본 연구는 돼지난자의 활성화 조건과 단백질 합성 억제제가 돼지의 단위발생율에 미치는 효과를 비교하기 위해 실시하였다. 체외성숙 22, 30과 44시간후에 MⅡ난자에 도달된 난자를 이용하여 활성화 자극 및 단백질 합성 억제제의 종류에 따른 돼지 난자의 단위발생율과 배발달율을 조사하였다. 본 실험에서 얻은 결과는 다음과 같다. 1. 체외배양 전 돼지 난자의 핵단계를 GVⅠ- GV Ⅳ로 분류하였다. GVⅠ은 20.0%(19/95)이었고, GV Ⅱ는 29.4%(28/95)였으며 GV Ⅲ와 GV Ⅳ는 모두 25.3%(24/95)였다. 2. 돼지 난자의 체외성숙 시간에 따른 핵성숙율은 체외성숙 22시간에서 MI이 44.3%와 AI -TⅠ 36.7%이고, 30시간에서 MⅠ이 25.6%, AⅠ- TⅠ이 27.3%, MⅡ는 46.3%이었다. 그리고 44시간에서 MⅠ이 12.1%, AI-TI이 7.7%, MⅡ는 78.0%이었다. 3. 체외성숙 시간에 따른 돼지 단위발생율은 체외성숙 22, 30, 44시간 때에 활성화시켰을 때 난할율은 각각 35.4%, 51.8%와 80.0%이었고, ...
본 연구는 돼지난자의 활성화 조건과 단백질 합성 억제제가 돼지의 단위발생율에 미치는 효과를 비교하기 위해 실시하였다. 체외성숙 22, 30과 44시간후에 MⅡ난자에 도달된 난자를 이용하여 활성화 자극 및 단백질 합성 억제제의 종류에 따른 돼지 난자의 단위발생율과 배발달율을 조사하였다. 본 실험에서 얻은 결과는 다음과 같다. 1. 체외배양 전 돼지 난자의 핵단계를 GVⅠ- GV Ⅳ로 분류하였다. GVⅠ은 20.0%(19/95)이었고, GV Ⅱ는 29.4%(28/95)였으며 GV Ⅲ와 GV Ⅳ는 모두 25.3%(24/95)였다. 2. 돼지 난자의 체외성숙 시간에 따른 핵성숙율은 체외성숙 22시간에서 MI이 44.3%와 AI -TⅠ 36.7%이고, 30시간에서 MⅠ이 25.6%, AⅠ- TⅠ이 27.3%, MⅡ는 46.3%이었다. 그리고 44시간에서 MⅠ이 12.1%, AI-TI이 7.7%, MⅡ는 78.0%이었다. 3. 체외성숙 시간에 따른 돼지 단위발생율은 체외성숙 22, 30, 44시간 때에 활성화시켰을 때 난할율은 각각 35.4%, 51.8%와 80.0%이었고, 배반포 발달율은 0.0%, 5.5% 그리고 14.3%이었다. 4. 돼지 난자의 활성화처리에 따른 단위발생율은 대조군, 전기자극, 7% ethanol, 5㎍/ml ionomycin에서 활성화율은 각각 0.0%, 83.7%, 57.9%, 70.4%이었고, fragmentation율은 각각 50.8%, 10.3%, 38.2%, 24.3%이었다. 배반포 발생율은 각각 0.0%, 19.2%, 17.2%, 17.9%이었다. 5. 전기자극 단독 처리군과 전기자극 후 1.9mM 6-DMAP, 7.5㎍/㎖ cyto chalasin B, 10㎍/㎖ cycloheximide로 처리 하였을 때 난할율은 각각 85.4%, 83.6%, 75.3%, 74.3%이었고, 배반포 발달율은 각각 20.8%, 30.4%, 23.6%, 0.0%이었다. 또한 fragmentation율은 각각 11.4%, 10.7%, 14.1%, 7.9%이었다. 본 실험결과 돼지난자의 체외성숙에 있어서 핵 및 세포질의 완전한 성숙은 체외성숙 후 44시간에 이루어지고, 돼지 난자의 활성화를 위한 활성화자극은 전기자극이 유효하였고 전기자극과 함께 단백질 합성 억제제로 6-DMAP 처리가 배발달율에 가장 효과적임을 알 수 있었다.
