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인과립구 콜로니 자극인자 제제인 HM10411와 필그라스팀의 정맥, 근육 및 피하 주사시 흰쥐와 마우스에서의 약물 동태
Pharmacokinetics of Recombinant Human Granulocyte Colony Stimulating Factor (rhG-CSF) Following Intravenous, Intramuscular and Subcutaneous Administration of HM10411 and Filgrastim to Rats and Mice 원문보기

藥劑學會誌 = Journal of Korean pharmaceutical sciences, v.31 no.2, 2001년, pp.89 - 94  

김인화 (서울대학교 약학대학 종합약학 연구소) ,  이상훈 (한미약품공업주식회사) ,  김영민 (한미약품공업주식회사) ,  정성엽 (한미약품공업주식회사) ,  권세창 (한미약품공업주식회사) ,  이관순 (한미약품공업주식회사) ,  정석재 (서울대학교 약학대학 종합약학 연구소) ,  심창구 (서울대학교 약학대학 종합약학 연구소)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The pharmacokinetics of recombinant human granulocyte colony stimulating factor (rhG-CSF) following intravenous (i.v.), intramuscular (i.m.) and subcutaneous (s.c.) administration of HM1041l-lyo and HM10411-liq (lyophilized and liquid formulations of rhG-CSF, recently under development by Hanmi Phar...

주제어

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제안 방법

  • 5, 2, 8시간에 각각 실혈 치사시켰다. 간, 폐, 신장, 비장, 심장 및 근육을 적출하여 적출한 조직무게의 4배에 해당하는 인산염 완충액(pH 7.4)을 가한 후 homegenizerfUltra-Ibirax T75, Janke & Kunkel, Ger- many)로 13,500 rpm 이상으로 homogenize 하였다. Homogenize한 액을 10,000 g에서 2분간 원심 분리한 후 얻은 상층액을 정량 전까지 -20℃에 냉동 보관하였다.
  • 흰쥐의 대퇴 동맥에 미리 삽입한 cannula로부터 약물 투여 전 및 투여 후 5, 15, 30분 및 1, 2, 4, 6 및 8시간에 혈액 250μg씩을 채혈하였고 혈액응고를 막기 위하여 20units/ml의 heparin(생리식염수액) 용액으로 튜브에 남아있는 혈액을 완전히 동맥 속으로 주입하였다. 마우스 실험에서는 3제제를 10μg/kg의 용량으로 꼬리 정맥 내에 투여한 후 안저 (orbital plexus)로 부터 채혈하였다. 마우스 실험에서의 채혈시간 및 채혈량은 흰쥐실험에서와 같게 하였고, 채취한 혈액은 즉시 10,000 g에서 5분간 원심분리한 후 혈장 100μl 취하여 정량시까지 -20℃에 냉동 보관하였으며, 혈장 중 rhG -CSF의 농도는 Quantikine kit™를 사용하여 정량하였다.
  • 마우스 실험에서는 3제제를 10μg/kg의 용량으로 꼬리 정맥 내에 투여한 후 안저 (orbital plexus)로 부터 채혈하였다. 마우스 실험에서의 채혈시간 및 채혈량은 흰쥐실험에서와 같게 하였고, 채취한 혈액은 즉시 10,000 g에서 5분간 원심분리한 후 혈장 100μl 취하여 정량시까지 -20℃에 냉동 보관하였으며, 혈장 중 rhG -CSF의 농도는 Quantikine kit™를 사용하여 정량하였다.
  • 본 연구에서는 기존의 rhG-CSF와는 다른 숙주-벡터계를 이용한 유전자 재조합 빙법으로 제조함으로써 methionine 잔기가 없는 rhG-CSF인 HM10411를 동결 건조한 제품(HM 10411-lyo)과 액제(HM10411-liq)에 대하여 흰쥐와 마우스에서의 약물동태 파라미터를 측정하여 기존의 rhG-CSF인 Filgrastim(methionine잔기 함유)의 경우와 비교하였다.
  • 약물동태로는 투여경로(정맥주사, 피하주사, 근육주사) 및 투여량에 대한 혈중 및 주요 조직 중 농도를 측정하여 3제제(HM10411-lyo, HM10411-liq, Filgrastim)간의 차이 유무를 검토하였다.
  • c로 흰쥐 6마리씩에게 투여하였다. 용량 의존성을 관찰하기 위하여서는 따로 3제제를 5,100μg/kg의 용량으로 흰쥐 6마리에게 각각 정맥 투여하였다. 정맥투여 시는 횔줘를 ketamine(50μg/kg)을 복강 주사하여 마취한 후 대퇴정맥에 polyethylene tube를 삽입하고, 흰쥐가 마취에서 완쳔히 회복된 후 튜브를 통하여 약물을 투입하고 생리식염수로 튜브에 남아있는 약물을 완전히 흰쥐의 정맥 속으로 주입하였다.
  • 정맥투여 시는 횔줘를 ketamine(50μg/kg)을 복강 주사하여 마취한 후 대퇴정맥에 polyethylene tube를 삽입하고, 흰쥐가 마취에서 완쳔히 회복된 후 튜브를 통하여 약물을 투입하고 생리식염수로 튜브에 남아있는 약물을 완전히 흰쥐의 정맥 속으로 주입하였다. 정맥 근육 및 피하 주사시는 흰쥐의 대퇴근육 및 피하에 직접 주사하였다. 흰쥐의 대퇴 동맥에 미리 삽입한 cannula로부터 약물 투여 전 및 투여 후 5, 15, 30분 및 1, 2, 4, 6 및 8시간에 혈액 250μg씩을 채혈하였고 혈액응고를 막기 위하여 20units/ml의 heparin(생리식염수액) 용액으로 튜브에 남아있는 혈액을 완전히 동맥 속으로 주입하였다.
  • 용량 의존성을 관찰하기 위하여서는 따로 3제제를 5,100μg/kg의 용량으로 흰쥐 6마리에게 각각 정맥 투여하였다. 정맥투여 시는 횔줘를 ketamine(50μg/kg)을 복강 주사하여 마취한 후 대퇴정맥에 polyethylene tube를 삽입하고, 흰쥐가 마취에서 완쳔히 회복된 후 튜브를 통하여 약물을 투입하고 생리식염수로 튜브에 남아있는 약물을 완전히 흰쥐의 정맥 속으로 주입하였다. 정맥 근육 및 피하 주사시는 흰쥐의 대퇴근육 및 피하에 직접 주사하였다.
  • 투여경로별 혈장 중 rhG-CSF 농도의 차이를 살펴보기 위하여 3제제를 각 10 μg/kg의 용량으로 각각 i.v., i.m. 및 s.c로 흰쥐 6마리씩에게 투여하였다. 용량 의존성을 관찰하기 위하여서는 따로 3제제를 5,100μg/kg의 용량으로 흰쥐 6마리에게 각각 정맥 투여하였다.
  • 흰쥐에 3제제를 각 10μg/kg의 용량으로 카테터를 통하여 대퇴정맥에 주사한 다음 0.5, 2, 8시간에 각각 실혈 치사시켰다. 간, 폐, 신장, 비장, 심장 및 근육을 적출하여 적출한 조직무게의 4배에 해당하는 인산염 완충액(pH 7.
  • 정맥 근육 및 피하 주사시는 흰쥐의 대퇴근육 및 피하에 직접 주사하였다. 흰쥐의 대퇴 동맥에 미리 삽입한 cannula로부터 약물 투여 전 및 투여 후 5, 15, 30분 및 1, 2, 4, 6 및 8시간에 혈액 250μg씩을 채혈하였고 혈액응고를 막기 위하여 20units/ml의 heparin(생리식염수액) 용액으로 튜브에 남아있는 혈액을 완전히 동맥 속으로 주입하였다. 마우스 실험에서는 3제제를 10μg/kg의 용량으로 꼬리 정맥 내에 투여한 후 안저 (orbital plexus)로 부터 채혈하였다.

