 난균강 원생생물의 배양 환경 최적화
표 Pythium porphyrae 균주의 분리 배양. A 숙주세포에 감염된 Pythium porphyrae. B 고체 배지를 이용한 Pythium porphyrae 분리배양. C 순수 분리된 Pythium porphyrae의 균사체. Scale bar=50㎛
표 분리 배양된 Pythium porphyrae와 현탁배양 온도에 따른 생장률 비교. Scale bar=10㎛
표 난균강 원생생물 균주의 단독 분리 배양 (Pythium porphyrae 2, 3, 4)
표 난균강 원생생물의 배양 환경 최적화
표 난균강 원생생물의 동결보존 현황
표 Pythium porphyrae의 생활사. A Pythium porphyrae의 생활사. B 유성생식. C 유주자. D 유주자낭. Scale bar=10㎛
표 Pythium porphyrae의 숙주 유무에 따른 유주자낭 생성
표 갈조류 A. angusta, E. siliculosus의 Pythium porphyrae 감염력 억제
표 염도에 따른 Pythium porphyrae의 생장
표 분자계통분류를 통한 난균류의 동정 해양에서 채집된 Pythium porphyrae는 세계 여러 지역의 토양에서도 보고됨
표 발아된 당근과 벼 종자에 대한 감염실험 A-C 당근. A 감염 전. B 5시간 (감염 관찰). C 24시간(뿌리 사멸). D-F 벼. D 24시간. E-F 48시간 (감염 관찰). G 정상적인 뿌리털. H 감염으로 사멸한 뿌리털. Scale bar=50㎛
표 Pythium porphyrae에 감염된 작물 뿌리의 성장 저해
표 Olpidiopsis porpyrae var koreanae의 감염 과정. Scale bar=20 ㎛. a 감염 초기 Olpidiopsis porphyrae var. koreanae의 모습, 이 단계에서는 숙주의 경우 온전한 형태의 엽록체를 가지고 있음. b 숙주 세포 내에서 완전히 성숙된 Olpidiopsis porphyrae var. koreanae의 형태, 숙주 세포질 및 엽록체의 붕괴가 일어난 단계임. c 하나의 숙주 세포내에서 두 개의 유주자낭이 발달한 형태. d 유주자 배출 단계의 유주자 방출관, 유주자를 배출한 후 숙주세포가 내부가 비어 있음
표 Olpidiopsis porphyrae var. koreanae의 생활사 분석. Scale bar=20 ㎛
표 숙주에 침투한 Olpidiopsis porpyrae var koreanae의 투과전자 현미경 사진 a 하나의 숙주세포에 침투한 두 개의 유주자. b Olpidiopsis의 유주자는 두꺼운 세포막으로 둘러싸여 숙주 세포질과 경계를 이룸. c 유주자는 자신의 세포막 (점선 화살표) 이외의 3~6개의 막 (화살표)으로 둘러싸임. d. 세포막이 확대된 모습으로 이중층을 이루는 구조를 확인 할 수 있음. c chloroplast, cv cytoplasmic vesicle, d lipid droplet, m mitochondrion, n nucleus, O Olpidiopsis, P Pyropia
표 Olpidiopsis porpyrae var koreanae의 유주자 방출관 발달
표 Olpidiopsis porpyrae var koreanae의 분류학적 특성 분석 쌍으로 발견되는 K-body 유사 구조 (화살표)와 섬모관을 포함하는 시스너테와 관련된 미토콘드리아가 핵 옆에 위치해 있음. cw cell wall of presporangium, ft flimmer tubules, k kinetosome, m mitochondrion, n nucleus
표 Olpidiopsis heterosiphoniae에 감염된 Heterosiphonia pulchara와 Heterosiphonia japonica A. 감염초기 숙주 세포내 유주자의 발달. B. 숙주의 정단세포에 감염된 Olpidiopsis heterosiphoniae의 유주자낭. C–D. 감염에 따른 숙주세포의 변화 팽창. E. 유주자가 방출된 후 방출관이 형성된 숙주세포. F. DAPI 염색을 통해 관찰한 유주자낭 내 Olpidiopsis heterosiphoniae 핵. G. 감염 이후 숙주세포의 변형. H–I. 감염 이후 숙주의 세포 형성. Scales=10 μm (A–C), 20 μm (D–I). (Klochkova et al. 2017)
