방사선과 염화수은의 일시 및 반복 복합 처리된 효모세포의 산화적 스트레스 적응과 형태 변화 Effect of Ionizing Radiation and Mercury Chloride (II) on Cell Morphology in Yeast Cells Frequently and Temporarily Treated with Both Stressors원문보기
Metal ions are essential to life. However, some metals such as mercury are harmful, even when present at trace amounts. Toxicity of mercury arises mainly from its oxidizing properties. Ionizing radiation (IR) is an active tool for destruction of cancer cells and diagnosis of diseases, etc. IR induce...
Metal ions are essential to life. However, some metals such as mercury are harmful, even when present at trace amounts. Toxicity of mercury arises mainly from its oxidizing properties. Ionizing radiation (IR) is an active tool for destruction of cancer cells and diagnosis of diseases, etc. IR induces DNA double strand breaks in the nucleus, In addition, it causes lipid peroxidation, ceramide generation, and protein oxidation in the membrane, cytoplasm and nucleus. Yeasts have been a commonly used material in biological research. In yeasts, the physiological response to changing environmental conditions is controlled by the cell types. Growth rate, mutation and environmental conditions affect cell size and shape distributions. In this work, the effect of IR and mercury chloride (II) on the morphology of yeast cells were investigated. Saccharomyces cerevisiae cells were treated with IR, mercury chloride (II) and IR combined with mercury chloride (II). Non-treated cells were used as a control group. Morphological changes were observed by a scanning electron microscope (SEM). The half-lethal condition from the previous experimental results was used to the IR combined with mercury. Yeast cells were exposed to 400 and 800 Gy at dose rates of 400Gy $hr^{-1}$ or 800 Gy $hr^{-1}$, respectively. Yeast cells were treated with 0.05 to 0.15 mM mercury chloride (II). Oxidative stress can damage cellular membranes through a lipidic peroxidation. This effect was detected in this work, after treatment of IR and mercury chloride (II). The cell morphology was modified more at high doses of IR and high concentrations of mercury chloride(II). IR and mercury chloride (II) were of the oxidative stress. Cell morphology was modified differently according to the way of oxidative stress treatment. Moreover, morphological changes in the cell membrane were more observable in the frequently stress treated cells than the temporarily stress treated cells.
Metal ions are essential to life. However, some metals such as mercury are harmful, even when present at trace amounts. Toxicity of mercury arises mainly from its oxidizing properties. Ionizing radiation (IR) is an active tool for destruction of cancer cells and diagnosis of diseases, etc. IR induces DNA double strand breaks in the nucleus, In addition, it causes lipid peroxidation, ceramide generation, and protein oxidation in the membrane, cytoplasm and nucleus. Yeasts have been a commonly used material in biological research. In yeasts, the physiological response to changing environmental conditions is controlled by the cell types. Growth rate, mutation and environmental conditions affect cell size and shape distributions. In this work, the effect of IR and mercury chloride (II) on the morphology of yeast cells were investigated. Saccharomyces cerevisiae cells were treated with IR, mercury chloride (II) and IR combined with mercury chloride (II). Non-treated cells were used as a control group. Morphological changes were observed by a scanning electron microscope (SEM). The half-lethal condition from the previous experimental results was used to the IR combined with mercury. Yeast cells were exposed to 400 and 800 Gy at dose rates of 400Gy $hr^{-1}$ or 800 Gy $hr^{-1}$, respectively. Yeast cells were treated with 0.05 to 0.15 mM mercury chloride (II). Oxidative stress can damage cellular membranes through a lipidic peroxidation. This effect was detected in this work, after treatment of IR and mercury chloride (II). The cell morphology was modified more at high doses of IR and high concentrations of mercury chloride(II). IR and mercury chloride (II) were of the oxidative stress. Cell morphology was modified differently according to the way of oxidative stress treatment. Moreover, morphological changes in the cell membrane were more observable in the frequently stress treated cells than the temporarily stress treated cells.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
또한, 실생활에서 산화적 스트레스에 노출되어 있는 경우 스트레스에 대한 반응은 일시적인 스트레스를 받은 경우와는 다를 것으로 판단된다. 따라서 단독 혹은 복합 처리된 스트레스에 적응한 세포에서의 스트레스에 대한 반응을 형태적인 변화로 확인해 보았다. 이를 통해 산화적 스트레스의 지속적 처리가 생체에 미치는 영향을 알아보며, 나아가 분자유전학적 분석의 토대를 마련할 계기를 마련하고자 한다.