대상 데이터

  • rhG-CSF의 정량에 사용한 ELISA kiKQuantikine™)는 R&D System(Mckinley Place N.E. Minneapolis, MI, U.S.A.)으로부터, 흰쥐 실험에 사용한 polyethylene tube(PE-50)는 Clay Adams(Parsippany, NY; U.S.A.)로 부터 구입하였다.
  • 사육하였다. 사료는 autoclavable rodent laboratory chow 5010(Agibrands Puna Korea, Inc)를 사용하였다.
  • 웅성 Sprague-Dawley 흰쥐(240~300g의 7~8주령) 및 ICR 마우스(체중 28~32g의 6주령)는 대한실험동물센터(주)에서 분양 받아 사용하였으며, 실험 전 1주일 동안 서울대학교 약학대학 동물실험 연구동에서 온도 22±2; 습도 55±5℃로 09:00~21:00까지 조명시킨 상태에서 물과 사료를 자유롭게 섭취하도록 사육하였다. 사료는 autoclavable rodent laboratory chow 5010(Agibrands Puna Korea, Inc)를 사용하였다.
  • 한미약품 연구소에서 생산한 HM10411 동결건조제품(HM10411-lyo), 액제제품(HM10411-liq)과 Filgrastim(제일약품, Korea)을 주사용 증류수에 희석하여 사용하였다. rhG-CSF의 정량에 사용한 ELISA kiKQuantikine™)는 R&D System(Mckinley Place N.

데이터처리

  • 3제제로부터 얻은 체내동태 파라미터와 조직에 분포된 양은 SPSS프로그램(version 9.0, SPSS Inc., Chicago, IL, U.S.A.)을 사용하여 ANOVA로 통계처리하였으며, 유의수준은 p<0.05으로 판단하였다.
  • rhG-CSF의 체내동태 파라미터는 WinNonlin® 프로그램(version 1.1 Scientific Consulting Inc., Apex, NC, U.S.A.)을 사용하여 구하였다. 소실속도정수(β)는 log 혈장농도-시간곡선의 직선부분을 직선 회귀하여 구하였고, 시간 0에서 무한대까지 rhG-CSF의 혈장 중 농도-시간 곡선하면적(AUC) 및 혈장 중 약물농도 모멘트-시간 곡선(AUWC)는 사다리꼴 공식에 의해 구하였다.

이론/모형

  • )을 사용하여 구하였다. 소실속도정수(β)는 log 혈장농도-시간곡선의 직선부분을 직선 회귀하여 구하였고, 시간 0에서 무한대까지 rhG-CSF의 혈장 중 농도-시간 곡선하면적(AUC) 및 혈장 중 약물농도 모멘트-시간 곡선(AUWC)는 사다리꼴 공식에 의해 구하였다. 정맥주사 후 전신 클리어런스(CL), 평균 체류시간(MRT), 정상상태에서의 겉보기 분포용적(VSS) 및 생체이용률(F)는 다음 식에 의하여 구하였다8,9).
  • 혈장 중 rhG-CSF의 농도는 Quantikine kit™에 포함되어 있는 매뉴얼 방법에 따라 정량하였다. 즉, Quantikine kit에 포함된 microtiter plate에 시료 즉, 혈장 상층액 또는 조직 호모지네이트상층액 100μl 및 RD1A assay diluent 100μl를 넣은 다음 2시간 동안 방치하였다.
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