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착상과 임신 초기 면역반응에서 T 림프구의 역할
Roles of T Lymphocytes in Early Human Reproduction 원문보기

대한생식의학회지= The Korean journal of reproductive medicine, v.36 no.3, 2009년, pp.151 - 162  

양광문 (관동대학교 의과대학)

초록
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착상, 태반생성 및 임신 유지 등 생식과정에서 semi-allograft인 배아 및 태아가 생존하기 위해서는 모체 면역계면역관용이 요구된다. 면역관용은 분자 생물학적으로 염증반응과 항염증반응의 적절한 균형을 유지하는 인식되고 있으며, 생식과정에서 모체 면역계의 T 림프구, 자연살해세포, 수지상 세포, 대식세포 등 여러 면역세포의 유기적인 협조하에 이루어진다. 면역세포들은 특정 항원 및 사이토카인의 자극에 따라 정반대의 성질을 가진 사이토카인을 생산, 분비할 수 있는 특성을 가지고 있어 각각을 염증성 또는 항염증성 면역세포로 명확히 구분할 수 없으며 면역세포의 이러한 특성에 의해 생산 및 분비되는 사이토카인의 종류에 따라 Th0 형 (Th 0 cell, Tc 0 cell, NK 0 cell), Th1형 (Th 1 cell, Tc 1 cell, NK 1 cell), Th2 형 (Th 2 cell, Tc 2 cell, NK 2 cell), Th3 형 세포 (Th 3 cell, Tc 3 cell, NK 3 cell)로 분류하기도 한다. 즉, 착상 시기에 혈관신생 및 영양막의 자궁 내 침투를 위한 적절한 염증성 사이토카인(inflammatory cytokine)의 분비 및 임신의 지속을 위한 항염증성 (anti-inflammatory) 사이토카인의 분비 등 생식과정에서 수반되는 염증성과 항염증성 면역반응의 적절한 균형을 유지하는 기전은 특정 면역세포만의 작용으로 결론 지을 수 없으며 면역 세포간 network의 산물이라 할 수 있다 (Figure 5). 면역세포 중 최근 그 존재가 알려진 면역조절 T림프구 (T reg cell)는 여러 연구자들에 의해 면역관용에 관여함이 일관되게 보고되고 있어 자궁 내모체-태아간 접촉면에서 면역세포들 간의 network에 중추적인 역할을 할 것으로 인식되고 있으나 작용기전으로 제시되고 있는 가설들을 뒷받침 할 만한 객관적인 연구가 필요한 실정이다. 본 고찰에서는 착상과 임신 유지 등 생식과정에 수반되는 면역세포 및 그 세포들의 작용기전중 T 림프구의 역할에 중점을 두고 그 분류 및 기능에 대해 정리해 보았다. 결론적으로 착상과 임신의 유지 등 생식과정에서 T 림프구는 면역관용과 거부에 적극적으로 작용하며 착상부전, 습관성유산 등 면역학적 병인이 유사한 생식장애 (poor reproductive performance)들의 발병에 중요한 역할을 하는 것은 의심할 여지가 없다. 하지만 향후 T 림프구 및 그와 연관된 면역세포들의 작용에 대한 확실한 분자학적 규명이 요구된다.

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 고찰에서는 착상과 임신 유지 등 생식과정에 수반되는 면역세포 및 그 세포들의 작용기전 중 T 림프구의 역할에 중점을 두고 그 분류 및 기능에 대해 정리해 보았다. 결론적으로 착상과 임신의 유지 등 생식과정에서 T 림프구는 면역관용과 거부에 적극적으로 작용하며 착상부전, 습관성 유산 등 면역학적 병인이 유사한 생식장애 (poor reproductive performance)들의 발병에 중요한 역할을 하는 것은 의심할 여지가 없다.
  • 본 고찰에서는 착상과 임신 유지에 관련된 면역세포 가운데 T 림프구의 종류 및 각각의 기능에 대해 정리해 보고자 한다.

