$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

피부 섬유아세포에서 비타민 C, Silicon, 철분 처리가 콜라겐 합성 및 분해 관련 효소의 발현에 미치는 효과 비교
Effect of Vitamin C, Silicon and Iron on Collagen Synthesis and Break-Down Enzyme Expression in the Human Dermal Fibroblast Cell (HS27) 원문보기

韓國營養學會誌 = The Korean journal of nutrition., v.42 no.6, 2009년, pp.505 - 515  

김정은 (경희대학교 동서의학대학원 의학영양학과) ,  이진아 (경희대학교 동서의학대학원 의학영양학과) ,  김현애 (경희대학교 동서의학대학원 의학영양학과) ,  김정민 (경희대학교 동서의학대학원 의학영양학과) ,  조윤희 (경희대학교 동서의학대학원 의학영양학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구에서는 비타민 C, silicon, 철분을 농도별로 피부섬유아 세포에 처리 후 콜라겐 합성 효소인 PH, LH의 mRNA와 protein 발현 및 분해 효소인 MMP-1와 저해제인 TIMP-1의 mRNA, protein 발현의 변화를 대조군과 비교 분석하였으며 그 결과를 요약하면 다음과 같다. 1) 피부 섬유아세포에서 비타민 C의 처리는 콜라겐 합성 효소인 PH의 mRNA 발현을 대조군에 비해 현저하게 증가시켰고 이와 병행하여, PH의 protein 발현도 대조군에 비해 유의적으로 증가하였다. 그러나 다른 콜라겐 합성 효소인 LH의 mRNA 발현에는 영향을 미치지 않았으나 protein의 발현을 증가시켰다. 또한, 콜라겐 분해 효소인 MMP-1의 mRNA 발현은 대조군에 비해 유의적으로 증가시켰으나 protein 발현에서는 대조군과 차이가 없었다. 2) 피부 섬유아세포에서 silicon의 혈중 내 농도 처리는 LH의 mRNA 발현의 현저한 증가와 더불어 protein 발현에도 긍정적인 영향을 미치는 것으로 나타났다. 콜라겐 분해 효소인 MMP-1과 저해제인 TIMP-1의 단백질 발현을 대조군에 비해 증가시켰다. 3) 피부 섬유아세포에서 철분의 혈중 내 농도 처리는 콜라겐 합성 및 분해 관련 효소의 mRNA 및 protein 발현에 영향을 미치지 않았다. 결론적으로, 피부섬유아세포에서 비타민 C 및 silicon의 처리는 콜라겐의 posttranslational modification 관련 효소의 mRNA의 발현 및 단백질의 발현을 증가시켜 궁극적으로 콜라겐 합성에 긍정적인 영향을 나타내었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Collagen is the major matrix protein in dermis and consists of proline and lysine, which are hydroxylated by prolyl hydroxylase (PH) and lysyl hydroxylase (LH) with cofactors such as vitamin C, oxygen, iron (Fe$^{2+}$), ketoglutarate and silicon. The collagen degradation is regulated by m...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 비타민 C, silicon, 철분의 각 농도별 처리가 콜라겐을 분해하는 대표적인 효소로 알려져 있는 MMP-1과 MMP1의 저해제인 TIMP-1의 mRNA 발현에 미치는 영향에 대해 알아보았다. HS27 섬유아세포에서 비타민 C, silicon, 철분을 혈청 및 피부 내 농도 범위로 3일 또는 5일 처리 후 RT-PCR로 살펴본 MMP-1의 mRNA 발현을 house keeping gene 인 GAPDH 및 대조군의 발현을 기준으로 수치화 한 결과, 3일간의 50 μM 비타민 C를 처리한 군에서 대조군에 비해 MMP-1의 mRNA 발현이 200% 증가한 반면 (p = 0.
  • 7) 그러나, 콜라겐 합성 과정에서 조효소로 작용하는 silicon, 철분 등의 콜라겐 합성 및 콜라겐의 분해 효소에 미치는 영향에 관한 연구는 미비한 실정이다. 이에 본 연구에서는 비타민 C, silicon, 철분을 HS27 피부 섬유아세포에 농도별로 처리하여 콜라겐의 합성에 관여하는 효소인 proline hydroxylase (PH), lysyl hydroxylase (LH)와 분해에 관여하는 효소인 MMP-1과 저해제인 TIMP-1의 mRNA와 단백질 발현에 미치는 영향을 알아보고자 하였다.

