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회분식반응기를 이용한 미강유, 팜스테아린과 고올레인산 해바라기씨유 유래 대량 제조된 저트랜스 쇼트닝의 특성 연구
Characterization of Scaled-up Low-Trans Shortening from Rice Bran Oil and High Oleic Sunflower Seed Oil with Batch Type Reactor 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.38 no.3, 2009년, pp.338 - 345  

김지영 (충남대학교 식품공학과) ,  이기택 (충남대학교 식품공학과)

초록
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미강유(RBO), 팜스테아린(PS), 고올레인산 해바라기씨유(HO)를 기질로 사용하여 24 hr, $65^{\circ}C$의 조건하에 회분식 반응기(batch type reactor)에서 TLIM을 이용한 interesterification을 통해 생성된 저트랜스 쇼트닝의 이화학적 특성을 살펴보았다. DSC 분석결과를 살펴보면, SFC 함량 변화는 commercial shortening과 low-trans shortening(LTS) 간에 거의 유사하게 측정되었고, slip melting point는 각각 35.5, $34.8^{\circ}C$로 나타났다. 지방산 조성 분석 결과, LTS는 전체 지방산 조성의 90% 이상이 C16:0(33.7 wt%), C18:1(45.7 wt%), C18:2(13.4 wt%)로 구성되어 있으며 이 중 트랜스지방산은 시중 유통 쇼트닝보다 3배 이상 적은 0.5 wt%로 미량 검출되었다. Sn-2 position에 위치한 지방산 조성은 C16:0이 36.6 wt%, C18:1이 43.5 wt%로 나타났다. LTS의 주요 TAG 조성으로는 POO, POP, PLO 등으로 나타났고, 반응 전과 반응 후의 TAG 조성을 비교해 보면, OOO와 PPP의 area%는 각각 27.65에서 6.97 area%로, 11.97에서 3.36 area%로 감소한 반면 POO는 15.94에서 29.05 area%로, PLO는 6.44에서 13.05 area%로 증가되었다. ${\alpha},\;{\gamma}\;{\delta}$-Tocopherol 분석 결과 LTS의 total tocopherol은 12.37 mg/100 g, ${\gamma}$-oryzanol 함량은 0.43 mg/100 g을 나타냈으며, total phytosterol 함량은 251.38 mg/100 g으로 나타났다. Commercial shortening과 LTS의 texture analyzer를 통한 hardness 측정 결과, commercial shortening은 157.41 g, LTS는 157.00 g으로 두 시료의 hardness가 비슷하게 측정되었다. LTS의 polymorphic form을 측정하기 위해 x-ray duffraction을 사용하였다. 일반적으로 쇼트닝이나 마가린은 ${\beta}'$형 결정일 때 바람직하다고 여겨지는데, LTS의 분석 결과 ${\beta}$형이 함께 공존하고 있지만, ${\beta}'$형이 우세하게 나타났다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Scaled-up low-trans shortening (LTS) was produced by lipase-catalyzed interesterification. Blend of rice bran oil (RBO), palm stearin (PS) and high oleic sunflower seed oil (HO) with 1:2:0.9 (w/w/w) ratio was interesterified using immobilized lipase from Thermomyces lanuginosus (TLIM) in the batch t...

주제어

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문제 정의

  • 또한 미강유에는 항산화 물질로 잘 알려진 토코페롤과 오리자놀은 천연 항산화제로서 큰 관심을 모으고 있다(11). 이에 본 연구에서는 미강유(RBO), 팜스테아린(PS), 고올레인산 해바라기씨유(HO)를 기질로 사용하여 회분식 반응기(batch type reactor)에서 sn-1, 3의 위치에 주로 특이적으로 작용하는 TLIM(12)을 이용한 interesterification을 통해 대량 생성된 저 트랜스 쇼트닝의 이화학적 특성과 결정학적 성질을 살펴보았다.

가설 설정

  • 3)HO: high oleic sunflower seed oil. 4)Low-trans shortening.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
트랜스지방산은 인체에 어떤 영향을 미치는가? 쇼트닝과 같은 반고체지는 높은 식미감을 부여하고 유지의 저장 및 유통기간을 연장시킨다는 이점이 있어 사용되어 왔다(1). 그러나 근래의 연구 결과에 따르면 트랜스지방산의 섭취는 건강상 안 좋다고 알려진 저밀도 지단백(low density lipoprotein, LDL) 콜레스테롤 수치를 증가시키는 반면 건강상 좋다고 알려진 고밀도 지단백(high density lipoprotein, HDL) 콜레스테롤의 수치는 감소시키며(2), 심혈관계 질병의 발생률을 높이고, 동맥경화, 당뇨, Alzheimer 등의 질환을 악화시키는 결과를 초래할 수도 있다고 보고되고 있다(3). 이에 외국에서는 트랜스지방산의 함량 및 섭취수준에 대한 조사 및 연구가 이미 행해지고 있으며 이러한 연구 결과를 토대로 국제적으로 트랜스지방산의 섭취를 제한하려는 법령이 발표되었다.
트랜스지방산의 생성 방법은 무엇인가? 트랜스지방산은 cis형의 불포화지방산을 가진 식물성 유지가 촉매의 존재 하에 수소가 첨가되어 반고체 상태로 부분 경화될 때 생성된다. 쇼트닝과 같은 반고체지는 높은 식미감을 부여하고 유지의 저장 및 유통기간을 연장시킨다는 이점이 있어 사용되어 왔다(1).
재구성지질을 생성하는 방법 중 효소적 방법의 장점은 무엇인가? 재구성지질(structured lipids, SL)은 화학적 또는 효소적 방법에 의해 triacylglyceride(TAG) 분자 안에서 지방산의 조성, 위치를 무작위 또는 선택적으로 변화시키거나 새로운 기능성 지방산의 결합에 의해 생성될 수 있다(6). 화학적 합성반응의 경우 에너지 소비가 크고, 부반응이 생기는 반면 효소적 합성반응은 효소의 기질 및 반응 특이성을 이용하여 반응을 선택적이고 효율적으로 할 수 있다는 장점이 있다. 또한 효소적 합성은 효소를 사용하여 기질 자체의 지방산을 무작위 또는 선택적으로 재배열시키는 것으로 이성체의 큰 변화 없이 유지의 물리적 또는 화학적 특성을 변화 시킬 수 있다(7). 한편 위치 특이성을 가진 lipase를 통한 효소적 합성은 원하는 지방산 조성의 재구성 지질을 생성할 수도 있다.
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참고문헌 (20)