가설 설정

  • Figure 4. Hypothetical model of NKT cells in immune-mediated pregnancy loss. NKT cells are activated directly by bacterial wall glycolipids, or they can be activated indirectly via LPS or CpG-stimulated APCs.
  • 하지만 태아에 대한 모체의 면역반응은 "면역관용, immune tolerance"이라는 자궁 특유의 면역학적 특징을 보인다. 1950년대 Medawar 등은 태아가 모체 내에서 면역계의 공격을 이기고 안전하게 성장할 수 있는 기전으로 i) 모체 면역세포가 태아항원에 대한 무반응 (anergy) 또는 면역관용을 획득한다는 가설, ii) 태아와 모체간 해부학적 장벽에 의해 모체 면역세포가 태아세포에 접근할 수 없다는 가설, 그리고 iii) 태아세포 스스로 동종 항체의 발현을 억제한다는 가설 등을 제기하였다.1 하지만 Medawar의 가설은 초창기 생식면역학의 기본 개념을 제시하였지만 태아항원과 모체 면역계 사이에 이루어지는 면역관용 현상을 설명하는데는 부족함이 많았다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
T 림프구가 세포 표면에 공통적으로 발현하는 항원은? T 림프구는 CD 3 (cluster differentiation 3)항원을 세포표면에 공통적으로 발현하며 기타 다른 세포 표면 표식자의 발현 여부에 따라 크게 CD3+ /4+ 림프구와 CD3+ /8+ 림프구로 분류되는데, CD4+ 림프 구는 helper T (Th) 세포로 칭하며 CD8+ 림프구는 cytotoxic T (Tc) 세포로 칭한다. Lachapelle 등은 임신 전 습관성 유산 환자의 자궁내막조직의 T 림프구의 아형을 관찰한 결과 CD4+ /CD8+ 림프구의 비율 이 정상 여성에 비해 유의하게 증가됨을 볼 수 있 었으며, 이는 CD4+ 세포의 증가 혹은 CD8+ 세포의 감소가 습관성 유산의 원인이 될 수 있다고 보고 하였다.
decidual associated lymphoid tissue에서 일어나는 염증반응이 미치는 영향은? 2 이들 면역세포들은 자궁 내의 태아와 모체가 접촉하는 "태아-모체 접촉면, feto-maternal interface" 에 decidual associated lymphoid tissue (DALT)라는 임신 특이의 조직학적 구조물 내에 존재하며 태아에 대한 모체의 면역관용을 획득하는데 중요한 역할을 하고, 착상 및 임신 유지에 수반되는 혈관생성 및 영양막 (trophoblast)의 발달에 필수적인 무 균성 염증반응 (sterile inflammation)을 유발하는 것으로 알려졌다. 3 DALT에서 모체의 면역세포들과 여러 전달물질간의 복잡하고 다양한 연결망의 형성에 의한 적절한 염증반응은 배아의 착상 및 임신의 유지에 필수적인 혈관생성 및 영양막의 발달에 중요한 역할을 하는 반면 적절하지 않거나 과도하게 오랜기간 지속되는 염증반응은 급성 혹은 만성 이식거부 반응과 유사한 작용을 일으켜 태반의 성장, 태아의 성장 및 발달에 심각한 장애를 초래하며 착상부전 (repeated implantation failure), 습관성 유산 (recurrent spontaneous abortion), 임신 자간증 (preeclampsia) 등 그 병인이 유사한 생식능력장애 (defect of reproductive performance)의 원인이 될 수 있다. 4인간 탈락막 또는 자궁내막에 존재하는 면역세포는 극소수의 백혈구만 존재하며 주로 세 가지 아형의 면역세포 즉, T 림프구, 대식세포, 자궁 내 자연살해세포 등이 주를 이루고 B 림프구가 거의 없는 점 등에서 말초혈액의 면역세포의 구성과 많은 차이가 있다.
면역관용에 관여하는 면역 세포는 어떤 것이 있는가? 착상, 태반생성 및 임신 유지 등 생식과정에서 semi-allograft인 배아 및 태아가 생존하기 위해서는 모체 면역계의 면역관용이 요구된다. 면역관용은 분자 생물학적으로 염증반응과 항염증반응의 적절한 균형을 유지하는 인식되고 있으며, 생식과정에서 모체 면역계의 T 림프구, 자연살해세포, 수지상 세포, 대식세포 등 여러 면역세포의 유기적인 협조하에 이루어진다. 면역세포들은 특정 항원 및 사이토카인의 자극에 따라 정반대의 성질을 가진 사이토카인을 생산, 분비할 수 있는 특성을 가지고 있어 각각을 염증성 또는 항염증성 면역세포로 명확히 구분할 수 없으며 면역세포의 이러한 특성에 의해 생산 및 분비되는 사이토카인의 종류에 따라 Th0 형 (Th 0 cell, Tc 0 cell, NK 0 cell), Th1형 (Th 1 cell, Tc 1 cell, NK 1 cell), Th2 형 (Th 2 cell, Tc 2 cell, NK 2 cell), Th3 형 세포 (Th 3 cell, Tc 3 cell, NK 3 cell)로 분류하기도 한다.
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참고문헌 (66)