표 Olpidiopsis heterosiphoniae의 무성생식 생활사 분석
표 Olpidiopsis heterosiphoniae 감염에 따른 숙주의 성장 저해
표 Olpidiopsis heterosiphoniae의 감염에 따른 숙주의 세포벽 변화
표 감염에 따른 Heterosiphonia japonica 세포벽 발달과 세포형태 변화
표 삼투압 쇼크 이후의 Olpidiopsis heterosiphoniae의 감염
표 Olpidiopsis heterosiphoniae의 감염에 따른 Heterosiphonia japonica의 삼투압 저항성 증가. A. 감염 경과에 따른 H. japonica의 형태 변화. B. 감염 경과에 따른 삼투압 별 숙주 생존율, 감염된 개체는 대조구에 비해 낮은 삼투압 농도에서 높은 생존율을 나타냄
표 난균강 원생생물 Olpidiopsis의 감염과 발달 A. Olpidiopsis 유주자가 감염된 Pyropia의 세포 B. 숙주 세포 내에서 발달된 Olpidiopsis의 유주자낭. C. 유주자의 핵분열. D. 방출관 생성 전 다수의 소낭 형성. E. 유주자를 방출하기 위해 방출관이 생성된 유주자낭. Scale bar = 10 μm
표 숙주의 Olpidiopsis 감염에 따른 세포 형태학적 변화 분석. A. Pyropia의 세포의 투과전자 현미경 사진. 화살표는 홍조 녹말을 나타냄. B. Olpidiopsis에 감염된 숙주 세포. 화살표는 Olpidiopsis 유주자낭 주위에 분해가 진행된 홍조녹말과 액포를 나타냄
표 숙주의 Olpidiopsis 감염에 따른 세포 형태학적 변화 분석. A. Olpidiopsis 감염 초기 숙주세포의 세포막의 변화. B. 숙주 내부로 내포 (endocytosis)된 Olpidiopsis 유주자의 외부 막 구조
표 온도에 따른 각 Olpidiopsis의 감염 A. 온도에 따른 Olpidiopsis의 감염률 변화 측정. B. Olpidiopsis pyropiae의 온도별 감염 양상 관찰. Scale bar = 20 μm
표 Olpidiopsis 3종의 18S rRNA 유전자 구조 비교 분석
표 각 Olpidiopsis의 18S rRNA 유전자 서열 유사도(%) 분석
표 각 Olpidiopsis의 시기별 감염 양상. A. 감염된 숙주세포내 발단된 각 Olpidiopsis의 유주자낭. Scale bar = 10 μm. B. 감염단계에 따른 감염 양상. 화살표는 Olpidiopsis porphyrae var. scotiae 감염 숙주에서 주로 관찰되는 세포사멸을 나타냄. Scale bar = 200 μm
표 Olpidiopsis 감염에 HR 유사반응 분석. A. 각 Olpidiopsis 감염에 따른 세포 사멸률. B. 각 Olpidiopsis 균주에 의한 숙주 해조류의 감염 경과
표 숙주 Porphyra에 감염된 Olpidiopsis porphyrae var. scotiae. A-C. 숙주세포에서 관찰되는 유주자낭의 발달. Calcofluor white 염색에서 숙주 세포 내 발달된 다수의 유주자낭이 관찰됨. D. SYBR-Green 염색을 통한 유주자낭의 다핵 구조. E. Porphyra 단포자에 감염된 Olpidiopsis 유주자낭. Scale bars = 10 μm
표 각 Olpidiopsis의 Pyropia에 대한 감염 관찰. A. 감염 경과에 따른 Pyropia 엽체 내 세포의 변화. Scale bars = 200 μm. B. 감염된 Pyropia 엽체의 차이. Scale bars = 1 cm
표 각 Olpidiopsis의 감염에 따른 Pyropia의 감염률과 사멸률 분석. A. Olpidiopsis pyropiae. B. Olpidiopsis porphyrae var. koreanae. C. Olpidiopsis porphyrae var. scotiae. 화살표는 사멸된 세포를 나타냄. Scale bars = 20 μm
