중추신경계의 신경간세포가 파킨슨병과 뇌졸중과 같은 퇴행성 뇌 질환의 치료뿐만이 아니라 신경세포 발생과정에서의 중요성 때문에 최근에 커다란 관심의 대상이 되고 있다. 중추신경계의 발생과정 동안에, 중뇌의 도파민 신경세포의 형성은 두 가지의 분자생물학적인 기작에 의해서 결정된다. 첫째로, FGF-8, sonic hedgehog 그리고 전사조절인자 인 Nurr1이 도파민 신경세포의 형질을 결정짓는다. 또 다른 기작으로는, 전사조절인자 인 $Lm{\times}lb$와 $Pt{\times}3$가 중요하게 관련되어있다. 특히 Nurr1이 결핍된 생쥐에서, 타이로신수산화효소 (Tyrosine bydroxylase, TH) 면역양성 세포들이 중뇌흑색질에서 발견되지 않으므로 Nurr1이 도파민 신경세포의 발생에 필수적임을 알 수 있다. 본 연구에서는 도파민 신경세포의 형질을 유도하는데 있어서 Nurr1이 매개하는 기작을 연구하기 위해서 레트로 바이러스를 이용하여 Nurr1을 도입한 무한증식 신경간세포를 사용하였다. Nurr1 유전자의 과발현 만으로는 신경간세포에서 도파민 신경세포의 형질을 유도하지는 못하지만, 레티노이드 (retinoid, RA)와 폴스콜린 (forskolin, FK)을 처리하여 TH와 방향성 L-아미노산 탈카르복시화효소 (aromatic L-amino acid decarboxylase, AADC) mRNA의 발현을 유도하였다. 또한, Nurr1 과발현 신경간세포를 사람 별아교세포와 공동배양 하여 TH 발현량을 많이 증가시켰다. 이러한 공동배양실험에서, RA와 FK를 처리하면 TH의 발현수준이 더욱 더 증가함을 발견하였다. 이러한 결과들은 Nurr1 유전자를 도입한 사람 신경간세포가 파킨슨병 환자들에게 세포이식을 통한 유전자 치료의 유용성을 시사하고 있다.
중추신경계의 신경간세포가 파킨슨병과 뇌졸중과 같은 퇴행성 뇌 질환의 치료뿐만이 아니라 신경세포 발생과정에서의 중요성 때문에 최근에 커다란 관심의 대상이 되고 있다. 중추신경계의 발생과정 동안에, 중뇌의 도파민 신경세포의 형성은 두 가지의 분자생물학적인 기작에 의해서 결정된다. 첫째로, FGF-8, sonic hedgehog 그리고 전사조절인자 인 Nurr1이 도파민 신경세포의 형질을 결정짓는다. 또 다른 기작으로는, 전사조절인자 인 $Lm{\times}lb$와 $Pt{\times}3$가 중요하게 관련되어있다. 특히 Nurr1이 결핍된 생쥐에서, 타이로신수산화효소 (Tyrosine bydroxylase, TH) 면역양성 세포들이 중뇌흑색질에서 발견되지 않으므로 Nurr1이 도파민 신경세포의 발생에 필수적임을 알 수 있다. 본 연구에서는 도파민 신경세포의 형질을 유도하는데 있어서 Nurr1이 매개하는 기작을 연구하기 위해서 레트로 바이러스를 이용하여 Nurr1을 도입한 무한증식 신경간세포를 사용하였다. Nurr1 유전자의 과발현 만으로는 신경간세포에서 도파민 신경세포의 형질을 유도하지는 못하지만, 레티노이드 (retinoid, RA)와 폴스콜린 (forskolin, FK)을 처리하여 TH와 방향성 L-아미노산 탈카르복시화효소 (aromatic L-amino acid decarboxylase, AADC) mRNA의 발현을 유도하였다. 또한, Nurr1 과발현 신경간세포를 사람 별아교세포와 공동배양 하여 TH 발현량을 많이 증가시켰다. 이러한 공동배양실험에서, RA와 FK를 처리하면 TH의 발현수준이 더욱 더 증가함을 발견하였다. 이러한 결과들은 Nurr1 유전자를 도입한 사람 신경간세포가 파킨슨병 환자들에게 세포이식을 통한 유전자 치료의 유용성을 시사하고 있다.
Neural stem cells (NSCs) of the central nervous system (CNS) have raised a great interest not only for their importance in basic neural development but also for their therapeutic potentials in neurologically degenerative diseases such as Parkinson's, Alzheimer and stroke. During the CNS development,...
Neural stem cells (NSCs) of the central nervous system (CNS) have raised a great interest not only for their importance in basic neural development but also for their therapeutic potentials in neurologically degenerative diseases such as Parkinson's, Alzheimer and stroke. During the CNS development, two molecular cascades determine specification of midbrain dopamine system. In one pathway, FGF-8, sonic hedgehog and transcription factor Nurr1 specify dopamine neurotransmitter phenotype. In the other, transcription factors $Lm{\times}lb\;and\;Pt{\times}3$ are required for induction of dopaminergic neurons. In Nurr1 knockout mouse, tyrosine hydroxylase (TH) positive cells fail to appear in substantia nigra, indicating that Nurr1 is essential in specification of dopaminergic cell phenotype. In this study, we used the immortalized human NSCs retrovirally transduced with Nurr1 gene to probe the Nurr1 mediated mechanism to induce dopamine phenotype. While Nurr1 over-expression alone did not generate dopamine phenotype in NSCs, applications of retinoid and forskolin induced expression of TH and AADC mRNAs. In addition, co-cultures of Nurr1 expressing NSCs with human astrocytes induced a marked increase of TH expression. In this co-culture system, the addition of retinoid and forskolin dramatically increased expression of TH. These results indicate that the immortalized human NSCs with Nurr1 gene could have a clinical utility for cell replacement for the Parkinson patients.
