최근 제브라피쉬가 인간의 병리 모델에서 중요한 모델로 사용되고 있으며 당뇨모델로도 사용되고 있다. 본 연구에서는 우선 제브라피쉬에서의 당뇨모델 수립을 위한 validation 실험을 수행하였다. 제브라피쉬를 다양한 농도 (100 , 200, 300, 400 mg/ 100 ml)의 alloxan 용액에 여러 시간 (30, 60, 120, 180 min) 동안 노출시킨 뒤, 다양한 농도 (1, 2, 3%)의 ...
최근 제브라피쉬가 인간의 병리 모델에서 중요한 모델로 사용되고 있으며 당뇨모델로도 사용되고 있다. 본 연구에서는 우선 제브라피쉬에서의 당뇨모델 수립을 위한 validation 실험을 수행하였다. 제브라피쉬를 다양한 농도 (100 , 200, 300, 400 mg/ 100 ml)의 alloxan 용액에 여러 시간 (30, 60, 120, 180 min) 동안 노출시킨 뒤, 다양한 농도 (1, 2, 3%)의 glucose 용액에 노출시킨다. Validation 실험 결과, 300 mg/ 100 ml 의 alloxan 용액에 30 분 동안 노출시키고 제브라피쉬를 1% glucose로 옮겨 30 분 동안 노출시킨 뒤 어항물에 1 시간 동안 노출시켜 제브라피쉬 당뇨모델을 수립하였다.
다음 제브라피쉬 embryo에서 당뇨모델을 수립하기 위한 validation 실험을 수행하였다. 여러 농도 (5, 10, 25, 100 uM)의 2-NBDG 용액에 노출시킨 뒤 (0.5, 1, 2 h) alloxan 용액 (100, 300, 500, 700 uM)으로 옮겨 노출시킨다 (0.25, 0.5, 1, 2 h). 실험결과, 2-NBDG로 전처리한 제브라피쉬 embryo에서 alloxan의 영향으로 pancreatic islet의 크기가 감소하였다. 25 uM의 2-NBDG에 1 시간 동안 노출시킨 뒤 500 uM 의 alloxan에 30 분 동안 처리하여 제브라피쉬 embryo 당뇨모델을 수립하였다. 수립된 당뇨모델이 당뇨모델로서 이용 가능한가를 확인하기 위하여 홍삼과 ginsenoside Rg1, Rg3, Rb1을 처리하여 효능을 확인하였다. 본 연구를 통하여 수립된 모델들이 앞으로 당뇨모델로 사용될 수 있을것이라고 사료된다.
최근 제브라피쉬가 인간의 병리 모델에서 중요한 모델로 사용되고 있으며 당뇨모델로도 사용되고 있다. 본 연구에서는 우선 제브라피쉬에서의 당뇨모델 수립을 위한 validation 실험을 수행하였다. 제브라피쉬를 다양한 농도 (100 , 200, 300, 400 mg/ 100 ml)의 alloxan 용액에 여러 시간 (30, 60, 120, 180 min) 동안 노출시킨 뒤, 다양한 농도 (1, 2, 3%)의 glucose 용액에 노출시킨다. Validation 실험 결과, 300 mg/ 100 ml 의 alloxan 용액에 30 분 동안 노출시키고 제브라피쉬를 1% glucose로 옮겨 30 분 동안 노출시킨 뒤 어항물에 1 시간 동안 노출시켜 제브라피쉬 당뇨모델을 수립하였다.
다음 제브라피쉬 embryo에서 당뇨모델을 수립하기 위한 validation 실험을 수행하였다. 여러 농도 (5, 10, 25, 100 uM)의 2-NBDG 용액에 노출시킨 뒤 (0.5, 1, 2 h) alloxan 용액 (100, 300, 500, 700 uM)으로 옮겨 노출시킨다 (0.25, 0.5, 1, 2 h). 실험결과, 2-NBDG로 전처리한 제브라피쉬 embryo에서 alloxan의 영향으로 pancreatic islet의 크기가 감소하였다. 25 uM의 2-NBDG에 1 시간 동안 노출시킨 뒤 500 uM 의 alloxan에 30 분 동안 처리하여 제브라피쉬 embryo 당뇨모델을 수립하였다. 수립된 당뇨모델이 당뇨모델로서 이용 가능한가를 확인하기 위하여 홍삼과 ginsenoside Rg1, Rg3, Rb1을 처리하여 효능을 확인하였다. 본 연구를 통하여 수립된 모델들이 앞으로 당뇨모델로 사용될 수 있을것이라고 사료된다.