표 각 Olpidiopsis의 감염에 따른 Pyropia 엽체의 TUNEL assay. A. Olpidiopsis pyropiae. B. Olpidiopsis porphyrae var. koreanae. C. Olpidiopsis porphyrae var. scotiae. Scale bars = 40 μm
표 Pyropia metacaspase의 alignment와 단백질 구조 분석. P20; The catalytic p20-like domain, P10; p10 domain
표 감염력 차이를 나타내는 2가지 Olpidiopsis 균주에 대한 숙주 Pyropia metacaspase homologue의 발현 반응 분석. A. Metacaspase 1. B. Metacaspase 2
표 각 난균강 원생생물의 gDNA 분리 및 PCR test (1 % agarose gel)
표 감염 시기에 따른 난균강 원생생물의 RNA 분리 방법 정립 및 분석
표 2-DE 이미지 및 단백질 발현 분석
표 MALDI-TOF/TOF 단백질 분석
표 GS-FLX를 이용하여 해독된 Pythium porphyrae의 발현유전체 assembly 정보
표 각 발현유전체 assembly 결과의 길이 분포와 GC 함량 분석
표 Pythium porphyrae의 발현유전체 분석 흐름도
표 Pythium porphyrae의 무성생식 단계에 따른 발현유전체 contig의 분포
표 Pythium porphyrae의 다른 난균강 원생생물과의 elicitin-like 유전자 네트워크 분석과 식물 및 동물 감염성 Pythium과의 클러스터 분석 (Badis et al. 2020)
표 Pythium porphyrae의 각 발현유전자의 단백질 서열 예측도
표 2-DE 이미지 및 분석
표 2-DE를 통해 특징적으로 발현된 단백질의 정량분석
표 숙주 생물의 Pythium porphyrae의 유주자낭 생성 유도 물질 분석. A. 숙주 생물 배양액의 여과 크기에 따른 유주자낭 생성. B. 여과액의 온도 처리에 따른 유주자낭 생성률 변화 분석
표 Pythium porphyrae의 유주자낭 생성 유도 단백질의 분석
표 Pythium porphyrae 유주자 유도인자로 작용하는 해양조류 공생 세균의 단백질 분석
표 숙주 해양조류 Heterosiphonia japonica와 난균강 원생생물 Olpidiopsis heterosiphoniae 발현유전체 분석. A. assembly 결과의 길이 분포. B. GC 함량분석. 숙주 Heterosiphonia japonica와 Olpidiopsis heterosiphoniae의 다른 GC 함량으로 인해 두 곳(붉은색, 검은색 박스)의 contig 분포를 나타냄
표 Heterosiphonia japonica와 Olpidiopsis heterosiphoniae 감염에 따른 유전자 발현 hierarchical clustering 분석
표 Olpidiopsis heterosiphoniae 감염에 따른 Heterosiphonia japonica의 세포벽 관련 유전자의 발현 양상
표 Pythium porphyrae의 숙주 생물 Pyropia의 살리실산 검출과 활성 측정. A. 살리실산 ELISA assay. B. 살리실산 처리에 따른 숙주 생물의 활성산소 축적과 세포자살률 증가. C. 살리실산 처리에 따른 Pythium porphyrae 감염 저해. Scale bars = 20 μm
표 Olpidiopsis heterosiphoniae의 숙주 생물 Heterosiphonia japonica의 살리실산 검출과 활성 측정. A. 살리실산 ELISA assay. B. 살리실산 처리에 따른 숙주생물의 감염 저해. C. 살리실산 처리에 의한 숙주 생물의 감염 방어 기작의 유도
표 Genome 분석의 기본 정보
표 난균강 원생생물 유전체 DB 및 분석 파이프라인
표 난균강 원생생물 감염에 따라 공통적으로 증가된 Pyropia의 유전자
표 난균강 원생생물 감염과 숙주 Pyropia의 상호작용 모식도. 붉은색; heat shock protein 유전자, 푸른색; ROS 생성과 반응 관련 유전자
표 난균강 원생생물 감염 제어 시험에 사용된 유기산
표 프로피온산의 Pythium porphyrae 감염 억제. Scale bar = 50 μm
