오이/흑종호박 접목에서 오이녹반모자이크바이러스의 비기주 대목인 흑종호박으로 이동 Cucumber green mottle mosaic virus Moved into the Non-Host Figleaf Gourd Passing through Cucumber in Grafting System원문보기
오이녹반모자이크바이러스(Cucumber green mottle mosaic virus, CGMMV)는 오이 대목용 흑종호박(figleaf gourd)에 즙액 전염이 되지 않았으나, 2008년 충남 천안지역에서 CGMMV의 발병율이 100%를 나타내는 오이재배 하우스에서 채집한 이 대목은 RT-PCR에서 모두 바이러스가 검출되었다. 흑종호박에 오이를 접목한후 오이 잎에 CGMMV를 접종하여 RT-PCR을 실시한 결과, 흑종호박에서 목표 합성 DNA가 검출되었다. 검출된 DNA의 농도는 흑종호박 보다 오이에서 훨씬 높게 나타났다. 그러나 바이러스 입자는 대목 부위에서 검경이 되지 않았을 뿐만 아니라, Nicotiana benthamicana에도 감염이 되지 않았다. 대목에서 CGMMV 입자를 확인하기 위하여 흑종호박과 오이를 접목하여 상호 성장하게 한 후 오이 잎에 바이러스를 접종한 다음, 각각 식물체로부터 바이러스를 정제하였다. 오이 추출물에서는 전형적인 바이러스 순화 흡광도 곡선이 나타났지만, 흑종호박 추출물에서는 흡광도 곡선이 나타나지 않았고 단지 극소수의 바이러스 입자가 검경되었다. 이러한 결과에서 CGMMV의 입자는 대목으로 단순하게 이동이 확인되었지만, 흑종호박은 이 바이러스의 기주식물이 아님을 입증하였다.
오이녹반모자이크바이러스(Cucumber green mottle mosaic virus, CGMMV)는 오이 대목용 흑종호박(figleaf gourd)에 즙액 전염이 되지 않았으나, 2008년 충남 천안지역에서 CGMMV의 발병율이 100%를 나타내는 오이재배 하우스에서 채집한 이 대목은 RT-PCR에서 모두 바이러스가 검출되었다. 흑종호박에 오이를 접목한후 오이 잎에 CGMMV를 접종하여 RT-PCR을 실시한 결과, 흑종호박에서 목표 합성 DNA가 검출되었다. 검출된 DNA의 농도는 흑종호박 보다 오이에서 훨씬 높게 나타났다. 그러나 바이러스 입자는 대목 부위에서 검경이 되지 않았을 뿐만 아니라, Nicotiana benthamicana에도 감염이 되지 않았다. 대목에서 CGMMV 입자를 확인하기 위하여 흑종호박과 오이를 접목하여 상호 성장하게 한 후 오이 잎에 바이러스를 접종한 다음, 각각 식물체로부터 바이러스를 정제하였다. 오이 추출물에서는 전형적인 바이러스 순화 흡광도 곡선이 나타났지만, 흑종호박 추출물에서는 흡광도 곡선이 나타나지 않았고 단지 극소수의 바이러스 입자가 검경되었다. 이러한 결과에서 CGMMV의 입자는 대목으로 단순하게 이동이 확인되었지만, 흑종호박은 이 바이러스의 기주식물이 아님을 입증하였다.
Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV) was not infected in figleaf gourd by sap inoculation. However CGMMV was detected by RT-PCR from the figleaf gourd collected from a field growing cucumber grafted onto figleaf gourd in Cheonan, Chungcheongnam Province in 2008. Which field showed 100% infecti...
Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV) was not infected in figleaf gourd by sap inoculation. However CGMMV was detected by RT-PCR from the figleaf gourd collected from a field growing cucumber grafted onto figleaf gourd in Cheonan, Chungcheongnam Province in 2008. Which field showed 100% infection rate of the virus disease. In the experiment grafted with cucumber onto figleaf gourd, transportation of CGMMV through cucumber to figleaf gourd was confirmed by RT-PCR when the virus was mechanically inoculated on the leaves of the cucumber. The amplified DNA concentration of the virus on electrophoresis gel was much higher in the cucumber than in the figleaf gourd. However, the virus particles from the figleaf gourds were not observed under electron microscopy, also sap of the figleaf gourds was not transmittable to Nicotiana benthamiana. To identify the existence of CGMMV particle, the virus was purified from figleaf gourd and cucumber growing together in the graft system. CGMMV solution extracted from the cucumber represented a typical absorption spectrum of the virus but that from the figleaf gourd did not. Only a few CGMMV particles were observed in the purified preparation from the figleaf gourd. These results confirmed that CGMMV only passed through figleaf gourd in the grafting system. This study indicated that figleaf gourd is not a host of CGMMY.
Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV) was not infected in figleaf gourd by sap inoculation. However CGMMV was detected by RT-PCR from the figleaf gourd collected from a field growing cucumber grafted onto figleaf gourd in Cheonan, Chungcheongnam Province in 2008. Which field showed 100% infection rate of the virus disease. In the experiment grafted with cucumber onto figleaf gourd, transportation of CGMMV through cucumber to figleaf gourd was confirmed by RT-PCR when the virus was mechanically inoculated on the leaves of the cucumber. The amplified DNA concentration of the virus on electrophoresis gel was much higher in the cucumber than in the figleaf gourd. However, the virus particles from the figleaf gourds were not observed under electron microscopy, also sap of the figleaf gourds was not transmittable to Nicotiana benthamiana. To identify the existence of CGMMV particle, the virus was purified from figleaf gourd and cucumber growing together in the graft system. CGMMV solution extracted from the cucumber represented a typical absorption spectrum of the virus but that from the figleaf gourd did not. Only a few CGMMV particles were observed in the purified preparation from the figleaf gourd. These results confirmed that CGMMV only passed through figleaf gourd in the grafting system. This study indicated that figleaf gourd is not a host of CGMMY.
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문제 정의
그러나 대목에 접목한 오이에서 이 바이러스의 토양전염에 대하여 확실한 근거가 없다. 따라서 본 연구에서는 오이 대목으로 널리 사용되고 있는 흑종호박(Cucwbita ficifolia Bouche. 영명 : figleaf gourd)에 대한 CGMMV의 정확한 감염여부와 오이를 흑 종 호박에 접목시 CGMMV가 대목으로 이행성을 구명하여 토양전염의 가능성을 확인하고자 하였다.
제안 방법
2008년 3월 하순 충남 천안시 오이 시설재배지역에서 흑종호박에 접목한 오이 품종, 다맛다다기에서 CGMMV의 이병율은 5%였으나, 수확말기인 7월 초순에는 100% 발생한 농가에서 대목인 흑 종 호박 뿌리와 접수인 오이 엽을 채집하여 바이러스를 검정하였다. 접수인 오이 잎에서는 전자현미경에서 Tobamovirus 입자가 검경되었고 즙액접종에서 Nicotiana benthamiana에 전신감염이 확인되었다.
하였으나, RT-PCR로 바이러스가 상당히 고농도로 검출된 흑종호박의 뿌리, 제 1본엽 및 제7본엽에서는 전자현미경으로 바이러스 입자는 검경되지 않았다. CGMMV 의 입자를 재확인하기 위하여 상호 호접한 흑종호박과오이의 엽을 각각 수확하여 바이러스를 정제하였다. 그 결과 오이에서는 다량의 바이러스 입자가 확인되었고 spectrophotometer로 흡광도 측정에서도 전형적인 바이러스 흡광도 패턴을 보였으나, 흑종호박에서는 몇몇 바이러스의 입자가 관찰되었고 대조구인 증류수와 동일한 흡광도 패턴을 나타냈다(자료생략).