반면, 산화적 스트레스는 생활공간에서 손쉽게 접하며 그에 따라 복합적인 영향을 받게 됨에도 불구하고 복합적인 산화적 스트레스에 대한 연구가 상대적으로 적게 이루어지고 있다. 본 연구에서는 이러한 복합적 스트레스에 의한 세포의 형태적 영향을 살펴보았다. 또한, 실생활에서 산화적 스트레스에 노출되어 있는 경우 스트레스에 대한 반응은 일시적인 스트레스를 받은 경우와는 다를 것으로 판단된다.
따라서 단독 혹은 복합 처리된 스트레스에 적응한 세포에서의 스트레스에 대한 반응을 형태적인 변화로 확인해 보았다. 이를 통해 산화적 스트레스의 지속적 처리가 생체에 미치는 영향을 알아보며, 나아가 분자유전학적 분석의 토대를 마련할 계기를 마련하고자 한다.
지금까지의 연구들이 세포에 강도가 낮은 스트레스 처리한 다음 높은 강도의 스트레스를 처리하였을 때의 내성 반응을 나타내는지를 알아보고자 한 것이었다면 본 연구는 지속적인 스트레스에 적응한 개체를 이용한 실험이라는 점에서 차별성을 갖는다. 지속적인 단독 및 복합 처리된 스트레스에 따른 세포의 생존율과 일시적 처리에 따른 세포의 생존율을 비교하여 스트레스에 적응한 세포로 분류하였다.
제안 방법
CFU (Colony Forming Unit) 방법으로 산화적 스트레스 처리한 효모를 포함한 YPD 배지를 적정 비율로 희석하여, 일정량을 새로운 YPD 배지에 도말한 후 30℃에서 60시간 동안 배양한 효모의 집락을 계수하였다. 총 3회 이상 반복실험의 평균값을 이용하여 생존율을 결정하였다.
Glutaraldehyde 2% 용액과 phosphate buffer를 이용하여 고정시키고, 50%, 70%, 80%, 90%, 100% 에탄올 탈수과정을 거친 후 상온에서 건조시킨다. 건조된 시료를 Cressington Sputter coater (Cressington Scientific Instrumets Ltd. England. UK)을 이용하여 40 mA, 60 sec 조건으로 금박으로 코팅한 다음 방사선과학연구소가 보유하고 있는 주사전자현미경(Scanning electron microscope, JEOL JSM-6390)을 이용하여 효모의 형태를 관찰하였다.
4~8). 먼저, 일시적 스트레스를 처리한 세포의 형태를 살펴보았다. 수은을 처리하였을 때 세포막의 형태적 변화를 살펴볼 수 있었으며 수은 농도가 높아질수록 세포막 형태의 변화는 컸다(Fig.
지속적인 단독 및 복합 처리된 스트레스에 따른 세포의 생존율과 일시적 처리에 따른 세포의 생존율을 비교하여 스트레스에 적응한 세포로 분류하였다. 산화적 스트레스의 일시적 처리군의 생존율과 지속적인 처리군의 생존율을 방사선의 조사선량과 염화수은 처리농도에 따라 비교하였다(Figs. 2, 3). 염화수은의 농도가 0.
2, 3). 염화수은의 농도가 0.2 mM 이상의 범위에서 3회 이상 복합스트레스를 처리하였을 때 세포가 더 이상 생존하지 않아 저농도 범위인 0.05 mM, 0.1 mM, 0.15 mM에서 염화수은과 이온화 방사선을 단독, 복합적으로 10회 처리한 세포를 이용하여 생존율을 측정하였다. 염화수은 처리에 의한 세포의 생존율을 볼 때, 일시적으로 스트레스를 처리한 군에서의 세포의 생존율과 10회 스트레스 반복처리 군에서의 세포 생존율은 0.
이온화 방사선과 염화수은의 단독, 복합 처리를 일정시간 간격을 두고 반복적으로 시행하였다. 본 연구에서는 10회 이상 산화적 스트레스를 반복적으로 처리한 세포를 이용하였다.
일상생활에 있어 손쉽게 노출될 수 있고 복합적으로 작용하여 영향을 미치는 산화적 스트레스를 반복적으로 처리함으로써 산화적 스트레스에 적응한 세포군을 이용하여 스트레스 적응세포를 만들었다. 산화적 스트레스의 종류에 따라 세포가 받는 형태적 변화는 달랐으며, 단독스트레스를 처리하였을 때 나타나는 세포의 형태적 변화는 복합적인 스트레스 처리 시 단독 스트레스 처리 시 나타나는 형태적 변화가 혼합되어 나타났다.