표 Calcium propionate의 Pythium porphyrae 생장 억제. A. Pythium porphyrae 사상체 성장 억제. B. Calcium propionate의 Pythium porphyrae 낭생성 억제. Scale bar = 50 μm
표 Pyropia HSP 분석. A. 난균강 원생생물 감염에 따라 발현이 촉진된 HSP유전자의 선별. B. 선발된 HSP 유전자의 단백질 구조 및 비교 분석
표 환경스트레스 이후 Pythium 감염에 따른 HSP 유전자 발현 변화
표 환경스트레스 처리에 따른 Pythium 감염 분석. A. 환경스트레스 전처리 후 즉시 감염. B. 1일 후 감염. C. 3일 후 감염. Scale bar = 2 mm
표 Olpidiopsis porphyrae var. koranae의 subtilisin serine protease 단백질 도메인 모식도
표 Olpidiopsis porphyrae var. koranae의 감염 시간에 따른 serine protease의 발현 분석
표 Serine protease 저해를 통한 Olpidiopsis porphyrae var. koranae 감염 저해
표 Ectocarpus siliculosus의 각 pyrenocine 처리에 따른 난균 및 기생성 질병 저해 (Vallet et al. 2019)
표 Pyropia 세포내 발달중인 Olpidiopsis 유주자낭의 pyrenochaetic acid C 처리에 따른 사멸 관찰. A. Pyropia 세포내 발달된 Olpidiopsis 유주자낭. B. pyrenochaetic acid C 처리 30분 후 사멸된 Olpidiopsis 유주자낭. Scale bars = 20 μm
표 Pyrenocine N과 Pyrenochaetic acid C의 화학 구조식
표 본 연구팀이 규명해 낸 종속영양성 편모류 Aduncodinium glandula의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과 (Jang et al. 2016)
표 단종배양체 종속영양성 편모류 Aduncodinium glandula가 다양한 먹이 종류를 peduncle 기관을 사용하여 섭식하는 장면. (A) A. glandula on Skeletonema costatum (B) A. glandula on Perch blood cell (C) A. glandula on Prorocentrum triestinum (D) A. glandula on Scrippsiella trochoidea (E) A. glandula on Prorocentrum micans (F) A. glandula on Lingulodinium polyedrum. All Scale bar = 10 μm
표 본 연구팀이 규명해 낸 혼합영양성 편모류 Alexandrium pohangense의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과 (Lim et al. 2015)
표 단종배양체 편모류 Alexandrium pohangense가 적조생물인 Cochlodinium polykrikoides를 섭식하는 과정, (A) 4개의 체인형태로 존재하는 C. polykrikoides, (B) A. pohangense와 접촉 후 체인이 파괴된 C. polykrikoides, (C-H) A. pohangense가 C. polykrikoides를 engulfment 방법으로 섭식하는 과정, (I-K) A. pohangense가 2개 체인형태의 C. polykrikoides를 차례대로 섭식하는 장면, Scale bars= 20 μm (A, B), & 10 μm (C-K) (Lim et al. 2015)
표 본 연구팀이 규명해 낸 혼합영양성 편모류 Polykrikos hartmannii의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과
표 단종배양체 혼합영양성 편모류 Polykrikos hartmannii가 Gymnodinium catenatum을 독침 기관인 nematocyst를 쏘아 공격하는 장면, (A) P. hartmannii가 G. catenatum 세포에 다가가는 모습, (B-D) P. hartmannii가 G. catenatum에 nematocyst를 발사하여 기절시키는 과정, Scale bars= 20 μm (Lee et al. 2015)