Neural stem cells (NSCs) of the central nervous system (CNS) have raised a great interest not only for their importance in basic neural development but also for their therapeutic potentials in neurologically degenerative diseases such as Parkinson's, Alzheimer and stroke. During the CNS development, two molecular cascades determine specification of midbrain dopamine system. In one pathway, FGF-8, sonic hedgehog and transcription factor Nurr1 specify dopamine neurotransmitter phenotype. In the other, transcription factors $Lm{\times}lb\;and\;Pt{\times}3$ are required for induction of dopaminergic neurons. In Nurr1 knockout mouse, tyrosine hydroxylase (TH) positive cells fail to appear in substantia nigra, indicating that Nurr1 is essential in specification of dopaminergic cell phenotype. In this study, we used the immortalized human NSCs retrovirally transduced with Nurr1 gene to probe the Nurr1 mediated mechanism to induce dopamine phenotype. While Nurr1 over-expression alone did not generate dopamine phenotype in NSCs, applications of retinoid and forskolin induced expression of TH and AADC mRNAs. In addition, co-cultures of Nurr1 expressing NSCs with human astrocytes induced a marked increase of TH expression. In this co-culture system, the addition of retinoid and forskolin dramatically increased expression of TH. These results indicate that the immortalized human NSCs with Nurr1 gene could have a clinical utility for cell replacement for the Parkinson patients.
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문제 정의
특히 Mgl이 결핍된생쥐에서, 타이로신수산화효소 (Tyrosine hydroxylase, TH) 면역양성 세포들이 중뇌흑색질에서 발견되지 않으므로 Marl이 도파민 신경세포의 발생에 필수적임을 알 수 있다. 본 연구에서는도파민 신경세포의 형질을 유도하는데 있어서 Mgl이 매개하는기작을 연구하기 위해서 레트로 바이러스를 이용하여 을도입한 무한증식 신경간세포를 사용하였다 Nurrl 유전자의 과발현 만으로는 신경간세포에서 도파민 신경세포의 형질을 유도하지는 못하지만, 레티노이드 (retinoid, RQ 와 폴스콜린 (forskolin, FK)을 처리하여 TH와 방향성 L-아미노산 탈카르복시화효소 (aromatic L-amino acid decarboxylase, AADC) mRNA 의발현을 유도하였다. 또한, Nurrl 과발현 신경간세포를 사람 별아교세포와 공동배양 하여 TH 발현량을 많이 증가시켰다.
다분화 능력을 가지는 신경간세포를 중뇌 도파민 신경세포로 분화 유도하기위해서는 전사조절인자 Nurrl과 별아교세포로부터의 인자가필요하다는 보고도 있다<12). 이러한 사실들을 바탕으로, 본연구에서는 ASM 이 과발현되는 인간 신경간세포를 만든 후, 이를 도파민 신경세포로 분화유도하기 위하여 레티노산과 폴스콜린처리, 별아교세포 공동배양, SHH과 FGF-8에 의한 효과들을 조사하여 이에 대한 모델을 구성하였다.
제안 방법
hShh-N을 FGF-8과 조합하여 C4-Nurrl 세포주에 다음과같이 처리하였다. C4-hShh-N 세포주의 배지를 모아서 원심분리후 상층액만 조심스럽게 모아 새 배지와 7 : 3의 비율로섞은 후 C4-N"rl 세포의 배지를 제거하고 앞서 얻어진 혼합액을 이용하여 8일 동안 분화 유도하였다. FGF-8은 50 阐 헤파린 (heparin)은 1%의 농도로 같이 처리하였다.
그러나, C4와 A3 두 종류의 신경간세포에서 Nurrl 과발현만으로는 도파민 신경세포로 분화에서 가장 중요한 도파민 생합성에 관여하는 '효소인 TH의 발현이 유도되지 않았다. 도파민신경세포로 분화 유도하기 위해서 Nurrl 과발현 세포주인 C4-N"rl과 A3-Mht1 을 확립한 후, TH 발현과 도파민 신경세포의 분화에 관계하는 여러 요소들을 처리하여 도파민 신경세포의 분화를 유도하였다.
앞서 선별된 PA317/pBabe-puro/hcN"T 세포주를 먼저 100 mm 배양접시에 40% 농도로 접종하고, 감염 하루 전 표적 세포주인 사람 신경간세포 C4와 A3를 30% 농도로 100 mm 배양접시에 접종하였다. 이들 세포로의 2차 감염을 위하여 먼저 C4와 A3 세포의 배지를 제거하고 DEAE-덱스트란 (DEAE-dextran)이 25 Ug/ml의 농도로 함유된 배지를 첨가하여 37℃, 5% CO2 배양기에서 한 시간 동안 배양하였다.
