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초록
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본 연구에서는 여뀌 추출물의 항산화, 미백, 항주름 효과를 통한 항노화 활성을 조사하였다. 여뀌 추출물의 free radical (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, DPPH) 소거활성($FSC_{50}$)은 분획물 중 ethyl acetate 분획에서 $5.23\;{\mu}g/mL$로 가장 큰 활성을 나타내었다. Luminol-의존성 화학발광법을 이용한 $Fe^{3+}$-EDTA/$H_2O_2$계에서 생성된 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)에 대한 여뀌 추출물의 총 항산화능은 분획물 중 ethyl acetate 분획($0.40\;{\mu}g/mL$)이 큰 활성을 나타내었다. 여뀌 추출물에 대하여 rose-bengal로 증감된 사람 적혈구의 광용혈에 대한 억제 효과를 측정하였다. 여뀌 추출물의 경우 $1\;{\sim}\;10\;{\mu}g/mL$의 농도에서 광용혈을 억제하였다. 미백 및 주름억제 효과측정으로는 각각 tyrosinase 및 elastase의 활성 저해 효과를 측정하였다. Tyrosinase의 활성 저해 효과($IC_{50}$)는 aglycone 분획($8.90\;{\mu}g/mL$) 에서, elastase의 활성 저해 효과($IC_{50}$)도 aglycone 분획($2.37\;{\mu}g/mL$)에서 가장 큰 저해활성을 나타났다. 여뀌 추출물중 ethyl acetate 분획과 aglycone 분획에 대한 실험 결과로부터 항산화, 항노화 화장품 원료로서의 가능성을 확인하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, we investigated the antioxidative activity and inhibitory effects on elastase and tyrosinase of Persicaria hydropiper L. extracts. The free radical (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, DPPH) scavenging activities ($FSC_{50}$) of ethyl acetate fractions of Persicaria hydropiper L...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 계)에서의 이들 ROS에 대한 총항산화능에 관한 연구는 아직 되어 있지 않다. 따라서 본 연구에서는 화장품 원료로서 사용 가능한 우리나라 여뀌를 구입하여 추출물(혹은 분획)을 제조하고 이들 추출물(혹은 분획)의 1O2으로 유도된 세포손상에 대한 보호활성, Fe3+-EDTA/H2O2 계에서의 총 항산화능, 미백과 관련 있는 tyrosinase와 피부 주름 생성에서 중요한 역할을 하는 elastase 활성 저해 효과를 측정하였고, 항산화 및 항노화 활성을 가지는 기능성 화장품 소재로서 가능성이 있는지 검토하였다.

가설 설정

  • 5) 피부의 탄력감소 및 주름생성에 있어서 elastase의 활성 감소는 매우 중요하다. 여뀌 추출물의 elastase 저해 활성(IC50)을 측정한 결과 추출물 중 aglycone 분획이 2.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
ROS는 무엇인가? 산화적 스트레스는 주 원인이 태양 자외선(UVA 및 UVB)에의 노출이며, 자외선에 의해 생성된 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)이 피부의 항산화제를 압도할 때 일어난다. ROS란 반응성이 매우 큰 1O2 및 ⋅OH를 비롯하여 O2•- , H2O2, ROO⋅, RO⋅, ROOH 및 HOCl 등을 포함한다[1,2]. 이들은 포르피린과 같은 광증감제에 의한 광증감반응 및 몇 가지 효소반응을 포함하는 다양한 과정을 거쳐서 세포 및 조직 중에서 생성될 수 있다[3].
여뀌의 건조한 잎의 추출물에는 플라보노이드가 함유되있는데 어떠한 효능이 있는가? 여뀌의 건조한 잎의 추출물의 주성분으로는 quercetin 3-O-β-L-rhamnoside (quercitrin), kaempferol-3-glucoside, 6-hydroxy-apigenin, galloyl kaempferol 3-glucoside, scutillarein, 6-hydroxyluteolin, 6-hydroxyluteolin-7-O-β-D-glucopyranoside, quercetin 3-O-β-D-glucuronide, galloyl quercetin, quercetin 등이 함유된 것으로 보고되었다[23]. 이러한 플라보노이드가 함유된 여뀌는 항산화 활성과 지질과산화 억제 작용을 하는 것으로 보고되고 있고[24], 또한 항균작용 및 지혈작용을 한다[22].
산화적 스트레스의 주 원인은? 피부는 다양한 환경적 요인(자외선, 공해, 산화제)에의 빈번한 접촉에 기인한 산화적 스트레스에 민감하다. 산화적 스트레스는 주 원인이 태양 자외선(UVA 및 UVB)에의 노출이며, 자외선에 의해 생성된 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)이 피부의 항산화제를 압도할 때 일어난다. ROS란 반응성이 매우 큰 1O2 및 ⋅OH를 비롯하여 O2•- , H2O2, ROO⋅, RO⋅, ROOH 및 HOCl 등을 포함한다[1,2].
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참고문헌 (23)