표 독성 편모류 Alexandrium pohangense와 A. pohangense를 잠재적으로 포식할 확률이 높은 편모류 및 섬모류를 함께 배양하여 확인한 포식 유무 실험 결과
표 본 연구팀에서 분리, 배양한 독성 편모류 Alexandrium pohangense를 그의 잠재적 포식자와 배양하였을 때 관찰되는 장면 (각 0hr, 그리고 2hr 후 관찰 사진), (A, B). A. pohangense를 Noctiluca scintillans와 함께 배양 시, 2hr 후에 포식자가 분해된 모습, (C, D). A. pohangense를 Luciella masanensis와 함께 배양 시, 2hr 후에 포식자가 분해된 모습, (E, F). A. pohangense를 Pfiesteria piscicida와 함께 배양 시, 2hr 후에 포식자가 분해된 모습, (G, H). A. pohangense를 Oblea rotunda와 함께 배양 시, 2hr 후에 포식자가 분해된 모습, (I, J). A. pohangense를 Gyrodinium dominans와 함께 배양 시, 2hr 후에 포식자가 분해된 모습, Scale bars= 100 μm (A, B), 5 μm (C-F), 그리고 20 μm (G-J) (Kim et al. 2016)
표 단종배양체 편모류 Takayama helix가 적조생물인 Heterocapsa triquetra (M-R)를 섭식하는 과정. Scale bars= 20 μm
표 본 연구팀이 규명해 낸 혼합영양성 편모류 Takayama tasmanica의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과 (Lim et al. 2018)
표 본 연구팀이 규명해 낸 혼합영양성 편모류 Yihiella yeosuensis의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과 (Jang et al., 2017b)
표 신속 및 신종 단종배양체 와편모류 Yihiella yeosuensis가 녹조류 Pyramimonas sp.와 은편모류 Teleaulax sp.를 섭식한 장면. (A) 먹이종 Teleaulax sp., (B, C) Teleaulax sp.를 섭식한 Y. yeosuensis, (D) 먹이종 Pyramimonas sp., (E) Pyramimonas sp.를 섭식한 Y. yeosuensis, Scale bars= 5 μm
표 본 연구팀이 규명해 낸 혼합영양성 편모류 Alexandrium andersonii의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과 (Lee et al., 2016)
표 본 연구팀이 규명해 낸 종속영양성 편모류 Ka표pharis japonica의 다양한 먹이종류 및 이들에 대한 섭식 유무 실험 결과 (Kim et al. 2017)
표 종속영양성 나노편모류 (HNF, heterotrophic nano-flagellate)인 Ka표pharis japonica가 와편모류 Akashiwo sanguinea를 섭식하는 장면 (A-F) (Submitted data)
표 독성 편모류 Ostreopsis cf. ovata와 O. cf. ovata를 잠재적으로 포식할 확률이 높은 편모류 및 섬모류들을 함께 배양하여 확인한 포식 유무 실험 결과 (Yoo et al. 2015)
표 본 연구팀에서 분리, 배양한 독성 편모류 Ostreopsis cf. ovata를 그의 잠재적 포식자와 배양하였을 때 관찰되는 장면, (A) 섭식당하지 않은 Ostreopsis cf. ovata의 모습, (B) Gyrodinium dominas에 의해 섭식당한 Ostreopsis cf. ovata, (C) Gyrodinium moestrupii에 의해 섭식당한 Ostreopsis cf. ovata, (D) Oxyrrhis marina에 의해 섭식당한 Ostreopsis cf. ovata, (E) Pfiesteria piscicida에 의해 섭식 당하고 있는 Ostreopsis cf. ovata, (F) Polykrikos kofoidii에 의해 섭식당한 Ostreopsis cf. ovata. Scale bars = 10 μm (Yoo et al. 2015)