PCR반응은 94℃- 45 초, 55℃- 45초, 72℃- 45초에서 GAPDH, AADC, DBH는 30 cycles 동안 반응시켰고, TH는 35 cycles 동안 반응시켰다. 1.2% agarose 겔에 전기영동해서 EtBr 염색으로 확인하였다.
2%, heparin 1%, bFGF 50 园戒의 농도와 UBC1 이 1% 포함된 DMEM (UBC1/DMEM) 배지로 교환하여 24 시간동안 37℃, 5% CO2 배양기에서 세포를 증식시켰다. 24시간 후 UBC1/DMEM 배지에서 헤파린 (heparin)과 bFGF를 넣지 않고 레티노산과 폴스콜린를 각각 1 硕과 5 UM 농도가 되도록 첨가하였다. RA는 6일 동안 이틀마다 배지를 교환하였고, 이후 8일 동안레티노산을 넣지 않고 2일에 한번씩 배지를 교환하였다.
C4-N(gl과 A3-Nurrl 인간 신경간세포를 0.25 x 10s cells/ml의 농도로 심은 후, 37℃, 5% CO2 배양기에서 세포가 바닥에 붙을 때까지 10% FBS가 포함된 DMEM에서 배양하였고, PBS로 두번 씻어주고 FBS 대신 insulin 1.2%, heparin 1%, bFGF 50 园戒의 농도와 UBC1 이 1% 포함된 DMEM (UBC1/DMEM) 배지로 교환하여 24 시간동안 37℃, 5% CO2 배양기에서 세포를 증식시켰다. 24시간 후 UBC1/DMEM 배지에서 헤파린 (heparin)과 bFGF를 넣지 않고 레티노산과 폴스콜린를 각각 1 硕과 5 UM 농도가 되도록 첨가하였다.
C4와 C4-AST을 커버슬립에 0.25 x 105 cells/ml의 농도로 심고 SHH-N과 FGF-8으로 분화를 유도한 뒤 면역세포화학반응 (immunocytochemistry)을 수행하였다. 세포고정화는 4% paraformaldehyde 용액 (0.
70℃ 에서 15분 동안 효소반응을 비활성화시킨 후 증류수 180 加를 첨가하고 사용하기 전까지 -20℃ 에 보관하였다. GAPDH의 PCRe 25 凤 부피로 template 5 以 10 * Buffer 2.5 處 50 mM MgC12 0.75 以 10 mM dNTP Mix 0.5 以 forward primer 25 pmole, reverse primer 25 pmole, Taq polymerase (5 U//Z1) 0.25 口1를 첨가하고 반응시켰다. TH, AADC, DBH의 PCRe 50 의 부피로 template 30 pl, 10 x Buffer 5 /A, 50 mM MgC12 1.
이들 세포로의 2차 감염을 위하여 먼저 C4와 A3 세포의 배지를 제거하고 DEAE-덱스트란 (DEAE-dextran)이 25 Ug/ml의 농도로 함유된 배지를 첨가하여 37℃, 5% CO2 배양기에서 한 시간 동안 배양하였다. PA317/pBabe-puro/hcN“rrl 세포주의 배지를 0.22 /zm 필터로 여과 후 배지가 제거된 C4와 A3세포주와 혼합 첨가하였다. 감염 24시간 후에 신선한 배지로 다시 교체하고 48시간 경과 후 퓨로마이신이 5 理/ml 농도로 함유된 배지에 10일 간격으로 2번의 교체작업을 통하여 C4-N勿rl, A3-Nurrl 세포주를 선별하였다.
TH 및 AADC, DBH 발현에 대한 별아교세포의 영향을 RT-PCR을 이용하여 조사하기 위하여 처음 24시간 동안은 bFGF를 넣어주고 세포 증식을 시켰고, 24시간 후에 사람 별아교세포와 공동배양을 통해서 분화를 유도하였다.
25 口1를 첨가하고 반응시켰다. TH, AADC, DBH의 PCRe 50 의 부피로 template 30 pl, 10 x Buffer 5 /A, 50 mM MgC12 1.5 jA, 10 mM dNTP Mix 1 以 forward primer 50 pmole, reverse primer 50 pmole, Taq polymerase (5 U〃d) 1 를 첨가하였다. PCR반응은 94℃- 45 초, 55℃- 45초, 72℃- 45초에서 GAPDH, AADC, DBH는 30 cycles 동안 반응시켰고, TH는 35 cycles 동안 반응시켰다.
22 /zm 필터로 여과 후 배지가 제거된 C4와 A3세포주와 혼합 첨가하였다. 감염 24시간 후에 신선한 배지로 다시 교체하고 48시간 경과 후 퓨로마이신이 5 理/ml 농도로 함유된 배지에 10일 간격으로 2번의 교체작업을 통하여 C4-N勿rl, A3-Nurrl 세포주를 선별하였다.