본 연구는 돼지난자의 활성화 조건과 단백질 합성 억제제가 돼지의 단위발생율에 미치는 효과를 비교하기 위해 실시하였다. 체외성숙 22, 30과 44시간후에 MⅡ난자에 도달된 난자를 이용하여 활성화 자극 및 단백질 합성 억제제의 종류에 따른 돼지 난자의 단위발생율과 배발달율을 조사하였다. 본 실험에서 얻은 결과는 다음과 같다. 1. 체외배양 전 돼지 난자의 핵단계를 GVⅠ- GV Ⅳ로 분류하였다. GVⅠ은 20.0%(19/95)이었고, GV Ⅱ는 29.4%(28/95)였으며 GV Ⅲ와 GV Ⅳ는 모두 25.3%(24/95)였다. 2. 돼지 난자의 체외성숙 시간에 따른 핵성숙율은 체외성숙 22시간에서 MI이 44.3%와 AI -TⅠ 36.7%이고, 30시간에서 MⅠ이 25.6%, AⅠ- TⅠ이 27.3%, MⅡ는 46.3%이었다. 그리고 44시간에서 MⅠ이 12.1%, AI-TI이 7.7%, MⅡ는 78.0%이었다. 3. 체외성숙 시간에 따른 돼지 단위발생율은 체외성숙 22, 30, 44시간 때에 활성화시켰을 때 난할율은 각각 35.4%, 51.8%와 80.0%이었고, 배반포 발달율은 0.0%, 5.5% 그리고 14.3%이었다. 4. 돼지 난자의 활성화처리에 따른 단위발생율은 대조군, 전기자극, 7% ethanol, 5㎍/ml ionomycin에서 활성화율은 각각 0.0%, 83.7%, 57.9%, 70.4%이었고, fragmentation율은 각각 50.8%, 10.3%, 38.2%, 24.3%이었다. 배반포 발생율은 각각 0.0%, 19.2%, 17.2%, 17.9%이었다. 5. 전기자극 단독 처리군과 전기자극 후 1.9mM 6-DMAP, 7.5㎍/㎖ cyto chalasin B, 10㎍/㎖ cycloheximide로 처리 하였을 때 난할율은 각각 85.4%, 83.6%, 75.3%, 74.3%이었고, 배반포 발달율은 각각 20.8%, 30.4%, 23.6%, 0.0%이었다. 또한 fragmentation율은 각각 11.4%, 10.7%, 14.1%, 7.9%이었다. 본 실험결과 돼지난자의 체외성숙에 있어서 핵 및 세포질의 완전한 성숙은 체외성숙 후 44시간에 이루어지고, 돼지 난자의 활성화를 위한 활성화자극은 전기자극이 유효하였고 전기자극과 함께 단백질 합성 억제제로 6-DMAP 처리가 배발달율에 가장 효과적임을 알 수 있었다.
This study was designed to examine the parthenogenetic ability of in vitro matured, activated and treated with protein synthesis inhibitor porcine oocytes. We assessed parthenogenetic development of porcine in vitro matured for each 22h, 30h and 44h from activator and protein synthesis inhibitor. Th...
This study was designed to examine the parthenogenetic ability of in vitro matured, activated and treated with protein synthesis inhibitor porcine oocytes. We assessed parthenogenetic development of porcine in vitro matured for each 22h, 30h and 44h from activator and protein synthesis inhibitor. The results obtained are as follows ; 1. Nuclear phase of the examined oocytes before IVM was classified into one of the following four groups. GV I, GV II, GV III and GV Ⅳ were 20.0%, 29.4%, 25.3% and 25.3%, respectively. 2. Nuclear status in oocytes cultured in vitro for 22h the MⅠ was 44.3%, AⅠ-TⅠ was 36.7%. When cultured for 30h the MⅠ was 25.6%, AⅠ-TⅠ was 27.3%, MⅡ was 46.3%. For 44h the MⅠ was 12.1%, AⅠ-TⅠ was 7.7%, MⅡ was 78.0%. 3. After porcine oocytes in vitro matured for 22h, 30h and 44h to parthenogenetic activation, the cleavage rate were each 35.4%, 51.8%, 80.0% and the develpmental rates of parthenogenetic blastocyst were 0.0%, 5.5% and 14.3%, repectively. 4. The effects of different activation on the development of porcine oocytes were investigated. Develoment(19.2%) of parthenogenetic embryo with electronic pulse was shown better than with 7% ethanol(17.2%) and 5㎍/㎖ ionomycin (17.9%), respectively. 5. The effects of different protein synthesis inhibitor on the development of porcine oocytes were investigated. Develoment of parthenogenetic embryo with 6-DMAP(30.4%) and 7.5㎍/㎖ cytochalasin B(23.6%) post fusion were shown significantly better than with 10㎍/㎖ cycloheximide(0.0%).
This study was designed to examine the parthenogenetic ability of in vitro matured, activated and treated with protein synthesis inhibitor porcine oocytes. We assessed parthenogenetic development of porcine in vitro matured for each 22h, 30h and 44h from activator and protein synthesis inhibitor. The results obtained are as follows ; 1. Nuclear phase of the examined oocytes before IVM was classified into one of the following four groups. GV I, GV II, GV III and GV Ⅳ were 20.0%, 29.4%, 25.3% and 25.3%, respectively. 2. Nuclear status in oocytes cultured in vitro for 22h the MⅠ was 44.3%, AⅠ-TⅠ was 36.7%. When cultured for 30h the MⅠ was 25.6%, AⅠ-TⅠ was 27.3%, MⅡ was 46.3%. For 44h the MⅠ was 12.1%, AⅠ-TⅠ was 7.7%, MⅡ was 78.0%. 3. After porcine oocytes in vitro matured for 22h, 30h and 44h to parthenogenetic activation, the cleavage rate were each 35.4%, 51.8%, 80.0% and the develpmental rates of parthenogenetic blastocyst were 0.0%, 5.5% and 14.3%, repectively. 4. The effects of different activation on the development of porcine oocytes were investigated. Develoment(19.2%) of parthenogenetic embryo with electronic pulse was shown better than with 7% ethanol(17.2%) and 5㎍/㎖ ionomycin (17.9%), respectively. 5. The effects of different protein synthesis inhibitor on the development of porcine oocytes were investigated. Develoment of parthenogenetic embryo with 6-DMAP(30.4%) and 7.5㎍/㎖ cytochalasin B(23.6%) post fusion were shown significantly better than with 10㎍/㎖ cycloheximide(0.0%).
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