가설 설정

  • Human dermal fibroblast cultures were treated with ascorbic acid (0, 5, 10, 50, 100 μM), silicon (0, 5, 10, 25, 50 μM) and Fe (0, 5, 10, 20, 30, 50 μM) for 3 days. A: The expressions of MMP-1 protein was analysis by western blotting. B: The expressions of TIMP-1 was analyzed by western blotting.
  • A: The expressions of MMP-1 protein was analysis by western blotting. B: The expressions of TIMP-1 was analyzed by western blotting. Results shown are means ± SEM.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
tissue inhibitor of metalloproteinase 효소가 분비되는 세포는? 10) 기질 단백질 분해효소는 여러 효소의 집합으로 구조와 기능적 특성에 따라 여러 개의 집단으로 나누어지는데,11) 이 중 피부의 대표적인 콜라겐인 콜라겐 Type 1은 MMP-1에 의해 분해되고 MMP-1의 작용은 세포의 항상성을 유지하기 위해 분비되는 2-marcroglobulin이나 TIMP-1과 같은 저해제에 의해 활성이 조절된다. 이러한 MMPs 및 TIMPs 등의 효소들은 섬유아세포를 포함한 대다수의 많은 세포들에서 분비된다.12,13)
표피의 역할은? 피부는 표피, 진피, 피하조직으로 구성되어 이 중 표피는 외부 자극으로부터 신체를 보호하고, 체온 조절, 보습 유지 작용을 한다. 진피는 섬유성분, 기질성분으로 구성되어 있으며 섬유성분으로 존재하는 콜라겐은 진피층의 90%를 차지하는 주요 단백질로써 피부 연결 조직을 유지하여, 피부에 강도와 장력을 준다.
피부의 구성 요소는? 피부는 표피, 진피, 피하조직으로 구성되어 이 중 표피는 외부 자극으로부터 신체를 보호하고, 체온 조절, 보습 유지 작용을 한다. 진피는 섬유성분, 기질성분으로 구성되어 있으며 섬유성분으로 존재하는 콜라겐은 진피층의 90%를 차지하는 주요 단백질로써 피부 연결 조직을 유지하여, 피부에 강도와 장력을 준다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (32)

  1. Kim NM, Koo BS, Lee SK, Hwang EI, So SH, Do JH. Effect of Korean red ginseng on collagen biosynthesis and MMP-Ⅰactivity in human dermal fibroablast. J Ginseng Res 2007; 31(2): 86-92 

  2. Matsumura Y, Ananthaswamy HN. Toxic effects of ultraviolet radiation on the skin. Toxicol Appl Pharmacol 2004; 195: 298-308 

  3. Fisher GJ, Kang S, Varani J, Bata-Csorgo Z, Wan Y, Datta S, Bpprjees JJ. Mechanisms of photoaging and chronological skin againg. Arch Dermatol 2002; 138: 1462-1470 

  4. Elsner P, Wilhelm D, Maibach HI. Mechanical properties of human forearm and vulvar skin. Br J Dermatol 1990; 122: 607-614 

  5. Prockop DJ, Berg RA, Kivirikko KI, Uitto J. Intracellular steps in the biosynthesis of collagen, Biochemistry of Collagen. In: Ramachandran GN, Reddi AH, editor. Plenum Press, New York; 1976. p.163-273 

  6. Jemec G, Jemec B, Jemec BIE. The effect of superficial hydration the mechanical properties of human skin in vivo. Plast Reconstr Surg 1990; 85: 100-103 

  7. Pinnell SR, Murad S, Darr D. Induction of collagen synthesis by ascorbic acid. A possible Mechanism. Arch Dermatol 1987; 123: 1684-1686 

  8. Passoja K, Rautavuoma K, Ala-Kokko L, Kosonen T, Kivirikko KI. Cloning and characterization of a third human lysyl hydroxylase isoform. Proc Natl Acad Sci USA 1998; 95(18): 10482-10486 

  9. Seaborn CD, Nielsen FH. Silicon deprivation decreases collagen formation in wounds and bone, and ornithine transaminase enzyme activity in liver. Biol Trace Elem 2002; 89(3): 251-261 

  10. Wlaschek M, Tantcheva-Poor I, Naderi L, Ma W, Schneider LA, Razi-Wolf Z, Schuller J, Scharffetter-Kochanek K. Solar UV irradiation and dermal photoaging. J Photochem Photobio 2001;63(1-3): 41-51 

  11. Fisher GJ, Kang SW, Voorhees JJ. Retinoic acid inhibits induction of c-Jun protein by ultraviolet radiation that occur subsequent to activation of mitogen-activated protein kinase pathways in human skin in vivo. J Clin Invest 1998; 101 (6): 1432-1440 

  12. Enjoji M, Kotoh K, Iwamoto H, Nakamuta M, Nawata H. Selfregulation of TypeⅠcollagen degradation by collagen-induced production of matrix metalloproteinase-1 on cholangiocarcinoma and hepatocellular carcinoma cells. In vitro Cell Dev Biol Anim 2000; 36: 71-73 

  13. Fisher GJ, Voorhees JJ. Molecular mechanism of photoaging in human skin in vivo and their prevention by all-trans retinoic acid. Photochem Photobiol 1999; 69(2): 154-157 

