$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

넙치의 원산지 판별을 위한 ND-4유전자의 다양성 분석
Polymorphism Analysis of the ND-4 Gene for the Origin Determination of Olive Flounder, Paralichthys olivaceus. 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.14 no.4 = no.65, 2004년, pp.627 - 635  

송인선 (강릉대학교 동해안생명과학연구소) ,  진덕희 (강릉대학교 생명대학 해양생명공학) ,  최석정 (강릉대학교 자연대학 화학) ,  이석근 (강릉대학교 치과대학 구강병리과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

주문진 근해의 동해산 넙치, 통영과 거제의 양식산 넙치, 그리고 북한 해역의 동해산 넙치를 이용하여 넙치 ND-4와 cytochrome b유전자의 다양성을 관찰하기 위하여 DGES와 DNA 염기서열 검색을 병행하였는데, 각각의 다른 지역에서 얻은 넙치들은 ND-4-2와 ND-4-3 영역에서 특징적인 DNA 다양성이 있었으나 넙치의 cytochrome b유전자에서는 지역간의 차이를 보이는 유전자 변이가 발견되지 않았다. 따라서 본 연구에서 넙치의 지역별 차이를 구별하는 원산지 판별에는 사용된 DGES와 DNA 염기서열 검색 방법이 효과적이었으며, 넙치의 유전자에서는 개체간의 변이가 ND-4-2와 ND-4-3 영역에서 구별되는 유전자 다양성이 관찰되었으므로, 넙치의 원산지 판정을 위한 유전자 검사에는 ND-4-2와 ND-4-3영역의 검색이 필요하다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In order to distinguish the genetic polymorphism among the olive flounder (Paralichthys olivaceus) obtained from East sea of Jumunjin, aquaculture of Tongyoung and Geoje, and East sea of North Korea, the ND-4 and cytochrome b genes of olive flounder were divided into 5 regions. Each region was analy...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 원산지는 통상적으로 외형적인 특징으로 판별하였으나, 수산물의 종류가 매우 다양할 뿐만 아니라 몇몇 종에서는 변형과 변색이 빈번해서 외형적인 특징만으로 판별하기 어려운 형편이다. 따라서 본 연구에서는 유용한 어종으로 잘 알려진 넙치를 선택하여 보다 근본적인 방법으로 이러한 원산지를 판별하기 위하여, 최근에 유전자의 다양성을 판별하기 위해 개발된 degenerating gel electrophoresis scanning (DGES) 방법을 사용하였다[4]. 넙치는 식용으로 많이 사용되므로 양식 산업이 잘 발달되어 있고, 넙치의 전체 mtDNA 염기서열이 GenBank 에 이미 기록되어 있으며 넙치의 계통발생학적 연구가 활발히 진행되고 있으므로 본 연구를 보다 효과적으로 수행할 수 있었다.
  • 일반적으로 TDGS는 5~ 10개 정도의 multiplex PCR 산물을 수평 방향으로 전기영동을 실시한 다음 다시 DNA 크기 별로 구분하기 위해 2차 수직 방향의 denature and gradient gel을 전기영동하여 각각의 단일 가닥의 DNA (ssDNA)의 다양성을 구별할 수 있는 방법이다[9, 15]. 연구에서는 Ham 등(2002)이 이용한 방법으로 TDGS 장치에서 특이적 DNA 다양성을 관찰하기 위한 것으로 4개 지역의 3개 샘플로 총 12개의 샘플을 하나의 gel에 동시에 진행시켜 넙치 유전자에 존재하는 이형다양성을 관찰하였다. 본 실험도 60℃의 TEA 완충액 내에서 deionided formamide 가 포함되어 있는 acrylamide geb을 이용하여 DNA melting 과 denature가 이루어지게 되는데[13], 이를 효과적으로 실행하기 위하여, PCR에 사용되는 프라이머 5' 쪽에 GGGCCC 의 염기를 첨가하여 DNA melting 속도를 조절하여 단일한 ssDNA에서 전이가 생긴 경우에 DNA melting 후, single strand conformation polymorphism으로 다른 지역의 샘플과 DNA 변이가 나타나므로 그 변이를 관찰할 수 있었다[9, 14], 우선 각각의 DNA 영역을 개별적으로 PCR 한 후, 그 산물로 각각 DGES를 실시하였으나, 이 경우 이형 다양성으로 판별하기 위해서 보다 많은 시간이 소요될 수 있으므로 본 실험에서는 우선 넙치의 ND4와 cytochrome b 염기서열에서 (AB028664, 38-1371) 5개 영역 (ND4-1, 2, 3) PCR 산물을 한 번에 DGES를 실시하여 밴드의 차이가 있는지를 먼저 알아보았으며(Fig.
  • DNA를 사용하였다. 이들의 DNA polymorphism 을 관찰하기 위하여 DGES 방법을 이용하였으며, 보다 명확한 검증을 위하여 DGES에 사용된 PCR 생산 DNA를 사용하여 DNA 염기서열 분석을 병행하여, 넙치 원산지 판별을 위한 유의성 있는 기초 자료를 얻었기에 이를 보고하는 바이다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (17)