또한 도파민 신경세포 발생에 Nurrl 유전자와는 독립적으로 와 Lmxlb 두유 전자가 같이 발생에 관여하는 기작이 필요하다는 보고도 있다. 도파민 신경세포의 분화는 이와 같이 상당히 복잡하며 최종적으로 모식도에 본 연구에서 수행한 실험들과 여러 보고들을 기초로 도파민 신경세포의 분화에서 중요한 TH 유전자 발현에 대한 가상적인 모델 (model)을 도식화 하였다<Fig. 8).
레트로 바이 러스 벡터 pBabe-puro는 제한효소 SwB I 으로절단하고, 인간 전장 Nurrl cDNA (hcMwrl)를 포함하는 pBluescript USK(+) 는 XZw I 과 X阮 I 으로 자른 후 Klenow fragment로 둔단 말단 (blunt end)을 만들어 전기영동 후 QIAEX n 젤 추출키트 (Qiagen)로 용출시켜 순수 분리하였다. 최종 의 .
25 X 105 cells/ml의 농도로 심었고, 1차 세포 배양한 별아교세포 (rat astrocyte) 는 culture plate insert (Millipore) 에 두배의 농도로 접종 후, 7일 동안 공동배양 하였다. 레티노산과 폴스콜린은 위와 같은 농도로 첨가하였고, 레티노산은 6일 동안, 폴스콜린은 7일 동안 공동배양과 같은 시점에서 첨가하였다.
먼저 신경간세포는 신경세포 및 신경교세포로 분화할 수있는 능력을 갖는 미분화된 전구세포이기 때문에 신경세포로의 분화를 확인하기 위하여 신경세포의 표지 (marker)인 Q튜불린에 대한 면역세포화학반응을 수행하였다. C4와 C4-Nurrl 모두 Q튜불린에 면역 양성 반응을 보이고 있고, 이 사실로 Nurrl 과발현의 유무에 관계없이 신경세포로 분화가 이루어짐을 알 수 있다世ig.
다시 PBS로 5분간 3번 세척 후 Vectastain Elite ABC kit의 아비딘 (avidin)용액, 바이오틴 (biotin) 용액, PBS를 1:1: 50으로 반응시키기 30분전에 준비하여 상온에서 2시간 동안 반응시켰다. 미 반응물들은 PBS 로 5분간 3번 씻어주고 AEC(AEC stock 25 lA + 0.05 M acetate Buffer (PH 5.0) + 30% H2O2 3 U) 반응을 상온에서 10분 동안 진행 후, 증류수로 조심스럽게 세척하여 슬라이드슬립에 올려 관찰하였다.
본 연구에서는 Mwrl을 과발현하는 인간 신경간세포주를확립하여 도파민 신경세포로 분화 유도를 시도하였다. 그러나, C4와 A3 두 종류의 신경간세포에서 Nurrl 과발현만으로는 도파민 신경세포로 분화에서 가장 중요한 도파민 생합성에 관여하는 '효소인 TH의 발현이 유도되지 않았다.
또 하나는 대상 유전자를 표적 세포 염색체 안으로의 통합 (integration)이 안정하다는 것이다(13). 본 연구에서는 감염된 A3와 C4 사람 신경간세포를 항생제 퓨로 마이신 (puromycin)으로 선별 (selection)을 하여 Nurrl을과발현하는 A3-M//T1과 C4-Nurrl 세포주를 만들었다.
분화를 유도시킨 A3-Nurrl, C4-Nurrl 세포들을 RNAzol™ B (Tel-Test)를 이용하여 제조사의 프로토콜에 따라 전체 RNA를 추출하여 RT-PCR을 수행하였다. 분광기로 정량화한 후 2 陽의 전체 RNA, 1 小의 Oligo-dT (500 建/ml)를 넣고 DEPC 처리된 물로 11 以로 맞춘 후 70℃에서 10분간 방치하였다.
최종 의 .세포 내 감염을 위한 재조합 벡터 pBabe-puro/hcNurrle pBabe-puro/SnaB I 단편과 hcNurrl/Xba I, Xho I /Klenow 단편을 접합하여 제작하였다. 이 재조합플라스미드를 lipofectamine™ reagent (GibcoBRL)를 사용하여제조사의 방법에 따라 바이러스벡터 포장세포주 PA317 에 핵산전달감염 (transfection)시켰다.
이 재조합플라스미드를 lipofectamine™ reagent (GibcoBRL)를 사용하여제조사의 방법에 따라 바이러스벡터 포장세포주 PA317 에 핵산전달감염 (transfection)시켰다. 세포주에 감염 (transfection) 후 20시간 동안 37℃, 5% CO2 배양기에서 배양 후 신선한배지로 교체하고 이틀 후에 5 您/ml 의 퓨로마이신 (puromycin)이 함유된 선택배지에 10일동안 2번의 교체를 통해서 양성 세포주만을 선별하였다.
SHH 은 분비 단백질이므로 C4-hShh-Ne 배양시 배지로 인간 SHH-N을 과다 분비한다. 이 배지를 인간 신경간세포주 배양 시 배지에 첨가하였고, 광학 현미경에서 200배의 배율로 관찰하였다.