지금까지의 연구들이 세포에 강도가 낮은 스트레스 처리한 다음 높은 강도의 스트레스를 처리하였을 때의 내성 반응을 나타내는지를 알아보고자 한 것이었다면 본 연구는 지속적인 스트레스에 적응한 개체를 이용한 실험이라는 점에서 차별성을 갖는다. 지속적인 단독 및 복합 처리된 스트레스에 따른 세포의 생존율과 일시적 처리에 따른 세포의 생존율을 비교하여 스트레스에 적응한 세포로 분류하였다. 산화적 스트레스의 일시적 처리군의 생존율과 지속적인 처리군의 생존율을 방사선의 조사선량과 염화수은 처리농도에 따라 비교하였다(Figs.
CFU (Colony Forming Unit) 방법으로 산화적 스트레스 처리한 효모를 포함한 YPD 배지를 적정 비율로 희석하여, 일정량을 새로운 YPD 배지에 도말한 후 30℃에서 60시간 동안 배양한 효모의 집락을 계수하였다. 총 3회 이상 반복실험의 평균값을 이용하여 생존율을 결정하였다.
2004). 특히, 산화적 스트레스에 의해 세포막의 손상이 두드러질 것으로 예상되는 가운데 스트레스 적응 세포군으로 선별된 세포를 수집하여 세포의 형태적인 변화를 살펴보았다(Figs. 4~8). 먼저, 일시적 스트레스를 처리한 세포의 형태를 살펴보았다.
이온화 방사선은 한국원자력연구원 방사선과학연구소 내에 있는 조사시설, 60Co γ-irradiator (MDS Nordion, Canada)을 이용하였다. 효모에 주로 적용하는 방사선량인 700 Gy, 800 Gy 범위를 기준으로 각기 다른 선량율에 따라 최종흡수선량의 범위를 100, 400, 800, 1,200 Gy로 나누어 조사하였다. 염화수은과 이온화 방사선을 복합 처리한 경우, 염화수은을 포함한 액체배지에서 배양한 효모 배양액에 방사선을 조사한 후 동일한 농도의 염화수은을 포함한 고체배지에 희석, 도말한 후 60시간 배양한다.
대상 데이터
이온화 방사선과 염화수은의 단독, 복합 처리를 일정시간 간격을 두고 반복적으로 시행하였다. 본 연구에서는 10회 이상 산화적 스트레스를 반복적으로 처리한 세포를 이용하였다.
이온화 방사선은 한국원자력연구원 방사선과학연구소 내에 있는 조사시설, 60Co γ-irradiator (MDS Nordion, Canada)을 이용하였다.
성능/효과
1). 두 가지 스트레스가 복합 처리된 세포의 생존율이 단독 처리된 세포에서보다 현저히 감소하였으며 이는 복합 처리된 스트레스의 상승효과가 나타남을 의미한다.
2006)에 따르면 DNA 손상 평가 시 단독 노출군과 복합 노출군 비교결과 복합 노출군에서의 DNA 손상이 단독 노출군에 비해 컸다. 또한 방사선 처리 후 수은을 처리한 경우 DNA 손상도가 높아 복합처리에 의한 손상의 상승효과가 확인되었다. 사람 림프구를 대상으로 이온화 방사선과 수은을 동시 노출시켰을 때 DNA 손상에 관한 연구가 보고(Panek et al.
산화적 스트레스의 종류에 따라 세포가 받는 형태적 변화는 달랐으며, 단독스트레스를 처리하였을 때 나타나는 세포의 형태적 변화는 복합적인 스트레스 처리 시 단독 스트레스 처리 시 나타나는 형태적 변화가 혼합되어 나타났다. 또한, 일시적인 스트레스를 처리한 세포군보다 반복적인 스트레스 처리로 인하여 적응한 세포군에서 산화적 스트레스에 의한 세포의 형태적 손상이 현저히 컸으며, 스트레스의 강도에 비례하는 경향을 보였다. 세포는 스트레스에 적응하며 생존하기 위해 노력하는데 이러한 세포 항상성을 유지하기 위한 DNA 수복과정은 DNA 구조적인 변화 혹은 수복에 관여하는 단백질들의 변성에 기인하여 저해가 이뤄지며, 스트레스 처리에 따라 세포막에 있는 단백질, 지질, DNA의 손상에 의해 세포의 형태적 변화가 야기된 것으로 사료된다.