CGMMV가 100% 감염된 오이재배 농가에서 채집한 흑종호박 뿌리에서는 RT- PCR에서 모두 양성반응을 나타났지만, 인위적으로 접종한 흑종호박에서는 감염이 되지 않은 상반된 결과를 해석하기 위하여 흑종호박에 오이를 접목하여 CGMMV의이행성 여부를 검토하였다. 우선 CGMMV에 즙액접종시감염이 되지 않는 흑종호박에 오이를 접목하고 2주 후 오이 본엽에 이 바이러스를 접종하였다.
CGMMV가 접수인 오이에서 대목인 흑 종 호박으로 이행성을 검토하기 위하여 오이/흑 종 호박을 접목 14일 후에 CGMMV를 오이의 잎에 접종하였다. 접종 65일 후에 RT-PCR로 바이러스를 검정하였다.
CGMMV의 감염여부를 조사하기 위하여 오이 대목으로 사용되고 있는 흑종호박과 접수인 오이의 자엽에 0.01 M phosphate buffer(pH7.0)를 이용하여 바이러스를 접종하였다. 이들 식물체에서 바이러스 감염 여부는 Dip 방법 또는 미세절편으로 제작한 시료를 투과전자현미경(Carl Zeiss 906, 독일)에서 검경하여 바이러스 입자의 존재 유무에 따라 감염여부를 판정하였다.
또한 정밀진단을 위하여 RT-PCR로 수행하였다. Primer 제작은 Genebank Database를 활용하여 CGMMV의 외피단백질 유전자에서 상동성을 나타내는 부위를 대상으로 예상 합성 DNA 산물이 420bp 크기의 프라이머를 작성하였다. CGMMVPrimerl 은 S'-IGGrCGrGGIAAGCGGCATTCIA- 3', CGMMV-Pihner2는 5'-TACGGCGTIAAGCGACTCAGC -3'이 었다.
CGMMVPrimerl 은 S'-IGGrCGrGGIAAGCGGCATTCIA- 3', CGMMV-Pihner2는 5'-TACGGCGTIAAGCGACTCAGC -3'이 었다. RT-PCR 조건은 48℃ 45 min—94。。2 min—35 cycles(94℃ 30 sece-60℃ 30 sec—72℃ 1 min 30 sec)f 72℃ 10 min으로 실시한 후, 1.2% agarlose gel 전기영동으로 목적 DNA 합성유무를 확인하였다. 시료의 전체 RNA 추출은 액체질소를 이용하여 마쇄한 후, RNeasy Mini Kit(Qiagen, 미국)를 사용하였다.
그러나 바이러스 입자는 대목 부위에서 검경이 되지 않았을 뿐만 아니라, Nicotiana benthamiana에도 감염이 되지 않았다. 대목에서 CGMMV 입자를 확인하기 위하여 흑종호박과 오이를 접목하여 상호 성장하게 한 후 오이 잎에 바이러스를 접종한 다음, 각각 식물체로부터 바이 러스를 정제하였다. 오이 추출물에서는 전형적인 바이러스 순화 흡광도 곡선이 나타났지만, 흑종호박 추출물에서는 흡광도 곡선이 나타나지 않았고 단지 극소수의 바이러스 입자가 검경되었다.
대목용 흑종호박의 뿌리로부터 CGMMV의 감염 여부를 조사하기 위하여 이 종자를 습실 처리하여 발아근의 선단 부위를 면도칼로 0.5 mm 크기로 단근 처리한 후, CGMMV의 조즙액이 담긴 1.5m/ 튜브에 3일간 침지하여 상토에 정식하였다. 대조구로 CGMMV에 감수성 수박 대목용 참박을 상기와 동일 처리를 하였다.