세포 내 감염을 위한 재조합 벡터 pBabe-puro/hcNurrle pBabe-puro/SnaB I 단편과 hcNurrl/Xba I, Xho I /Klenow 단편을 접합하여 제작하였다. 이 재조합플라스미드를 lipofectamine™ reagent (GibcoBRL)를 사용하여제조사의 방법에 따라 바이러스벡터 포장세포주 PA317 에 핵산전달감염 (transfection)시켰다. 세포주에 감염 (transfection) 후 20시간 동안 37℃, 5% CO2 배양기에서 배양 후 신선한배지로 교체하고 이틀 후에 5 您/ml 의 퓨로마이신 (puromycin)이 함유된 선택배지에 10일동안 2번의 교체를 통해서 양성 세포주만을 선별하였다.
접종하였다. 이들 세포로의 2차 감염을 위하여 먼저 C4와 A3 세포의 배지를 제거하고 DEAE-덱스트란 (DEAE-dextran)이 25 Ug/ml의 농도로 함유된 배지를 첨가하여 37℃, 5% CO2 배양기에서 한 시간 동안 배양하였다. PA317/pBabe-puro/hcN“rrl 세포주의 배지를 0.
이러한 형태학적 관찰을 통하여, Nurrl 과발현 신경간세포주에 SHH과 FGF-8을 처리하면 분화가 일어난다는 것을 알 수 있었다. 이와 같은 분화가 도파민 신경세포로 유도되는지 확인하기 위해서 FGH-8로 8일 동안 처리된인간 shh-N TH와 신경세포에 대한 표지 (marker)인 各튜불린 (Qtubulin)으로 면역세포화학반응을 수행하였다.
인간 SHH 아미노 말단 (amino terminal hShh-N)을 과발현하는 세포주를 확보하기 위하여, pcDNA3.1/myc-HisC/hShh-N construct를 제한효소 Not I 과 Ba也HI 처리 후 Klenow fragment로 점착성 말단을 만들고, 레트로 바이러스 벡터 pLPCX는 Hpa I 으로 자르고 hShh-N DNA 단편과 접 합하였다. 이후의 실험방법은 Nurrl 과발현 인간 신경간세포를 만드는 방법과 같은 방법으로 C4 - hShh-N 세포주를 확보하였다.
RA는 6일 동안 이틀마다 배지를 교환하였고, 이후 8일 동안레티노산을 넣지 않고 2일에 한번씩 배지를 교환하였다. 폴스콜린은 14일 동안 2일에 한번씩 배지에 첨가하였다.
대상 데이터
QIAEX II 젤 추출키트와 QIAGEN 플라스미드 미디키트는 QIAGEN (Valencia, CA, USA)사 제품이다. LIPOFECTAMINE™ Reagent는 GIbco BRL에서, 퓨로 마이신은 Sigma-Aldrich (St Louis, MO, USA), 0.22 마이크로미터 공극을 지니는 주사기 필터는 Millipore (Billerica, MA, USA) 사에서 구입하였다. 레티노산과 폴스콜린은 Sigma-Aldrich에서 구입하였다.
세포배양에 3차원적 환경을 제공하기 위하여 삽입된 Millicell-CM 세포배양판 입체삽입기는 Milli pore 사에서 구입하였다. RNAzol™ B는 Tel-Test (Friendswood, TX, USA)사에서 구입하였고, 역전사 효소와 DNA 증폭효소는 Gibco BRL에서 구입하였다. 타이로신수산화효소 (TH) 항체는 Pel-Freez Biologicals (Rogers, AR, US A)에서, VectaStain Elite ABC 키트는 Vector Laboratories (Burlingame, CA, USA)사에서 구매하였다.
타이로신수산화효소 (TH) 항체는 Pel-Freez Biologicals (Rogers, AR, US A)에서, VectaStain Elite ABC 키트는 Vector Laboratories (Burlingame, CA, USA)사에서 구매하였다. 그 밖의 언급되지 않는 시약류는 Sigma-Aldrich사에서 특급시약으로 구매하여 사용하였다.
22 마이크로미터 공극을 지니는 주사기 필터는 Millipore (Billerica, MA, USA) 사에서 구입하였다. 레티노산과 폴스콜린은 Sigma-Aldrich에서 구입하였다. 세포배양에 3차원적 환경을 제공하기 위하여 삽입된 Millicell-CM 세포배양판 입체삽입기는 Milli pore 사에서 구입하였다.
본 연구에서 수행하고자 하는 Nsrle 발생중인 도파민 신경세포에서 발현되며 중추신경계에서 넓은 발현분포를 보이는 전사조절인자이며 리간드가 아직 밝혀져 있지 않은 핵 수용체이다. RNR-1, HZF-3, NOT 이라고 불리우기도 흐}는 Nwrle NGFI-B와 매우 유사하다.
레티노산과 폴스콜린은 Sigma-Aldrich에서 구입하였다. 세포배양에 3차원적 환경을 제공하기 위하여 삽입된 Millicell-CM 세포배양판 입체삽입기는 Milli pore 사에서 구입하였다. RNAzol™ B는 Tel-Test (Friendswood, TX, USA)사에서 구입하였고, 역전사 효소와 DNA 증폭효소는 Gibco BRL에서 구입하였다.
제한효소와 그 밖의 반응 효소들은 모두 New England Biolab (Beverly, MA, USA) 제품을 이용하였고, Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), Fetal Bovine Serum (FBS), 젠타마이신은 GIbco BRL (Grand Island, NY, USA) 제품을 이용하였다. QIAEX II 젤 추출키트와 QIAGEN 플라스미드 미디키트는 QIAGEN (Valencia, CA, USA)사 제품이다.