  1. Bethesda MD. 1996. Position paper on trans fatty acids. Am J Clin Nitr 63: 663-670 

  2. Lichtenstein AH. 1998. Trans fatty acid and blood lipid levels, LP(a), parameters of cholesterol metabolism, and hemostatic factors. J Nutr Biochem 9: 244-248 

  3. Park JM, Ji WG, Kim EJ, Park DJ, Shin JH, Shim SM, Suh HJ, Chang UJ, Kang DH, Kim JM. 2007. Analysis of trans fatty acid content in processed foods and meat products. Kor J Food Sci Ani Resour 27: 531-537 

  4. IUFoST News. 2007. International union of food science and technology scientific council information bulletin #4-trans fatty acids. LWT-Food Sci Technol 40: 383-387 

  5. 식품의약품안전청. 2007. 2004-2006년 트랜스지방 모니터링결과 

  6. Lee KT, Akoh CC. 1998. Structure lipids: synthesis and applications. Food Rev Int 14: 17-34 

  7. Lee KT, Foglia TA, Lee JH. 2005. Low-calorie fat substitutes: synthesis and analysis. In Handbook of industrial biocatalysis. Hou C, ed. CRC Press, FL, USA. Vol 16, p 1-19 

  8. Karabulut I, Turan S, Ergin G. 2004. Effects of chemical interesterification on solid fat content and slip melting point of fat/oil blends. Eur Food Res Tech 218: 224-229 

  9. Zhang H, Pedersen LS, Kristensen D, Adler-Nissen J, Holm HC. 2004. Modification of margarine fats by enzymatic interesterification: evaluation of a solid-fat-content-based exponential model with two groups of oil blends. J Am Oil Chem Soc 81: 653-658 

  10. Farmani J, Hamedi M, Safari M, Madadlou A. 2007. Trans-free iranian vanaspati through enzymatic and chemical transesterification of triple blends of fully hydrogenated soybean, rapeseed and sunflower oils. Food Chem 102: 827-833 

  11. Kwon KS, Choi KS, Kim HK. 1996. Comparative studies on the composition of pola lipids in japonica and indica rice bran oils. J Korean Soc Food Sci Nutr 25: 735-740 

  12. Lee KT, Akoh CC. 1997. Effects of selected substrate forms on the synthesis of structured lipids by two immobilized lipases. J Am Oil Chem Soc 74: 579-584 

  13. Kim IH, Kim H, Lee KT, Chung SH, Ko SN. 2002. Lipase-catalyzed acidolysis of perilla oil with caprylic acid to produce structured lipids. J Am Oil Chem Soc 79: 363-367 

  14. 식품의약품안전청. 2007. 식품 등 기준규격 미설정 물질의 시험방법. 식품의약품안전청고시 제2007-10호 

  15. Fomuso LB, Akoh CC. 2003. Lipase-catalyzed acidolysis of olive oil and caprylic acid in a bench-scale packed bed bioreactor. Food Res Int 35: 15-21 

  16. Lee KT, Foglia TA. 2000. Synthesis, purification and characterization of structured lipids produced from chicken fat. J Am Oil Chem Soc 77: 1027-1034 

  17. Lee KT, Jones KC, Foglia TA. 2002. Separation of structured lipids by high performance liquid chromatography. Chromatographia 55: 197-201 

  18. Yella Reddy S, Jeyarani T. 2001. Trans-free bakery shortenings from mango kennel and mahua fats by fractionation and blending. J Am Oil Chem Soc 78: 635-340 

  19. Criado M, Hernandez-Martin E, Lopez-Hernandez A, Otero C. 2007. Enzymatic interesterification of extra virgin olive oil with a fully hydrogenated fat: characterization of the reaction and its products. J Am Oil Chem Soc 84: 717-726 

  20. Larsson K. 1966. Classification of glyceride crystal forms. Acta Chem Scand 20: 2255-2260 

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