표 와편모류 Paragymnodinium shiwhaense를 포식함이 확인되어, P. shiwhaense의 포식자로서 실험에 사용된 와편모류, 섬모류 및 동물성플랑크톤에 대한 정보 (Jeong et al. 2017)
표 본 연구팀에서 연구한 편모류 Paragymnodinium shiwhaense가 포식자에 의해 섭식 당하고 (A-C), 동시에 섭식을 하는 (D-H) 상호 작용의 모습이 관찰된 장면, (A) Oxyrrhis marina에 의해 섭식당한 P. shiwhaense, (B) Gyrodinium dominans에 의해 섭식당한 P. shiwhaense, (C) 섬모충류 Strombidinopsis sp.에 의해 섭식당한 P. shiwhaense, (D) 포식자 O. marina를 섭식하는 P. shiwhaense, (E) 포식자 Strobilidium sp.를 섭식하는 P. shiwhaense, (F) 포식자 Strombidinopsis sp.를 공격하는 P. shiwhaense, (G-H) P. shiwhaense 여과물에 의해 분해된 포식자 G. dominans. Scale bars (A, B, D, E, G, H) =10 μm 그리고 (C and F) =20 μm (Jeong et al. 2016)
표 종속영양성 나노편모류 Ka표pharis japonica와 잠재적 포식자들과의 상호포식 관계를 규명해 낸 자료 (Kim et al. 2017)
표 종속영양성 와편모류 Oxyrrhis marina가 종속영양성 나노편모류 Ka표pharis japonica를 섭식하는 장면, 시간적 순서대로 배열 (~40초), scale bar = 25 μm (Kim et al. 2017)
표 종속영양성 나노편모류 Ka표pharis japonica가 종속영양성 와편모류 Oxyrrhis marina를 섭식하는 장면, 시간적 순서대로 배열 (up to 57초), scale bar = 25 μm (Kim et al. 2017)
표 혼합영양성 와편모류 먹이인 Yihiella yeosuensis의 다양한 컨디션에 따른 포식자들의 섭식 여부 차이를 규명해 낸 자료 (Jeong et al. 2018)
표 와편모류 Yihiella yeosuensis가 잠재적 포식자들과 접촉하였을 때 jumping behavior를 보여주며 포식자로부터 도망가는 장면. (A-F) 종속영양성 와편모류 Oxyrrhis marina로부터 도망가는 Y. yeosuensis, (G-I) 종속영양성 와편모류 Aduncodinium glandula로부터 도망가는 Y. yeosuensis, (J-L) 종속영양성 섬모충류 Strombidinopsis sp.로부터 도망가는 Y. yeosuensis, scale bar = 25 μm for (A-I) 그리고 50 μm for (J-L). (Jeong et al. 2018)
표 전 세계 해역에서 적조를 야기하는 와편모류 속(Prorocentrum) 내의 7종(Prorocentrum triestinum, P. cordatum, P. donghaiense, P. rhathymum, P. micans, P. lima, P. hoffmannianum) 의 잠재적 포식자들의 선택적 섭식 여부 비교 규명. Predators: Om, Oxyrrhis marina; GD, Gyrodinium dominans; Pk, Polykrikos kofoidii; Or, Oblea rotunda; Pp, Pfiesteria piscicida; Str, Strombidinopsis sp., ESD, equivalent spherical diameter (μm). (You et al. 2020)