RNAzol™ B는 Tel-Test (Friendswood, TX, USA)사에서 구입하였고, 역전사 효소와 DNA 증폭효소는 Gibco BRL에서 구입하였다. 타이로신수산화효소 (TH) 항체는 Pel-Freez Biologicals (Rogers, AR, US A)에서, VectaStain Elite ABC 키트는 Vector Laboratories (Burlingame, CA, USA)사에서 구매하였다. 그 밖의 언급되지 않는 시약류는 Sigma-Aldrich사에서 특급시약으로 구매하여 사용하였다.
이론/모형
1/myc-HisC/hShh-N construct를 제한효소 Not I 과 Ba也HI 처리 후 Klenow fragment로 점착성 말단을 만들고, 레트로 바이러스 벡터 pLPCX는 Hpa I 으로 자르고 hShh-N DNA 단편과 접 합하였다. 이후의 실험방법은 Nurrl 과발현 인간 신경간세포를 만드는 방법과 같은 방법으로 C4 - hShh-N 세포주를 확보하였다. hShh-N을 FGF-8과 조합하여 C4-Nurrl 세포주에 다음과같이 처리하였다.
성능/효과
TH 발현정도가 매우 증가하였다. C4-N"tt1 은 bFGF 경우와 별아교세포 공동배양에 레티노산과 폴스콜린을같이 처리한 경우에만 TH 발현 양상을 보였으나, AADC 발현은 C4와 비교하면 별아교세포 공동배양에서는 현저히 줄어들었고 bFGF에서만 발현이 되었다. A3-Nurrl도 C4-Nurrl 에서의 결과처럼 TH 발현정도가 매우 높았고, AADC는 전혀 발현되지 않았다(Fig.
7 D, E). AADC 발현은 조사하지 않았지만 TH 유전자의 발현이 되었으므로 C4-Nurrl 은 SHH과 FGF-8을 처리하면 도파민 신경세포로 분화 유도됨을 알 수 있었다. 본 연구에서는 SHH과 FGF-8을 처리한후 TH에 대한 면역세포화학반응만을 수행하였는데, 향후 TH 이외의 효소에 대한 역전사효소-PCR (RT-PCR)을 수행해야할 것으로 사료된다.
C4와 A3 신경간세포주는 레티노산과 폴스콜린을 처리한 결과처럼 TH 유전자 발현을 유도하지 못하였으나, C4-Wrl 과 A3-Nurrl 신경간세포주는 레티노산과 폴스콜린을 처리한 경우보다 TH 발현정도가 매우 증가하였다. C4-N"tt1 은 bFGF 경우와 별아교세포 공동배양에 레티노산과 폴스콜린을같이 처리한 경우에만 TH 발현 양상을 보였으나, AADC 발현은 C4와 비교하면 별아교세포 공동배양에서는 현저히 줄어들었고 bFGF에서만 발현이 되었다.
TH 발현에 대한 별아교세포의 영향은 Nurrl 과발현 신경간세포에서 레티노산과 폴스콜린에 비해서 훨씬 높은 것으로나타났으나 AADC의 발현이 완전히 사라져서 도파민 신경세포의 형질을 나타내지는 못하였다.
7 A, B). TH 항체로 면역세포화학반응을 수행한 결과 Nurrl을 과발현시키지 않은 C4는 양성 반응을 전혀 보이지 않았으며(Fig. 7 C), C4-Nurrl 세포주는 FGF-8을 처리한 경우와 SHH과 FGF-8을 동시에 처리한 두경우에 양성 반응을 보였다(Fig. 7 D, E). AADC 발현은 조사하지 않았지만 TH 유전자의 발현이 되었으므로 C4-Nurrl 은 SHH과 FGF-8을 처리하면 도파민 신경세포로 분화 유도됨을 알 수 있었다.
그 결과 C4-Nwrle TH를 발현하는 신경세포로 분화가 되었다. SHHe 세포막에 존재하는 수용체 복합체 Ptc-Smo의 Pte와 결합을 하고 이 신호를 Smo가 전사조절인자인 Gli에 전해서 유전자의 활성을 조절하는 기작이다.
그러나, C4와 A3 두 종류의 신경간세포에서 Nurrl 과발현만으로는 도파민 신경세포로 분화에서 가장 중요한 도파민 생합성에 관여하는 '효소인 TH의 발현이 유도되지 않았다. 도파민신경세포로 분화 유도하기 위해서 Nurrl 과발현 세포주인 C4-N"rl과 A3-Mht1 을 확립한 후, TH 발현과 도파민 신경세포의 분화에 관계하는 여러 요소들을 처리하여 도파민 신경세포의 분화를 유도하였다.
DBH 유전자의 발현은 어떤 경우에도 나타나지 않았다. 따라서, 도파민 신경세포로 분화 유도는 C4와 A3는 일어나지 않음을 확인할 수 있었으며, Nurrl 과발현된 신경간세포중에서 C4-M〃l에 bFGF를 처리하였을 경우에만 분화가 일어남을 알 수 있었다(Fig. 2).