5m/ 튜브에 3일간 침지하여 상토에 정식하였다. 대조구로 CGMMV에 감수성 수박 대목용 참박을 상기와 동일 처리를 하였다. 처리한 식물체는 정식 40일 후에 RT-PCR 로 바이러스 감염여부를 조사하였다.
2). 또한 오이를 흑종호박에 접목 10일 후에 상기와 동일한 방법으로 바이러스를 접종한 다음, 두 식물체를 상호 자라게 하면서 30일 후하엽에서 상엽 단계별 바이러스를 RT-PCR, 전자현미경 검경 및 지표식물로 생물검정을 하였다(Fig. 3). 오이와 흑종호박의 본엽과 덩굴손에서 RT-PCR에서 CGMMV의 420bp의 합성 DNA가 모두 검출되었다(Fig 3).
이 바이러스의 생물적 활성 여부는 지표식물인 Nicotiana benthamiana6^ 접종하여 모자이크 증상의 발현 유무를 확인하였다. 또한 정밀진단을 위하여 RT-PCR로 수행하였다. Primer 제작은 Genebank Database를 활용하여 CGMMV의 외피단백질 유전자에서 상동성을 나타내는 부위를 대상으로 예상 합성 DNA 산물이 420bp 크기의 프라이머를 작성하였다.
접종 65일 후에 RT-PCR로 바이러스를 검정하였다. 또한 흑 종 호박에 오이를 접목한 후, 이들 두 식물체가 함께 자라게 하였다. 이어서 10일 후 오이 잎에 바이러스를 접종하여, 30일 후에 각각의 식물체 부위별 바이러스 이행성을 RT-PCR, 전자현미경 검경 및 지표식물 검정을 실시하였다.
이어서 10일 후 오이 잎에 바이러스를 접종하여, 30일 후에 각각의 식물체 부위별 바이러스 이행성을 RT-PCR, 전자현미경 검경 및 지표식물 검정을 실시하였다. 상호 호접한 오이와 흑종호박의 식물체를 각각 수확하여 Tobacco mosaic vims의 정제 방법(이, 2000)으로 바이러스를 순화하여 자외선 흡광도 측정과 전자현미경으로 CGMMV의 입자를 검경하였다.
CGMMV가 100% 감염된 오이재배 농가에서 채집한 흑종호박 뿌리에서는 RT- PCR에서 모두 양성반응을 나타났지만, 인위적으로 접종한 흑종호박에서는 감염이 되지 않은 상반된 결과를 해석하기 위하여 흑종호박에 오이를 접목하여 CGMMV의이행성 여부를 검토하였다. 우선 CGMMV에 즙액접종시감염이 되지 않는 흑종호박에 오이를 접목하고 2주 후 오이 본엽에 이 바이러스를 접종하였다. 접종 65일 후에 RT-PCR로 바이러스 검정을 한 결과, 대목 흑종호박 줄기와 뿌리에서 모두 CGMMV가 검출되었다(Fig.
이들 식물체에서 바이러스 감염 여부는 Dip 방법 또는 미세절편으로 제작한 시료를 투과전자현미경(Carl Zeiss 906, 독일)에서 검경하여 바이러스 입자의 존재 유무에 따라 감염여부를 판정하였다. 이 바이러스의 생물적 활성 여부는 지표식물인 Nicotiana benthamiana6^ 접종하여 모자이크 증상의 발현 유무를 확인하였다. 또한 정밀진단을 위하여 RT-PCR로 수행하였다.
또한 흑 종 호박에 오이를 접목한 후, 이들 두 식물체가 함께 자라게 하였다. 이어서 10일 후 오이 잎에 바이러스를 접종하여, 30일 후에 각각의 식물체 부위별 바이러스 이행성을 RT-PCR, 전자현미경 검경 및 지표식물 검정을 실시하였다. 상호 호접한 오이와 흑종호박의 식물체를 각각 수확하여 Tobacco mosaic vims의 정제 방법(이, 2000)으로 바이러스를 순화하여 자외선 흡광도 측정과 전자현미경으로 CGMMV의 입자를 검경하였다.