  1. Billingham RE, Brent L, Medawar PB. Actively acquired tolerance of foreign cells. Nature 1953; 172: 603-6 

  2. Aluvihare VR, Kallikourdis M, Betz AG. Regulatory T cells mediate maternal tolerance to the fetus. Nat Immunol 2004; 5: 266-71 

  3. Piccini MP. T-cell cytokines in pregnancy. Am J Reprod Immunol 2002; 47: 289-94 

  4. Wilczynski JR. Immunological analogy between allograft rejection, recurrent abortion and pre-eclampsia - the same basic mechanism? Hum Immunol 2006; 67: 492-511 

  5. Johnson PM, Christmas SE, Vince GS. Immunological aspects of implantation and implantation failure. Hum Reprod 1999; 14 Suppl 2: 26-36 

  6. Bulmer JN, Morrison L, Longfellow M, Ritson A, Pace D. Granulated lymphocytes in human endometrium: histochemical and immunohistochemical studies. Hum Reprod 1991; 6: 791-8 

  7. Vassilidou N, Bulmer JN. Quantitative analysis of T lymphocyte subsets in pregnant and nonpregnant human endometrium. Biol Reprod 1996; 55: 1017-22 

  8. Athanassakis I, Bleackley RC, Paetkau V, Guilbert L, Barr PJ, Wegmann TG. The immunostimulatory effect of T cells and T cell lymphokines on murine fetally derived placental cells. J Immunol 1987; 138: 37-44 

  9. Chaouat G, Menu E, Athanassakis I, Wegmann TG. Maternal T cells regulate placental size and fetal survival. Reg Immunol 1988; 1: 143-8 

  10. Hunt JS, Petroff MG, McIntire RH, Ober C. HLA-G and immune tolerance in pregnancy. FASEB J 2005; 19: 681-93 

  11. Guleria I, Khosroshahi A, Ansari MJ, et al. A critical role for the programmed death ligand 1 in fetomaternal tolerance. J Exp Med 2005; 202: 231-7 

  12. Xu C, Mao D, Holers VM, Palanca B, Cheng AM, Molina H. A critical role for murine complement regulator crry in fetomaternal tolerance. Science 2000; 287: 498-501 

  13. Mellor AL, Sivakumar J, Chandler P, et al. Prevention of T cell-driven complement activation and inflammation by tryptophan catabolism during pregnancy. Nat Immunol 2001; 2: 64-8 

  14. Dong M, Ding G, Zhou J, Wang H, Zhao Y, Huang H. The effect of trophoblasts on T lymphocytes: possible regulatory effector molecules--a proteomic analysis. Cell Physiol Biochem 2008; 21: 463-72 

  15. Chaplin DD. 1. Overview of the immune response. J Allergy Clin Immunol 2003; 111: S442-59 

  16. Clark DA, Merali FS, Hoskin DW, et al. Decidua-associated suppressor cells in abortion-prone DBA/2-mated CBA/J mice that release bioactive transforming growth factor beta2-related immunosuppressive molecules express a bone marrow-derived natural suppressor cell marker and gamma delta T-cell receptor. Biol Reprod 1997; 56: 1351-60 

  17. Arck PC, Ferrick DA, Steele-Norwood D, et al. Murine T cell determination of pregnancy outcome. Cell Immunol 1999; 196: 71-9 

  18. Barakonyi A, Polgar B, Szekeres-Bartho J. The role of gamma/delta T-cell receptor-positive cells in pregnancy: part II. Am J Reprod Immunol 1999; 42: 83-7 

  19. Szekeres-Bartho J, Barakonyi A, Miko E, Polgar B, Palkovics T. The role of gamma/delta T cells in the feto-maternal relationship. Semin Immunol 2001; 13: 229-33 

  20. Lachapelle MH, Miron P, Hemmings R, Roy DC. Endometrial T, B, and NK cells in patients with recurrent spontaneous abortion. Altered profile and pregnancy outcome. J Immunol 1996; 156: 4027-34 

  21. Quack KC, Vassiliadou N, Pudney J, Anderson DJ, Hill JA. Leukocyte activation in the decidua of chromosomally normal and abnormal fetuses from women with recurrent abortion. Hum Reprod 2001; 16: 949-55 

  22. Wu L, Wu Y, Gathings B, et al. Smad4 as a transcription corepressor for estrogen receptor alpha. J Biol Chem 2003; 278: 15192-200 

  23. Straub RH. The complex role of estrogens in inflammation. Endocr Rev 2007; 28: 521-74 

  24. Groux H. An overview of regulatory T cells. Microbes Infect 2001; 3: 883-9 

  25. Bustos D, Moret A, Tambutti M, et al. Autoantibodies in Argentine women with recurrent pregnancy loss. Am J Reprod Immunol 2006; 55: 201-7 