  1. Dollhopf, S. L., S. A. Hashsham and J. M. Tiedje. 2001. Interpreting 16S rDNA T-RFLP data: application of self- organizing maps and principal component analysis to describe community dynamics and convergence. Microb. Ecol. 42(4), 495-505 

  2. Gandrille, S., M. Goossens and M. Aiach. 1994. Scanning method to establish the molecular basis of protein C. deficiencies. Hum. Mutat. 4(1), 20-30 

  3. Gao, Y. Q., M. Danciger, N. B. Akhmedov, D. Y. Zhao, J. R. Heckenlively, G. A. Fishman, R. G. Weleber, S. G. Jacobson and D. B. Farber. 1998. Exon screening of the genes encoding the beta- and gamma-subunits of cone transducin in patients with inherited retinal disease. Mol. Vis. 4, 16-20 

  4. Garbeva, P., L. S. Overbeek, J. W. Vuurde and J. D. Elsas. 2001. Analysis of edophytic bcterial cmmunities of poato by plting and denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) of 16S rDNA based PCR fragments. Microb. Ecol. 41(4), 369-383 

  5. Ge, W., M. E. Davis, H. C. Hines and K. M. Irvin. 1999. Polymorphism in exon 10 of the bovine GHR gene detected by PCR-DGGE. Anim. Genet. 30(2), 167-168 

  6. Gelfi, C., S. C. Righetti, F. Zunino, G. Della Torre, M. A. Pierotti and P. G. Righetti. 1997. Detection of p53 point mutations by double-gradient, denaturing gradient gel electrophoresis. Electrophoresis 18(15), 2921-2927 

  7. Ghanem, N., E. Girodon, M. Vidaud, J. Martin, P. Fanen, F. Plassa and M. Goossens. 1992. A comprehensive scanning method for rapid detection of beta-globin gene mutations and polymorphisms. Hum. Mutat. 1(3), 229-239 

  8. Gottardi, E., M. Losekoot, R. Fodde, G. Saglio, C. Camaschella and L. F. Bernini. 1992. Rapid identification by denaturing gradient gel electrophoresis of mutations in the gamma-globin gene promoters in non-deletion type HPFH. Br. J. Haematol. 80(4), 533-538 

  9. Ham, S. Y., S. K. Lee, H. S. Han and D. H. Jin. 2002. DNA heteropolymorphism of Chum Salmon detected by denaturing gradient gel electrophoresis and real time PCR. J. Korean Fish Soc. 35, 490-496 

  10. Hamelin, R., N. Jego, P. Laurent-Puig, M. Vidaud, and G. Thomas. 1993. Efficient screening of p53 mutations by denaturing gradient gel electrophoresis in colorectal tumors. Oncogene 8(8), 2213-2220 

  11. Hanekamp, J. S., W. G. Thilly and M. A. Chaudhry. 1996. Screening for human mitochondrial DNA polymorphisms with denaturing gradient gel electrophoresis. Hum. Genet. 98(2), 243-245 

  12. Kam, L. and T. Edward. 2001. Bacterial community dynamics in liquid swine manure during storage; molecular analysis using DGGE/PCR of 16S rDNA. FEMS Microbiol. Ecology 38, 169-177 

  13. Mette, H. N. and B. R. Niels. 2002. Denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) approaches to study the diversity of ammonia-oxidizing bacteria. J. Microbiol. Methods 50, 189-203 

  14. Nico B, D. W. Wim, V. Villy and M. T. Eva. 2002. Evaluation of nested PCR-DGGE (denaturing gradient gel electrophoresis) with group-specific 16S rRNA primers for the analysis of bacterial communities from different wastewater treatment plants. FEMS Microbiol. Ecology 39, 101- 112 

  15. Popescu, T., M. Blazkova, L. Kozak, G. Jebeleanu, A. Popescu. 1998. Mutation spectrum and phenylalanine hydroxylase RFLP/VNTR background in 44 Romanian phenylketonuric alleles. Hum. Mutat. 12(5), 314-319 

  16. Saiki, R. K., D. H. Gelfand, S. Stoffel, S. J. Scharf, R. Higuchi, G. T. Horn, K. B. Mullis and H. A. Erlich. 1988. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science 239(4839), 487-491 

  17. Theelen, B., M. Silvestri, E. Gueho, A. van Belkum and T. Boekhout. 2001. Identification and typing of Malassezia yeasts using amplified fragment length polymorphism (AFLP), random amplified polymorphic DNA (RAPD) and denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE). FEM Yeast Res. 1(2), 79-86 

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로