5 m/ 튜브에 발근부위가 절단된 발아 종자를 3일 침지하였다. 이어서 발아 종자 각각 상토에 정식하여 병징 발현 여부를 관찰하였다. 그 결과 참박은 30 시료 중 2 시료에서 바이러스에 감염되었고, 흑종호박은 29 시료에서 모두 감염이 인정되지 않았다.
CGMMV가 접수인 오이에서 대목인 흑 종 호박으로 이행성을 검토하기 위하여 오이/흑 종 호박을 접목 14일 후에 CGMMV를 오이의 잎에 접종하였다. 접종 65일 후에 RT-PCR로 바이러스를 검정하였다. 또한 흑 종 호박에 오이를 접목한 후, 이들 두 식물체가 함께 자라게 하였다.
대조구로 CGMMV에 감수성 수박 대목용 참박을 상기와 동일 처리를 하였다. 처리한 식물체는 정식 40일 후에 RT-PCR 로 바이러스 감염여부를 조사하였다.
오이/흑종호박 접목묘에 대한 토양전염의 가능성을 확인하고자 다음과 같이 실시하였다. 흑종호박과 CGMMV의 기주식물인 수박 대목 용 참박 종자를 습실 처리하여 발근 부위의 선단을 면도칼로 절단한 후, 이 바이 러스의 조즙액 이 담긴 1.5 m/ 튜브에 발근부위가 절단된 발아 종자를 3일 침지하였다. 이어서 발아 종자 각각 상토에 정식하여 병징 발현 여부를 관찰하였다.
대상 데이터
농촌진흥청 원예 특작과학원에서 보존하고 있는 CGMMV type II(Choi, 2001)를 오이 또는 참박에 접종하여 모자이크 증상이 나타난 식물체를 온실에 보존하면서 전염원으로 사용하였다.
성능/효과
흑종호박에 오이를 접목한 후 오이 잎에 CGMMV 를 접종하여 RT-PCR을 실시한 결과, 흑종호박에서 목표합성 DNA가 검출되었다. 검출된 DNA의 농도는 흑 종 호박 보다 오이에서 훨씬 높게 나타났다. 그러나 바이러스 입자는 대목 부위에서 검경이 되지 않았을 뿐만 아니라, Nicotiana benthamiana에도 감염이 되지 않았다.
CGMMV 의 입자를 재확인하기 위하여 상호 호접한 흑종호박과오이의 엽을 각각 수확하여 바이러스를 정제하였다. 그 결과 오이에서는 다량의 바이러스 입자가 확인되었고 spectrophotometer로 흡광도 측정에서도 전형적인 바이러스 흡광도 패턴을 보였으나, 흑종호박에서는 몇몇 바이러스의 입자가 관찰되었고 대조구인 증류수와 동일한 흡광도 패턴을 나타냈다(자료생략). 또한 접목한 두 식물체의 부위별로 지표식물인 N.
이어서 발아 종자 각각 상토에 정식하여 병징 발현 여부를 관찰하였다. 그 결과 참박은 30 시료 중 2 시료에서 바이러스에 감염되었고, 흑종호박은 29 시료에서 모두 감염이 인정되지 않았다. 이것은 흑종호박이 사용된 오이 접목묘에서는 토양으로 CGMMV가 전염이 되지 않는다는 것을 간접적으로 의미하고 있다.
대목용 흑종호박에 CGMMV의 인위적 감염여부를 조사하기 위하여 CGMMV를 오이 품종 , 다맛다다기, 13주와, 은성백다다기, 15주의 자엽에 즙액 접종 한 결과, 100% 감염이 되었으나, 흑종호박, 25주에서는 모두 증상이 나타나지 않았으며 (Table 1), RT-PCR 에서도 바이러스가 검출되지 않았다. 따라서 오이 2품종은 CGMMV에 이병성이었으나, 오이 대목으로 널리 사용되고 있는 흑종호박은 즙액접종으로 이 바이러스에 감염이 되지 않았다.