  26. Piccirillo CA, Shevach EM. Naturally-occurring CD4+CD25+ immunoregulatory T cells: central players in the arena of peripheral tolerance. Semin Immunol 2004; 16: 81-8 

  27. Bluestone JA, Abbas AK. Natural versus adaptive regulatory T cells. Nat Rev Immunol 2003; 3: 253-7 

  28. Fallarino F, Grohmann U, Hwang KW, et al. Modulation of tryptophan catabolism by regulatory T cells. Nat Immunol 2003; 4: 1206-12 

  29. Mellor AL, Munn DH. IDO expression by dendritic cells: tolerance and tryptophan catabolism. Nat Rev Immunol 2004; 4: 762-74 

  30. Arruvito L, Sanz M, Banham AH, Fainboim L. Expansion of CD4+CD25+ and FOXP3+ regulatory T cells during the follicular phase of the menstrual cycle: implications for human reproduction. J Immunol 2007; 178: 2572-8 

  31. Fraccaroli L, Alfieri J, Larocca L, et al. A potential tolerogenic immune mechanism in a trophoblast cell line through the activation of chemokine-induced T cell death and regulatory T cell modulation. Hum Reprod 2009; 24(1):166-75 

  32. Saito S, Sasaki Y, Sakai M. CD4(+)CD25high regulatory T cells in human pregnancy. J Reprod Immunol 2005; 65: 111-20 

  33. Yamamoto T, Takahashi Y, Kase N, Mori H. Role of decidual natural killer (NK) cells in patients with missed abortion: differences between cases with normal and abnormal chromosome. Clin Exp Immunol 1999; 116: 449-52 

  34. Boyson JE, Rybalov B, Koopman LA, et al. CD1d and invariant NKT cells at the human maternal-fetal interface. Proc Natl Acad Sci U S A 2002; 99: 13741-6 

  35. Boyson JE, Aktan I, Barkhuff DA, Chant A. NKT cells at the maternal-fetal interface. Immunol Invest 2008; 37: 565-82 

  36. Kawano T, Cui J, Koezuka Y, et al. CD1d-restricted and TCRmediated activation of valpha14 NKT cells by glycosylceramides. Science 1997; 278: 1626-9 

  37. Ito K, Karasawa M, Kawano T, et al. Involvement of decidual Valpha14 NKT cells in abortion. Proc Natl Acad Sci U S A 2000; 97: 740-4 

  38. Boyson JE, Nagarkatti N, Nizam L, Exley MA, Strominger JL. Gestation stage-dependent mechanisms of invariant natural killer T cell-mediated pregnancy loss. Proc Natl Acad Sci U S A 2006; 103: 4580-5 

  39. Shi Y, Ling B, Zhou Y, et al. Interferon-gamma expression in natural killer cells and natural killer T cells is suppressed in early pregnancy. Cell Mol Immunol 2007; 4: 389-94 

  40. Yahata T, Kurabayashi T, Honda A, Takakuwa K, Tanaka K, Abo T. Decrease in the proportion of granulated CD56+ T-cells in patients with a history of recurrent abortion. J Reprod Immunol 1998; 38: 63-73 

  41. Eberl G, MacDonald HR. Selective induction of NK cell proliferation and cytotoxicity by activated NKT cells. Eur J Immunol 2000; 30: 985-92 

  42. Nagarajan NA, Kronenberg M. Invariant NKT cells amplify the innate immune response to lipopolysaccharide. J Immunol 2007; 178: 2706-13 

  43. Piccinni MP, Giudizi MG, Biagiotti R, et al. Progesterone favors the development of human T helper cells producing Th2-type cytokines and promotes both IL-4 production and membrane CD30 expression in established Th1 cell clones. J Immunol 1995; 155: 128-33 

  44. Piccinni MP, Bani D, Beloni L, et al. Relaxin favors the development of activated human T cells into Th1-like effectors. Eur J Immunol 1999; 29: 2241-7 

  45. Mosmann TR, Coffman RL. TH1 and TH2 cells: different patterns of lymphokine secretion lead to different functional properties. Annu Rev Immunol 1989; 7: 145-73 

  46. Raghupathy R. Pregnancy: success and failure within the Th1/Th2/Th3 paradigm. Semin Immunol 2001; 13: 219-27 

  47. Fukaura H, Kent SC, Pietrusewicz MJ, Khoury SJ, Weiner HL, Hafler DA. Induction of circulating myelin basic protein and proteolipid protein-specific transforming growth factorbeta1-secreting Th3 T cells by oral administration of myelin in multiple sclerosis patients. J Clin Invest 1996; 98: 70-7 

