$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

이종 심장 판막 및 대혈관 이식편과 심낭에서 효과적인 탈세포화 방법에 관한 연구: 탈세포화의 최적화
Study on an Effective Decellularization Technique for Cardiac Valve, Arterial Wall and Pericardium Xenographs: Optimization of Decellularization 원문보기

大韓胸部外科學會誌 = The Korean journal of thoracic and cardiovascular surgery, v.41 no.5 = no.286, 2008년, pp.550 - 562  

박천수 (서울대학교 의과대학 흉부외과학교실, 서울대학교병원 임상의학 연구소, 바이오 이종장기개발사업단) ,  김용진 (서울대학교 의과대학 흉부외과학교실, 서울대학교병원 임상의학 연구소, 바이오 이종장기개발사업단) ,  성시찬 (부산대학교 의과대학 흉부외과학교실) ,  박지은 (서울대학교 의과대학 흉부외과학교실, 서울대학교병원 임상의학 연구소, 바이오 이종장기개발사업단) ,  최선영 (서울대학교 의과대학 흉부외과학교실, 서울대학교병원 임상의학 연구소, 바이오 이종장기개발사업단) ,  김웅한 (서울대학교 의과대학 흉부외과학교실, 서울대학교병원 임상의학 연구소, 바이오 이종장기개발사업단) ,  김경환 (서울대학교 의과대학 흉부외과학교실, 서울대학교병원 임상의학 연구소, 바이오 이종장기개발사업단)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

배경: 조직공학분야에서 이종조직의 세포성분에 대한 면역반응을 없애기 위한 기본적인 과정으로 조직의 탈세포화에 대한 연구가 있어왔다. 본 연구는 기존에 탈세포화에 효과적이었다고 보고되었던 방법들을 변형 혹은 재현해 보고, 이를 통해 치적의 탈세포화를 얻을 수 있는 조건을 찾고자 하였다. 대상 및 방법: 돼지의 대동맥 및 폐동맥판막, 대동맥 및 폐동맥벽, 심낭을 탈세포화 세정제(detergents)에 대한 농도 및 배양시간, 온도조건, 용질에 대한 삼투압 등을 달리하고, 여러 탈세포화용액 및 그 조합을 통해 단일단계 및 여러 단계의 방법으로 배양하여 탈세포화를 시행하였다. 이렇게 탈세포화 실험을 마친 조직은 hematoxylin-eosin (H&E) 염색을 통해 탈세포화의 정도와 세포 외 기질의 보존 정도를 평가하였고, 일부탈세포화된 조직에서는 이종항원면역제거 정도를 파악하는 alpha-Gal 염색과 DAPI 염색을 동시 시행하여 관찰하였다. 결과: Polyethylene glycol이나 peracetic acid를 이용한 방법에서는 탈세포화가 되지 않았다. 단일단계방법으로는 sodium deoxycholate (DOA), sodium dodesyl sulfate (SDS), Triton X-100, SDS와 Triton X-100을 섞은 용액에서, 다단계방법으로는 저장성 완충용액 ${\rightarrow}$ X-100 ${\rightarrow}$ SDS, DOA ${\rightarrow}$ 저장성 완충용액 ${\rightarrow}$ SDS, 저장성 완충용액 ${\rightarrow}$ SDS에서 탈세포화가 이루어 졌다. DOA는 다른 탈세포화 방법에 비해 세포 외 기질의 파괴가 심하였고, 특히 실험온도가 높아질 수록 세포 외 기질의 파괴가 더욱 현저함을 알 수 있었다. 사용되는 화학물질의 종류, 양, 처리시간 및 세포 외 기질의 파괴 정도를 고려하여 지속적으로 재현 가능한 탈세포화에 비교적 적합한 조합 및 조건은 단일단계방법으로 $4^{\circ}C$에서 SDS와 Triton X-100를 섞은 저장성용액에서 24시간 배양하는 방법과, 다단계방법으로 저장성 완충용액과 SDS를 연속적으로 사용하는 방법으로, $4^{\circ}C$에서 $6{\sim}8$시간 이상 저장성 완충용액에 처리한 후, 0.25% SDS가 섞인 저장성 완충용액에 16시간 배양 후 등장성 완충용액에 처리하는 방법이었다. 결론: $4^{\circ}C$에서 SDS 과 Triton X-100을 섞은 저장성 완충용액에서 24시간 배양하는 단일단계방법이나, 저장성완충용과 SDS를 연속적으로 사용하는 다단계 방법을 통해 세포 외 조직을 비교적 잘 보존하면서 적은 수의 탈세포화 용액을 사용하여 효과적인 탈세포화를 얻을 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Background: We attempted to reproduce a previously reported method that is known to be effective for decellularization, and we sought to find the optimal condition for decellularization by introducing some modifications to this method. Material and Method: Porcine semilunar valves, arterial walls an...