4, 6). 또한 Nurrl 과발현 유무에 관계없이 SHH과 FGF-8을 처리한 세포역시 처리하지 않은 세포보다 많은 수상돌기의 뻗어감이 더많이 관찰된 것으로 보아 SHH과 FGF-8 이 분화에 커다란 역할을 할 것이라는 것을 예상할 수 있다. SHH과 FGF-8을 처리하면 세포들이 군집을 이루면서 일정한 형태를 이루는 경향을 보이고, 그물망 형태를 이루는 세포들도 관찰할 수 있었다(Fig.
본 연구에서는도파민 신경세포의 형질을 유도하는데 있어서 Mgl이 매개하는기작을 연구하기 위해서 레트로 바이러스를 이용하여 을도입한 무한증식 신경간세포를 사용하였다 Nurrl 유전자의 과발현 만으로는 신경간세포에서 도파민 신경세포의 형질을 유도하지는 못하지만, 레티노이드 (retinoid, RQ 와 폴스콜린 (forskolin, FK)을 처리하여 TH와 방향성 L-아미노산 탈카르복시화효소 (aromatic L-amino acid decarboxylase, AADC) mRNA 의발현을 유도하였다. 또한, Nurrl 과발현 신경간세포를 사람 별아교세포와 공동배양 하여 TH 발현량을 많이 증가시켰다. 이러한공동배양실험에서, RA와 FK를 처리하면 TH의 발현수준이 더욱더 증가함을 발견하였다.
별아교세포 공동배양에 의한 분화 유도의 결과를 보면 Nurrl 과발현 세포주인 C4-Mgl과 A3-ASvl에서만 TH 발현에 있어서는 bFGF, 레티노산, 폴스콜린에 비해 큰 효과가있었다. 공동배양에 사용한 삽입 배양 용기 (culture plate insert)에는 미세 구멍이 있어서 배양접시에서 배양하고 있는세포와 삽입 배양 용기에서 배양되는 별아교세포 사이에 직접적인 접촉을 방지하고 별아교세포가 방출하는 거대 '분자들은 통과할 수 있게 구성되었다.
파킨슨병 의 치료를 위해현재까지 알려진 치료법 중의 하나로 L-DOPA를 환자에게투여하는 방법이 있으나 수의운동장애 (dyskinesia) 등의 중대한 부작용을 초래하여 파킨슨병의 근본적인 치료법이될 수 없다. 신경독성물질인 6-히드록시도파민 (6-OHDA, 6-Hydroxydopamine) 이 나 1-메 틸-4-페 닐-1, 2, 3, 6-테트라히 드로피리딘 (MPTP, l-methyl-4-phenyl-l, 2, 3, 6-tetrahydropyridine)을투여하여 얻은 파킨슨병 동물 모델의 뇌에 태아의 중뇌조직을 이식하였을 때 운동실조 증세가 호전되었으며, 흰쥐태아의 뇌 조직이 이식 .후 숙주의 뇌에서 도파민 신경세포로 분화하여 도파민 신경전달 물질을 활발하게 생산하고 있음이 실증되었다(2, 3).
TH와 AADC가 함께 발현되어서 도파민 .신경세포의 형질을 보이는 경우는 은 폴스콜린, A3-Nurrle 레티노산과 폴스콜린을 처리하였을 경우에 도파민 신경세포의 형질을 나타냄을 알 수 있었다. 그리고, bFGF 도 TH 발현에 효과가 큰 것으로 나타났으나, AADC가 발현되지 않았으므로 레티노산과 폴스콜린과는 다른 기작을 통해작용함을 추측할 수 있다.
3-6). 이러한 형태학적 관찰을 통하여, Nurrl 과발현 신경간세포주에 SHH과 FGF-8을 처리하면 분화가 일어난다는 것을 알 수 있었다. 이와 같은 분화가 도파민 신경세포로 유도되는지 확인하기 위해서 FGH-8로 8일 동안 처리된인간 shh-N TH와 신경세포에 대한 표지 (marker)인 各튜불린 (Qtubulin)으로 면역세포화학반응을 수행하였다.
즉, Nurrl 유전자가 과발현하고 있는 세포주에서 RA와 FK 을 처리하였을 때 도파민 신경세포의 형질이 나타났으며 이 결과를 통해 Nurrl 유전자가 과발현하고 있는 인간 신경 간세 포주에 레티노산과 폴스콜린을 처리하면 도파민 신경세포로 분화 유도할 수 있음을 알 수 있었다.
후속연구
TH 유전자도 NRSE 염기서열이 존재하므로 도파민 신경세포로 분화를 유도하기 위해서는 REST의 발현억제가 필수적이라 할 수 있다. 따라서, 분화를 유도하면 REST의 발현 수준이 어떻게 변화하는지 조사해볼 필요가 있을 것이다. 또한 도파민 신경세포 발생에 Nurrl 유전자와는 독립적으로 와 Lmxlb 두유 전자가 같이 발생에 관여하는 기작이 필요하다는 보고도 있다.
8). 또한 도파민 신경세포 분화와 관련된 여러 기작들은 아직 이해하지 못한 부분이 많으므로 앞으로 좀더 활발한 연구가 지속 되어야 할 것이다.