Recently, the zebrafish has shown the potential to become an important in vivo model for diabetes-related research. In this study, at first, it was performed a validation study for the establishment of optimal hyperglycemia involving the following factors: alloxan concentrations of 100, 200, 300 and...
Recently, the zebrafish has shown the potential to become an important in vivo model for diabetes-related research. In this study, at first, it was performed a validation study for the establishment of optimal hyperglycemia involving the following factors: alloxan concentrations of 100, 200, 300 and 400 mg/100 ml, exposure times of 30, 60, 120 and 180 minutes to an alloxan solution and glucose solution concentrations of 1%, 2%, and 3%. The results have shown that exposure to glucose solution following alloxan induction might increase blood glucose level in zebrafish in a dose- and time-dependent manner. The appropriate hyperglycemia zebrafish model involves glucose level induction in 100 ml saline solution of 300 mg alloxan solution for 0.5 h, exposure to a 1% glucose solution for 0.5 h, and then exposure to water for 1 h.
Second, it was performed a validation study for the establishment of zebrafish embryo diabetic model: 2-NBDG concentrations of 5, 10, 25 and 100 μM, exposure times of 0.5, 1, 2 hours to 2-NBDG solution and alloxan solution concentrations of 100, 300, 500 and 700 μM, exposure times 0.25, 0.5, 1 and 2 hours. The results have shown that exposure to alloxan solution following 2-NBDG pretreatment might decrease the pancreatic islet size in zebrafish embryo. The appropriate zebrafish embryo diabetic model involves 25 μM 2-NBDG treatment for 1 h and 500 μM alloxan induction for 30 min. After establishment of zebrafish embryo diabetic model, we have examined the effects of red ginseng (RG) and its constituents, gisenosides Rg1, Rg3, Rb1, against diabetes in zebrafish.
We suggest that our zebrafish model and zebrafish embryo model could be an alternative hyperglycemia animal model in the future.
Recently, the zebrafish has shown the potential to become an important in vivo model for diabetes-related research. In this study, at first, it was performed a validation study for the establishment of optimal hyperglycemia involving the following factors: alloxan concentrations of 100, 200, 300 and 400 mg/100 ml, exposure times of 30, 60, 120 and 180 minutes to an alloxan solution and glucose solution concentrations of 1%, 2%, and 3%. The results have shown that exposure to glucose solution following alloxan induction might increase blood glucose level in zebrafish in a dose- and time-dependent manner. The appropriate hyperglycemia zebrafish model involves glucose level induction in 100 ml saline solution of 300 mg alloxan solution for 0.5 h, exposure to a 1% glucose solution for 0.5 h, and then exposure to water for 1 h.
Second, it was performed a validation study for the establishment of zebrafish embryo diabetic model: 2-NBDG concentrations of 5, 10, 25 and 100 μM, exposure times of 0.5, 1, 2 hours to 2-NBDG solution and alloxan solution concentrations of 100, 300, 500 and 700 μM, exposure times 0.25, 0.5, 1 and 2 hours. The results have shown that exposure to alloxan solution following 2-NBDG pretreatment might decrease the pancreatic islet size in zebrafish embryo. The appropriate zebrafish embryo diabetic model involves 25 μM 2-NBDG treatment for 1 h and 500 μM alloxan induction for 30 min. After establishment of zebrafish embryo diabetic model, we have examined the effects of red ginseng (RG) and its constituents, gisenosides Rg1, Rg3, Rb1, against diabetes in zebrafish.
We suggest that our zebrafish model and zebrafish embryo model could be an alternative hyperglycemia animal model in the future.
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