  48. Groux H, O'Garra A, Bigler M, et al. A CD4+ T-cell subset inhibits antigen-specific T-cell responses and prevents colitis. Nature 1997; 389: 737-42 

  49. Jonuleit H, Schmitt E. The regulatory T cell family: distinct subsets and their interrelations. J Immunol 2003; 171: 6323-7 

  50. Weiner HL. Induction and mechanism of action of transforming growth factor-beta-secreting Th3 regulatory cells. Immunol Rev 2001; 182: 207-14 

  51. White CA, Johansson M, Roberts CT, Ramsay AJ, Robertson SA. Effect of interleukin-10 null mutation on maternal immune response and reproductive outcome in mice. Biol Reprod 2004; 70: 123-31 

  52. Ingman WV, Robker RL, Woittiez K, Robertson SA. Null mutation in transforming growth factor beta1 disrupts ovarian function and causes oocyte incompetence and early embryo arrest. Endocrinology 2006; 147: 835-45 

  53. Wegmann TG, Lin H, Guilbert L, Mosmann TR. Bidirectional cytokine interactions in the maternal-fetal relationship: is successful pregnancy a TH2 phenomenon? Immunol Today 1993; 14: 353-6 

  54. Bennett WA, Lagoo-Deenadayalan S, Whitorth NS, et al. Firsttrimester human chorionic villi express both immunoregulatory and inflammatory cytokines: a role for interleukin-10 in regulating the cytokine network of pregnancy. Am J Reprod Immunol 1999; 41: 70-8 

  55. Sacks GP, Clover LM, Bainbridge DR, Redman CW, Sargent IL. Flow cytometric measurement of intracellular Th1 and Th2 cytokine production by human villous and extravillous cytotrophoblast. Placenta 2001; 22: 550-9 

  56. Ntrivalas E, Kwak-Kim J, Beaman K, Mantouvalos H, Gilman-Sachs A. An in vitro coculture model to study cytokine profiles of natural killer cells during maternal immune celltrophoblast interactions. J Soc Gynecol Investig 2006; 13: 196-202 

  57. Chaouat G, Menu E, Clark DA, Dy M, Minkowski M, Wegmann TG. Control of fetal survival in CBA $\times$ DBA/2 mice by lymphokine therapy. J Reprod Fertil 1990; 89: 447-58 

  58. Clark DA. Controversies in reproductive immunology. Crit Rev Immunol 1991; 11: 215-47 

  59. Aschkenazi S, Straszewski S, Verwer KMA, Foellmer H, Rutherford T, Mor G. Differential Regulation and Function of the Fas/Fas Ligand System in Human Trophoblast Cells. Biol Reprod 2002; 66: 1853-1861 

  60. Raghupathy R, Makhseed M, Azizieh F, Hassan N, Al-Azemi M, Al-Shamali E. Maternal Th1- and Th2-type reactivity to placental antigens in normal human pregnancy and unexplained recurrent spontaneous abortions. Cell Immunol 1999; 196: 122-30 

  61. Rezaei A, Dabbagh A. T-helper (1) cytokines increase during early pregnancy in women with a history of recurrent spontaneous abortion. Med Sci Monit 2002; 8: CR607-10 

  62. Kwak-Kim JY, Chung-Bang HS, Ng SC, et al. Increased T helper 1 cytokine responses by circulating T cells are present in women with recurrent pregnancy losses and in infertile women with multiple implantation failures after IVF. Hum Reprod 2003; 18: 767-73 

  63. Makhseed M, Raghupathy R, Azizieh F, Farhat R, Hassan N, Bandar A. Circulating cytokines and CD30 in normal human pregnancy and recurrent spontaneous abortions. Hum Reprod 2000; 15: 2011-7 

  64. Arslan E, Colakoglu M, Celik C, et al. Serum TNF-alpha, IL-6, lupus anticoagulant and anticardiolipin antibody in women with and without a past history of recurrent miscarriage. Arch Gynecol Obstet 2004; 270: 227-9 

  65. Guerin LR, Prins JR, Robertson SA. Regulatory T-cells and immune tolerance in pregnancy: a new target for infertility treatment? Hum Reprod Update 2009; 15: 517-35 

  66. Kwak-Kim J, Yang KM, Gilman-Sachs A. Recurrent pregnancy loss: A disease of inflammation and coagulation. J Obstet Gynaecol Res 2009; 35: 609-22 

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