또한 본 연구에서 얻은 결과를 바탕으로 앞에서 언급한 유도인자들의 다른 조합 뿐만 아니라 도파민 신경세포-분화에중요한 여러 유전자들의 조합이나 발현 조절 등을 통해 도파민 신경세포의 대량 확보 및 동물모델에 이식을 통해 in vivo 에서 분화 유도한 도파민 신경세포의 역할을 조사할 필요가있을 것으로 예상된다.
AADC 발현은 조사하지 않았지만 TH 유전자의 발현이 되었으므로 C4-Nurrl 은 SHH과 FGF-8을 처리하면 도파민 신경세포로 분화 유도됨을 알 수 있었다. 본 연구에서는 SHH과 FGF-8을 처리한후 TH에 대한 면역세포화학반응만을 수행하였는데, 향후 TH 이외의 효소에 대한 역전사효소-PCR (RT-PCR)을 수행해야할 것으로 사료된다.
참고문헌 (17)
Falm, S. (1986), Parkinson's disease, In Diseases of the Nervous System, A. K. Asbury, G. M. McKhann, and W. I. McDonald, Eds., p 1217, W. B. Saunders, Philadelphia
Brundin, P., R. E. Strecker, H. Widner, D. J. Clarke, O. G. Nilsson, B. Astedt, O. Lindvall, and A. Bjorklund (1998), Human fetal dopamine neurons grafted in a rat model of Parkinson's disease: immunological aspects, spontaneous and drug-induced behaviour, and dopamine release, Exp. Brain. Res. 70, 192-208
Dunnett, S. B. (1991), Transplantation of embryonic dopamine neurons: what we know from rats, J. Neurol. 238, 65-74
Weiss, S., C. Dunne, J. Hewson, C. Wohl, M. Wheathey, A. C. Peterson, and B. A. Reynolds (1996), Multipotent CNS stem cells are present in the adult mammalian spinal cord and ventricular neuroaxis, J. Neurosci. 16, 7599-7609
Saucedo-Cardenas, O., J. D. Quintana-Hau, W. D. Le, M. P. Smidt, J. J. Cox, F. D. Mayo, J. P. H. Burbach, and O. M. Conneely (1998), Nurr1 is essential for the induction of the dopaminergic phenotype and the survival of ventral mesencephalic late dopaminergic precursor neurons, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95, 4013-4018
Cazorla, P., M. P. Smidt, K. L. O'Malley, and J. P. H. Burbach (2000), A Response element for the homeodomain transcription factor Ptx3 in the tyrosine hydroxylase gene promoter, J. Neurochem. 74, 1829-1837
Zetterstrom, R. H., L. Solomin, L. Jansson, B. J. Hoffer, L. Olson, and T. Perlmann (1997), Dopamine neuron agenesis in Nurrl-deficient mice, Science. 276, 248-250
Ichinose, H., T. Ohye, T. Suzuki, C. Surni-Ichinose, T. Nomura, Y. Hagino, and T. Nagatsu (1999), Molecular cloning of the human Nurrl gene: characterization of the human gene and cDNAs, Gene. 230. 233-239
Ye, W., K. Shimamura, J. L. R. Rubenstein, M. A. Hynes, and A. Rosenthal (1998), FGH and slth signals control dopaminergic and serotonergic cell fate in the anterior neural plate, Cell. 93, 755-766
Sakurada, K., M. Ohshima-Sakurada, T. D. Palmer, and F. D. Gage (1999), Nurr1, an orphan nuclear receptor, is a transcriptional activator of endogenous tyrosine hydroxylase in neural progenitor cells derived from the adult brain, Development. 126, 4017-4026
Wagner, J., P. Akerud, D. S. Castro, P. C. Holm, J. M. Canals, E. Y. Snyder, T. Perlmann, and E. Arenas (1999), Induction of a midbrain dopaminergic phenotype in Nurr1-overexpressing neural stem cells by type 1 astrocytes, Nature Biotech. 17, 653-659
Felts, K., J. C. Bauer, and P. Vaillancourt (1999), High-titer retroviral vectors for gene delivery, Strategies Newsletters. 12, 74-77
Trocme, C., C. Sarkis, J. M. Herme!, R. Duchateau, S. Harrison, M. Simonneau, R. AI-Shawi, and J. Mallet (1998), CRE and TRE sequence of the rat tyrosine hydroxylase promoter are required for the basal expression in adult mice but not in the embryo, Euro. J. Neurosci. 10, 508-521
Iwawaki, T., K. Kohno, and K. Kobayashi (2000), Identification of a potential Nurrl response element that activates the tyrosine hydroxylase gene promoter in cultured cells, Biochem. Biophy. Res. Commun. 274, 590-595
Schinnnel, J. J., L. Crews, S. Roffler-Tarlov, and D. M. Chikaraishi (1999), 4.5 kb of the rat tyrosine hydroxylase 5' flanking sequence directs tissue specific expression during development and contains consensus sites for multiple transcription factors, Mol. Brain Res. 74, 1-14
Huang, Y., S. J. Myers, and R. Dingledine (1999), Transcriptional repression by REST : recruittnent of Sin3A and histone deacetylase to neuronal genes, Nature Neurosci. 2, 867-872
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