표 본 연구에서 새롭게 확인한 Prorocentrum 속 내의 3종, P. triestinum, P. rhathymum, 그리고 P. lima를 포식한 Gyrodinium dominans의 세포 사진. (A) P. triestinum, (B) P. triestinum을 섭식한 G. dominans, (C) P. rhathymum, (D) P. rhathymum을 섭식한 G. dominans, (E) P. lima, (D) P. lima를 섭식한 G. dominans. Scale bars= 10 μm
표 한국연안에서 새롭게 발견되어 신종으로 보고한 종속영양성 와편모류 Gyrodinium jinhaense의 잠재적 미세조류 먹이종들을 규명해 낸 자료. (In preparation for Publication)
표 우리나라 연안에서 새롭게 발견되어 신종으로 명명한 종속영양성 와편모류 Gyrodinium jinhaense의 잠재적 먹이종, Alexandrium lusitanicum, Dunaliella salina, 그리고 Prorocentrum cordatum을 섭식하는 G. jinhaense의 섭식 관찰 모습. (A) A. lusitanicum, (B) A. lusitanicum을 섭식한 G. jinhaense, (C) D. salina, (D) D. salina를 섭식한 G. jinhaense, (E) P. cordatum, (D) P. cordatum을 섭식한 G. jinhaense. Scale bars= 10 μm
표 저서성 와편모류 Prorocentrum lima의 환경요인에 따른 성장률 그래프. (A) 수온, (B) 염분, (C) 광도, (D) 영양염류
표 수온에 따른 해양 원생생물의 성장률 그래프. (A) Cochlodinium polykrikoides ,(B) Gymnodinium catenatum, (C)Gymnodinium impudicum, (D) Alexandrium affine
표 광도에 따른 해양 원생생물의 성장률 그래프. (A) Prorocentrum micans, (B) Teleaulax sp
표 혼합영양성 와편모류 Thecadinium kofoidii (Yoo et al. 2018b). (A) 먹이를 섭식하는 않은 T. kofoidii 광학현미경, (B) 형광현미경, (C) 투과전자현미경 (TEM) 사진. (D) T. kofoidii가 광영양 세균을 섭식한 형광현미경사진. (E & F) T. kofoidii가 저서 은편모류인 Rhodomonas salina을 섭식한 TEM사진
표 혼합영양성 와편모류 Thecadinium kofoidii이 저서 플랑크톤인 Rhodomonas salina (Rs; A-E)와 Symbiodinium voratum (Sv; F-J))를 섭식관(peduncle)을 이용하여 섭식하는 과정 (Yoo et al. 2018b)
표 광영양 은편모류 Teleaulax amphioxiea의 세균성 박테리아 섭식장면. 은편모류가 종속영양세균 (A, B)과 광영양 세균 (C, D)을 섭식한 형광현미경 사진과 광영양 세균을 섭식한 전자현미경 사진 (E—H) (Yoo et al. 2017)
표 광영양 유글레나 Eutreptiella eupharyngea가 종속영양 세균 (A, C)과 광영양 세균(B, D, G, H)을 섭식한 형광(A-D) 및 전자현미경 사진 (E-H) (Yoo et al. 2018a)
표 녹조류 Tetraselmis sp.가 광영양 세균을 섭식한 형광현미경 사진 (Nagarkar et al. 2018)
표 혼합영양성 와편모류 Thecadinium kofoidii의 먹이 섭식 유무
표 혼합영양성 은편모류 Teleaulax amphioxeia의 먹이 섭식 유무
표 혼합영양성 유글레나류 Eutreptiella eupharyngea의 먹이 섭식 유무
표 혼합영양성 와편모류 Thecadinium kofoidii이 저서성 은편모류인 Rhodomonas salina를 섭식하였을 때 성장률(Growth rate)과 섭식율(Ingestion rate) 그래프 (Yoo et al. 2018b)
표 혼합영양성 은편모류 Teleaulax amphioxeia가 해양종속세균과 광영양 세균을 섭식할 때 섭식율 그래프 (Yoo et al. 2017)
표 혼합영양성 유글레나류 Eutreptiella eupharyngea가 해양종속세균과 광영양 세균을 섭식할 때 섭식율 그래프 (Yoo et al. 2018a)