  14. Tajima S, Pinnel SR. Ascorbic acid preferentially enhances type I and III collagen gene transcription in human skin fibroblasts. J Dermatol Sci 1996; 11: 250-253 

  15. Carlisle EM. Silicon: a requirement in bone formation independent of vitamin D. Calcif Tissue Int 1981; 33: 27-34 

  16. Che P, Xu J, Shi H, Ma Y. Quantitative determination of serum iron in human blood by high-performance capillary electrophoresis. J Chromatogr B Biomed Sci Appl 1995; 669: 45-51 

  17. Fahling M, Perlewitz A, Doller A, Thiele BJ. Thiele. Regulation of collagen prolyl 4-hydroxylase and matrix metalloproteinases in fibrosarcoma cells by hypoxia. Comp Biochem Physiol Part C 2004; 139: 119-126 

  18. Uzawa K, Grzesik WJ, Nishiura T, Kuznetsov SA, Robey PG, Brenner DA, Yamauchi M. Differential expression of human lysyl hydroxylase genes, lysine hydroxylation, and cross-linking of type I collagen during osteoblastic differentiation in vitro. J Bone Miner Res 1999; 14(8): 1272-1280 

  19. Sim GS, Kim JH, Lee DH, Park SM. Pyo HB, Zhang YH, Lee BC. Effects of the Spatholobi Caulis extract on Antioxidation and inhibition of Matrix Metalloproteinase in Human Skin Fibroblasts. Korean J Biochnol Bioeng 2005; 20(1): 40-45 

  20. Murad S, Sivarajah A, Pinnell SR. Prolyl and lysyl hydroxylase activities of human skin fibroblast: effect of donor age and ascorbate. J Invest Dermatol 1980; 75: 404-407 

  21. Ronni C. Micronutrient requirements in older women. Am J Clin Nutr 2005; 81: 1240-1245 

  22. Murad S, Tajima S, Johnson GR, Sivarajah S, Pinnell SR. Collagen synthesis in cultured human skin fibroblasts: Effect of ascorbic acid and its analogs. J Invest Dermatol 1983; 81: 158-162 

  23. Boyera N, Galey I, Bernard BA. Effect of vitamin C and its derivatives on collagen synthesis and cross-linking by normal human fibroblasts. Int J Cosmet Sci 1998; 20: 151-158 

  24. Duarte TL, Almeida GM, Jones GD. Investigation of the role of extracellular H2O2 and transition metal ions in the genotoxic action of ascorbic acid in cell culture models. Toxicol Lett 2007; 170(1): 57-65 

  25. Campo GM, Avenoso A, Campo S, D'Ascola A, Ferlazzo AM, Sama D, Calatroni A. Purified human chondroitin-4-sulfate reduced MMP/TIMP imbalance induced by iron plus ascorbate in human fibroblast cultures. Cell Biol Int 2006; 30(1): 21-30 

  26. Barel A, Calomme M, Timchenko A, De Paepe K, Demeester N, Rogiers V, Clarys P, Vanden Berghe D. Effect of oral intake of choline-stabilized orthosilicic acid on skin, nails and hair in women with photodamaged skin. Arch Dermatol Res 2005; 297 (4): 147-53 

  27. Ma XB, Sun SX, Yang F. Effect of human silicotic alveolar macrophages on the expression of matrix metalloproteinase-1 and tissue inhibitor of metalloproteinases-1 in human lung fibroblasts. Zhonghua Lao Dong Wei Sheng Zhi Ye Bing Za Zhi 2004; 22 (5): 358-360 

  28. Tuderman L, Myllo R, Kivirikko KI. Mechanism of the prolyl hydroxylase reaction. I. Role of co-substrates. Eur J Biochem 1977; 80: 341-348 

  29. Switzer BR, Summer GK. Collagen synthesis in human skin fibroblasts: effects of ascorbate, -ketoglutarate and ferrous ion on proline hydroxylation. J Nutr 1972; 102(6): 721-728 

  30. Oono T, Shirafuji Y, H WK, Akiyama H, Iwatsuki K. Effects of human neutrophil peptide-1 on the expression of interstitial collagenase and type I collagen in human dermal fibroblasts. Arch Dermatol Res 2002; 294: 185-189 

  31. Kao WW, Flaks JG, Prockop DJ. Primary and secondary effects of ascorbate on procollagen synthesis and protein synthesis by primary cultures of tendon fibroblasts. Arch Biochem Biophys 1976; 173: 638-648 

  32. Uzawa K, Yeowell HN, Yamamoto K, Mochida Y, Tanzawa H, Yamauchi M. Lysine hydroxylation of collagen in a fibroblast cell culture system. Biochem Biophys Res Commun 2003; 305: 484-487 

저자의 다른 논문 :

LOADING...

관련 콘텐츠

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로