  1. E. H. Witt, P. Motchnik, L. Packer, Evidence for UV light as an oxidative stressor in skin, eds J. Fuchs and L. Packer, Oxidative Stress in Dermatology. 29, New York, Dekker (1993) 

  2. I. Emerit, Free radicals and aging of the skin, eds L. Emerit and B. Chance, Free radicals and aging, 328, Basel, Birkhauser (1992) 

  3. C. S. Foote, Photosensitized oxidation and singlet oxygen; consequences in biological systems, ed. W. A. Pryor, 2, 85, Acdemic press, New York (1976) 

  4. S. N. Park, Ph. D. Dissertation, Seoul National Univ., Seoul, Korea (1989) 

  5. S. N. Park, Skin aging and antioxidant, J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 23, 75 (1997) 

  6. S. N. Park, Protective effect of isoflavone, genistein from soybean on singlet oxygen induced photohemolysis of human erythrocytes, Korean J. Food Sci. Technol., 35(3), 510 (2003) 

  7. S. N. Park, Antioxidative properties of baicalein, component from Scutellaria baicalensis Georgi and its application to cosmetics (I), J. Korean Ind. Eng. Chem., 14(5), 657 (2003) 

  8. K. Scharffetter-Kochanek, Photoaging of the connective tissue of skin: its prevention and therapy, antioxidants in disease mechanism and therapy, ed. H. Sies, 38, 639 (1997) 

  9. R. M. Tyrrell and M. Pidoux, Singlet oxygen involvement in the inactivation of cultured human fibroblast by UVA and near visible radiations, Photochem. Photobiol., 49, 407 (1989) 

  10. G. F. Vile and R. M. Tyrrell, UVA radiation- induced oxidative damage to lipid and protein in vitro and in human skin fibroblasts is dependent on iron and singlet oxygen, Free Radical Biology & Medicine, 18, 721 (1995) 

  11. K. Scharffetter-Kochanek, M. Wlaschek, K. Briviba, and H. Sies, Singlet oxygen induces collagenase expression in human skin fibroblasts, FEBS Lett., 331, 304 (1993) 

  12. M. Wlaschek, K. Briviba, G. P. Stricklin, H. Sies, and K. Scharffetter-Kochanek, Singlet oxygen may mediate the ultraviolet A in induced synthesis of interstitial collagenase, J. Invest. Dermatol., 104, 194 (1995) 

  13. A. Oikarinen, J. Karvonen, J. Uitto, and M. Hannuksela, Connective tissue alterations in skin exposed to natural and therapeutic UV-radiation, Photodermatology, 2, 15 (1985) 

  14. A. Oikarinen and M. Kallioinen, A biochemical and immunohistochemical study of collagen in sun-exposed and protected skin, Photodermatology, 6, 24 (1989) 

  15. L. H. Kligman, UVA induced biochemical changes in hairless mouse skin collagen: a contrast to UVB effects, ed. F. Urbach, 209, Valdemar, Overland 

  16. J. W. Choi, S. I. Kim, J. Y. Kim, H. J. Yang, K. H. Lee, and S. N. Park, Antioxidative and cellular protective effects of Jeju native plant extracts against reactive oxygen species (I), J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 32(3), 181 (2006) 

  17. H. J. Yang and S. N. Park, Evaluation of antioxidant potential of extract/fractions of Equisetum arense (I), J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 33(2), 61 (2007) 

  18. H. J. Yang and S. N. Park, Component analysis and study on anti-elastase activity of Equisetum arense (II), J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 33(3), 139 (2007) 

  19. S. M. Jeon, S. I. Kim, J. Y. Ahn, and S. N. Park, Antioxidative potential of extract/fractions of Suaeda asparagoides and Salicornia herbacea extracts (I), J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 33(3), 145 (2007) 

  20. J. Y. Kim, H. J. Yang, K. H. Le, S. M. Jeon, Y. J. Ahn, B. R Won, and S. N. Park, Antioxidative and antiaging effect of Jeju native plant extracts (II), J. Soc. Cosmet. Scientists Korea, 32(3), 181 (2006) 

  21. M. Miyazawa and N. Tamura, Inhibitory compound of tyrosinase activity from the sprout of Polygonum hydropiper L. (Benitade), Biol. Pharm. Bull, 30(3), 595 (2007) 

  22. Z. F. Peng, D. Strack, A. Baumert, R. Subramaniam, N. K. Goh, T. F. Chia, S. N. Tan, and L. S. Chia, Antioxidant flavonoids from leaves of Polygonum hydropiper L., Phytochemistry, 62, 219 (2003) 

  23. H. Haraguchi, I. Ohmi, S. Sakai, and A. Fukuda, Effect of Polygonum hydropiper sulfated flavonoids on lens aldose reductase and related enzymes, J. Nat. Prod., 59, 443 (1996) 

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