표 혼합영양성 섬모류 Mesodinum rubrum이 광영양 세균인 Synechococcus sp.를 섭식하였을 때 섭식율(Ingestion rate) 그래프 (Yoo et al. 2015a)
표 독성 와편모류인 Ostreopsis cf. ovata를 섭식하는 천적생물 (Yoo et al. 2015b)
표 천적생물인 Gyrodinium moestrupii (A, C)와 Polykrikos kofoidii (B, D)에 대한 독성 와편모류인 Ostreopsis cf. ovata 농도에 따른 성장율과 섭식율 그래프 (Yoo et al. 2015b)
표 은편모조류 7종의 미토콘드리아 유전체 지도 (Kim et al. 2018)
표 대롱편모조류 6종의 색소체 유전체 지도 (Kim et al. 2019)
표 대량배양 시스템 개발을 위한 환경요인에 대한 Symbiodinium voratum의 성장률. (A, B) 수온, (C, D) 염분, (E, F) 광도, (G, H) 영양염류
표 대량배양 시스템 개발을 위한 환경요인에 대한 Prorocentrum lima의 성장률. (A, B) 수온, (C, D) 염분, (E, F) 광도, (G, H) 영양염류
표 대량배양 시스템 구축 (A) 대량배양 1톤 용기에 유용 해양원생생물 초기접종 및 배양, (B) 중기배양, (C) 말기 배양, (D) 고속 연속원심분리기, (E) 수확
표 대량배양 용기 1톤에서 배양한 공생 와편모류 Symbiodinium voratum의 성장곡선
표 대량배양 용기 500 L에서 배양중인 절대혼합영양 와편모류 Polykrikos lebourae
표 채집된 원생물질 균주로부터 소량 추출물 및 그들에 대한 생리활성 결과
표 활성 분액으로부터 HPLC를 이용한 활성 화합물의 분리 및 정제
표 독성 와편모류 Prorocentrum lima의 추출 분액으로부터 분리된 화합물
표 분리된 네 개의 화합물에 대한 수소 NMR 스펙트럼 (500 MHz in CD3OD)(Yang et al.2017) (A) 화합물 1의 1H NMR spectrum, (B) 화합물 2의 1H NMR spectrum, (C) 화합물 3의 1H NMR spectrum, (D) 화합물 4의 1H NMR spectrum
표 독성 와편모류 Ostreopsis cf. ovata 대양체로부터 독성 성분 분리 체계도
표 분액 M1과M2의 혼합물에 대한 HPLC 크로마토그램
표 화합물 6 ～ 8에 대한 수소 NMR 스펙트럼 (900 MHz in CD3OD). A) 화합물 6의 1H NMR spectrum B) 화합물 7의 1H NMR spectrum, C) 화합물 8의 1H NMR spectrum
표 분리된 화합물 5 ～ 8의 HepG2에 대한 독성 검사
표 저서 와편모류 Thecadinium kofoidii로부터 화합물 9의 분리 체계도와 HPLC 크로마토그램
표 화합물 9의 화학구조 와 수소/탄소 NMR 스펙트럼 및 화합물 활성
표 화합물 9 에 대한 화학구조, NO 저해 활성 결과 및 NMR 스펙트럼
표 은편모류의 500 L급용기에서 대량배양 및 영양품질 비교 (Lee et al. 2019)
표 유용 와편모류 Amphidinium operaculatum에서 분리 된 화합물
표 GC를 사용하여 분석한 혼합영양 와편모류 Polykrikos lebourae의 지방산 분석 그림
표 유용 와편모류 Amphidinium massartii의 1톤 용기에서 대량배양 및 이로부터 분리된 perdinin 화합물과 그의 수소 NMR 스펙트럼
표 유용 와편모류 Ostreopsis cf. ovata 의 배양체로부터 독성 성분 분리 체계도
표 유용 와편모류 Ostreopsis cf. ovata의 배양체로부터 분리된 신규 화합물 1 및 HRMS 스펙트럼
표 유용 와편모류 Ostreopsis cf. ovata의 배양체로부터 분리된 신규 화합물 1에 대한 (A) 수소 및 (B) 탄소 NMR 스펙트럼
표 LNCap과 PC3세포에서의 voratin 화합물 (15)의 5AR2효소 저해 활성 결과
표 사업단의 연구목표 및 세부 연구목표 (분석하는 원생생물의 생명현상 특성 keyword)

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