주제어

참고문헌 (16)

  1. Gilbert TW, Sellaro TL, Badylak SF. Decellularization of tissues and organs. Biomaterials 2006;27:3675-83 

  2. Uchimura E, Sawa Y, Taketani S, et al. Novel method of preparing acellular cardiovascular grafts by decellularization with poly (ethylene glycol). J Biomed Mater Res 2003;67: 834-7 

  3. Freytes DO, Badylak SF, Webster TJ, Geddes LA, Rundell AE. Biaxial strength of multilaminated extracellular matrix scaffolds. Biomaerials 2004;25:2353-61 

  4. Hodde J, Record R, Tullius R, Badylak S. Fibronectin peptides mediate HMEC adhesion to porcine-derived extracellular matrix. Biomaterials 2002;23:1841-8 

  5. Chen RN, Ho HO, Tsai YT, Sheu MT. Process development of an accellular dermal matrix (ADM) for biomedical applications. Biomaterials 2004;25:2679-86 

  6. Hudson TW, Liu WY, Schmidt CE. Engineering an improved acellular nerve graft via optimized chemical processing. Tissue Eng 2004;10:1346-58 

  7. Woods T, Gratzer PF. Effectiveness of three extraction techniques in the development of a decellularized bone- anterior cruciate ligament-bone graft. Biomaterials 2005;26: 7339-49 

  8. Lin P, Chan WC, Badylak SF, Bhatia SN. Assessing porcine liver-derived biomatrix for hepatic tissue engineering. Tissue Eng 2004;10:1046-53 

  9. Hirsch D, Drader J, Thomas TJ, et al. Inhibition of calcification of glutaraldehyde pretreated porcine aortic valve cusps with sodium dodecyl sulfate: preincubation and controlled released studies. J Biomed Mater Res 1993;27: 1477-84 

  10. Kasimir MT, Rieder E, Seebacher G, et al. Comparison of different decellularization procedures of porcine heart valves. Int J Artif Organs 2003;26:421-7 

  11. Wilcox HE, Korossis SA, Booth A, et al. Biocompatibility and recellularization potential of an acellular porcine heart valve matrix. J Heart Valve Dis 2005;14:228-37 

  12. Booth C, Korossis SA, Wilcox HE, et al. Tissue engineering of cardiac valve prostheses I: development and histological characterization of an acellular porcine scaffold. J Heart Valve Dis 2002;11:457-62 

  13. Rieder E, Kasimir MT, Silberhumer G, et al. Decellularization protocols of porcine heart valves differ importantly in efficiency of cell removal and susceptibility of the matrix to recellularization with human vascular cells. J Thorac Cardiovasc Surg 2004;127:399-405 

  14. Dahl SL, Koh J, Prabhakar V, Niklason LE. Decellularized native and engineered arterial scaffolds for transplantation. Cell Transplant 2003;12:659-66 

  15. Vesely I, Noseworthy R, Pringle G. The hybrid xenograft/ autograft bioprosthetic heart valve: in vivo evaluation of tissue extraction. Ann Thorac Surg 1995;60:359-64 

  16. Galili U. The $\alpha$ -gal epitope (Gal $\alpha$ 1-3Gal_1-4GlcNAc-R) in xenotransplantation. Biochimie 2001;83:557-63 

저자의 다른 논문 :

LOADING...
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로