대목용 흑종호박에 CGMMV의 인위적 감염여부를 조사하기 위하여 CGMMV를 오이 품종 , 다맛다다기, 13주와, 은성백다다기, 15주의 자엽에 즙액 접종 한 결과, 100% 감염이 되었으나, 흑종호박, 25주에서는 모두 증상이 나타나지 않았으며 (Table 1), RT-PCR 에서도 바이러스가 검출되지 않았다. 따라서 오이 2품종은 CGMMV에 이병성이었으나, 오이 대목으로 널리 사용되고 있는 흑종호박은 즙액접종으로 이 바이러스에 감염이 되지 않았다.
따라서 오이 접목 재배에서 대목으로 널리 사용하고 있는 흑종호박의 잎에 즙액 접종을 하였으나 감염이 되지 않았고, 접목 전염에서 바이러스 입자는 이 대목의 유관을 통하여 단순한 기계적 이동, 발아근 단근처리 접종에서 무감염 등의 결과로부터 오이 대목용 흑종호박은 CGMMV에 면역성 표현을 확인할 수 있었다. CGMMV 로 오염된 토양에 오이를 재배할 경우에는 흑종호박을 대목으로 사용하고, 접수인 오이의 실생근이 출현하지 않도록 대목의 높이를 토양으로부터 충분히 노출시키면 이 바이러스의 토양전염을 예방할 수 있을 것으로 생각된다.
그 결과 오이에서는 다량의 바이러스 입자가 확인되었고 spectrophotometer로 흡광도 측정에서도 전형적인 바이러스 흡광도 패턴을 보였으나, 흑종호박에서는 몇몇 바이러스의 입자가 관찰되었고 대조구인 증류수와 동일한 흡광도 패턴을 나타냈다(자료생략). 또한 접목한 두 식물체의 부위별로 지표식물인 N. benfha/niana에 즙액 접종한 결과, 오이의 모든 부위의 접종원은 지표식물에 모자이크 증상이 발현되었으나 흑종호박의 접종원에서는 감염이 되지 않음을 재확인하였다.
대목에서 CGMMV 입자를 확인하기 위하여 흑종호박과 오이를 접목하여 상호 성장하게 한 후 오이 잎에 바이러스를 접종한 다음, 각각 식물체로부터 바이 러스를 정제하였다. 오이 추출물에서는 전형적인 바이러스 순화 흡광도 곡선이 나타났지만, 흑종호박 추출물에서는 흡광도 곡선이 나타나지 않았고 단지 극소수의 바이러스 입자가 검경되었다. 이러한 결과에서 CGMMV의 입자는 대목으로 단순하게 이동이 확인되었지만, 흑종호박은 이 바이러스의 기주식물이 아님을 입증하였다.
3). 오이와 흑종호박의 본엽과 덩굴손에서 RT-PCR에서 CGMMV의 420bp의 합성 DNA가 모두 검출되었다(Fig 3). 이 DNA는 흑종호박의 뿌리와 제 1 본엽을 제외하고는 오이에서 상대적으로 높은 농도로 검출되었고 도관 부위의 조직에 바이러스가 집적한 상태로 검경되었다.
하였다. 이러한 결과를 미루어 볼 때, 오이/흑종호박 접목시스템에서 오이에서 증식한 CGMMV가 흑종호박의 체관 및 도관을 통하여 극히 적은 농도의 바이러스 입자가 기계적 이동을 할 뿐 흑종호박 세포내에서는 바이러스가 증식을 하지 못흐}는 것으로 추정되었다. 금후 접목 시스템에서 흑종호박으로 바이러스의 정확한 이동 및 세포 내에서 증식 방해 기작에 대해서는 더 많은 연구가 이루어져야 될 것이다.