방사선만을 조사한 실험군에서는 방사선의 최종 흡수선량이 높을수록 세포의 생존율이 감소하였으며 조사선량률이 높을수록 세포의 생존율이 감소하였다. 즉, 동일한 흡수선량을 짧은 시간에 받을수록 세포가 받는 영향력이 큼을 알 수 있었다.
일상생활에 있어 손쉽게 노출될 수 있고 복합적으로 작용하여 영향을 미치는 산화적 스트레스를 반복적으로 처리함으로써 산화적 스트레스에 적응한 세포군을 이용하여 스트레스 적응세포를 만들었다. 산화적 스트레스의 종류에 따라 세포가 받는 형태적 변화는 달랐으며, 단독스트레스를 처리하였을 때 나타나는 세포의 형태적 변화는 복합적인 스트레스 처리 시 단독 스트레스 처리 시 나타나는 형태적 변화가 혼합되어 나타났다. 또한, 일시적인 스트레스를 처리한 세포군보다 반복적인 스트레스 처리로 인하여 적응한 세포군에서 산화적 스트레스에 의한 세포의 형태적 손상이 현저히 컸으며, 스트레스의 강도에 비례하는 경향을 보였다.
세포 생존율의 변화를 살펴볼 때 두 가지 산화적 스트레스를 복합 처리한 세포 생존율의 감소양상이 단독처리한 세포 생존율과 비교하여 더 큰 것을 알 수 있었다. 이는 산화적 스트레스의 복합작용에 의해 세포가 받는 스트레스 효과의 상승작용을 의미한다.
15 mM에서 염화수은과 이온화 방사선을 단독, 복합적으로 10회 처리한 세포를 이용하여 생존율을 측정하였다. 염화수은 처리에 의한 세포의 생존율을 볼 때, 일시적으로 스트레스를 처리한 군에서의 세포의 생존율과 10회 스트레스 반복처리 군에서의 세포 생존율은 0.05 mM에서 일시적 스트레스 처리군의 생존율이 높았으나 0.15 mM 농도 범위에서는 반복적 스트레스 처리 군에서의 생존율이 높게 나타났다(Figs. 2, 3). 이온화 방사선을 단독 처리한 군에서의 세포 생존율을 비교해 보면 400 Gy hr-1, 800 Gy hr-1 등 선량률에 상관없이 대체적으로 일시적 스트레스 처리군과 반복적 스트레스 처리군의 세포 생존율이 비슷한 경향을 보였다.
2001)되었으며, 수은 이외의 물질 중 살충제와 이온화 방사선을 복합적으로 노출시켜 이에 따른 상승작용을 규명한 연구결과도 보고된 바 있다(김 2001). 염화수은과 방사선을 복합 처리한 세포의 생존율은 수은 농도가 높고, 최종 흡수 선량이 높을수록 감소하였다(Fig. 1). 두 가지 스트레스가 복합 처리된 세포의 생존율이 단독 처리된 세포에서보다 현저히 감소하였으며 이는 복합 처리된 스트레스의 상승효과가 나타남을 의미한다.
Lane I). 염화수은과 이온화 방사선을 복합적으로 처리하였을 때 세포는 염화수은을 처리하였을 때 나타난 세포막의 손상의 형태와 이온화 방사선을 처리하였을 때 나타난 세포 자체의 형태적 변화가 동시에 나타났으며 세포가 받는 스트레스의 강도에 따라 세포의 형태적 변화 양상이 큼을 알 수 있었고(Figs. 5~8. Lane I) 복합적 스트레스에 의해 세포가 받는 형태적 변화 양상 또한 단독 스트레스 처리에 의한 세포의 형태적 변화 양상에 대한 상승작용이 나타남을 알 수 있었다. 일시적 스트레스 처리군의 형태적 변화와 비교하였을 때, 반복적인 스트레스로 인해 적응한 세포에 나타난 형태적 변화는 일시적 스트레스 처리 군의 세포의 변화보다 큼을 알 수 있었다(Figs.