오이 추출물에서는 전형적인 바이러스 순화 흡광도 곡선이 나타났지만, 흑종호박 추출물에서는 흡광도 곡선이 나타나지 않았고 단지 극소수의 바이러스 입자가 검경되었다. 이러한 결과에서 CGMMV의 입자는 대목으로 단순하게 이동이 확인되었지만, 흑종호박은 이 바이러스의 기주식물이 아님을 입증하였다.
2008년 3월 하순 충남 천안시 오이 시설재배지역에서 흑종호박에 접목한 오이 품종, 다맛다다기에서 CGMMV의 이병율은 5%였으나, 수확말기인 7월 초순에는 100% 발생한 농가에서 대목인 흑 종 호박 뿌리와 접수인 오이 엽을 채집하여 바이러스를 검정하였다. 접수인 오이 잎에서는 전자현미경에서 Tobamovirus 입자가 검경되었고 즙액접종에서 Nicotiana benthamiana에 전신감염이 확인되었다. 그러나 대목 뿌리에서는 바이러스 입자가 관찰되지 않았고, 이 검정 식물에도 감염이 되지 않았다.
우선 CGMMV에 즙액접종시감염이 되지 않는 흑종호박에 오이를 접목하고 2주 후 오이 본엽에 이 바이러스를 접종하였다. 접종 65일 후에 RT-PCR로 바이러스 검정을 한 결과, 대목 흑종호박 줄기와 뿌리에서 모두 CGMMV가 검출되었다(Fig. 2). 또한 오이를 흑종호박에 접목 10일 후에 상기와 동일한 방법으로 바이러스를 접종한 다음, 두 식물체를 상호 자라게 하면서 30일 후하엽에서 상엽 단계별 바이러스를 RT-PCR, 전자현미경 검경 및 지표식물로 생물검정을 하였다(Fig.
흑종호박에 오이를 접목한 후 오이 잎에 CGMMV 를 접종하여 RT-PCR을 실시한 결과, 흑종호박에서 목표합성 DNA가 검출되었다. 검출된 DNA의 농도는 흑 종 호박 보다 오이에서 훨씬 높게 나타났다.
후속연구
CGMMV 로 오염된 토양에 오이를 재배할 경우에는 흑종호박을 대목으로 사용하고, 접수인 오이의 실생근이 출현하지 않도록 대목의 높이를 토양으로부터 충분히 노출시키면 이 바이러스의 토양전염을 예방할 수 있을 것으로 생각된다.
이러한 결과를 미루어 볼 때, 오이/흑종호박 접목시스템에서 오이에서 증식한 CGMMV가 흑종호박의 체관 및 도관을 통하여 극히 적은 농도의 바이러스 입자가 기계적 이동을 할 뿐 흑종호박 세포내에서는 바이러스가 증식을 하지 못흐}는 것으로 추정되었다. 금후 접목 시스템에서 흑종호박으로 바이러스의 정확한 이동 및 세포 내에서 증식 방해 기작에 대해서는 더 많은 연구가 이루어져야 될 것이다.
참고문헌 (8)
Ainworth, G C. 1935. Mosaic disease of cucumber. Ann. Appl. Biol. 22: 55-67
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Choi, G S. 2001. Occurrence of two tobamovirus diseases in cucurbits and control measures in Korea. Plant Pathol J. 17: 243-248
Lee, K. w., Lee, B. C., Park, H. C. and Lee, Y S. 1990. Occurrence of cucumber green mottle mosaic virus disease of watermelon in Korea. Korean J. Plant Pathol. 6: 250-255
Moreno, J. M., Thompson, J. R. and Garcia-Arenal, F. 2004. Analysis of the systemic colonization of cucumber plants by Cucumber green mottle mosaic virus. J Gen. Viral. 85: 749-759
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