즉, 동일한 흡수선량을 짧은 시간에 받을수록 세포가 받는 영향력이 큼을 알 수 있었다. 염화수은만을 처리한 실험군의 경우, 0.4 mM 이상의 농도에서는 거의 모든 세포가 사멸한 반면, 0.15~0.2 mM의 저농도 범위에서 세포의 생존율이 일시적으로 증가하는 경향을 보였으며, 점차 염화수은의 농도에 비례하여 세포의 생존율이 낮아졌다. 자궁경부암 세포를 이용한 연구보고(Woo et al.
이온화 방사선을 단독 처리한 군에서의 세포 생존율을 비교해 보면 400 Gy hr-1, 800 Gy hr-1 등 선량률에 상관없이 대체적으로 일시적 스트레스 처리군과 반복적 스트레스 처리군의 세포 생존율이 비슷한 경향을 보였다. 이어 복합적인 스트레스를 처리하였을때, 일시적인 스트레스를 처리한 세포의 생존율이 반복적 스트레스 처리군의 세포 생존율과 비슷한 양상을 보였으며 심지어 반복적 스트레스 처리군에서의 세포 생존율이 높게 나타났다. 즉, 반복적인 스트레스 처리에 의해서 세포의 생존에 큰 영향을 주지 않았으며 심지어 이러한 반복적 스트레스 처리한 군에서의 세포 생존율이 일시적인 스트레스를 처리한 군에서보다 높게 나타남으로 인하여 스트레스에 적응한 세포군 분류가 가능했다.
이온화 방사선만을 처리한 세포의 형태적 변화를 살펴보면 수은만 처리한 군과는 달리 변화가 세포막에 국한되지 않고 세포 자체의 형태가 찌그러지는 현상을 보였다. 이 또한 세포에 가해진 스트레스의 세기에 따라 형태의 변화가 큼을 관찰하였다(Figs.
Lane I) 복합적 스트레스에 의해 세포가 받는 형태적 변화 양상 또한 단독 스트레스 처리에 의한 세포의 형태적 변화 양상에 대한 상승작용이 나타남을 알 수 있었다. 일시적 스트레스 처리군의 형태적 변화와 비교하였을 때, 반복적인 스트레스로 인해 적응한 세포에 나타난 형태적 변화는 일시적 스트레스 처리 군의 세포의 변화보다 큼을 알 수 있었다(Figs. 4~8. Lane II). 적응 세포는 확연하게 일시적 스트레스 처리군의 세포와 구분되어 형태적 변화가 큼에도 불구하고 세포의 생존을 일시적 스트레스 처리군의 세포처럼 유지함을 알 수 있었다.
Lane II). 적응 세포는 확연하게 일시적 스트레스 처리군의 세포와 구분되어 형태적 변화가 큼에도 불구하고 세포의 생존을 일시적 스트레스 처리군의 세포처럼 유지함을 알 수 있었다.
방사선만을 조사한 실험군에서는 방사선의 최종 흡수선량이 높을수록 세포의 생존율이 감소하였으며 조사선량률이 높을수록 세포의 생존율이 감소하였다. 즉, 동일한 흡수선량을 짧은 시간에 받을수록 세포가 받는 영향력이 큼을 알 수 있었다. 염화수은만을 처리한 실험군의 경우, 0.
이어 복합적인 스트레스를 처리하였을때, 일시적인 스트레스를 처리한 세포의 생존율이 반복적 스트레스 처리군의 세포 생존율과 비슷한 양상을 보였으며 심지어 반복적 스트레스 처리군에서의 세포 생존율이 높게 나타났다. 즉, 반복적인 스트레스 처리에 의해서 세포의 생존에 큰 영향을 주지 않았으며 심지어 이러한 반복적 스트레스 처리한 군에서의 세포 생존율이 일시적인 스트레스를 처리한 군에서보다 높게 나타남으로 인하여 스트레스에 적응한 세포군 분류가 가능했다.
후속연구
게다가 스트레스로 인하여 세포의 형태적 손상이 큼에도 불구하고 일시적인 스트레스 처리군의 세포 생존율과 비슷한 경향을 보인 적응 세포는 세포에 가해진 스트레스에 적응하는 기작을 발동시킴으로써 세포의 생존을 유지하고 있으리라 추측된다. 그러므로, 본 연구의 결과는 이러한 스트레스에 적응하는 기작을 규명하는 자료로서의 가치가 있다고 판단된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
방사선은 어떤 방면에 이용되고 있는가?
방사선은 오늘날 치료 및 진단, 식품의 멸균, 계측 등 다양한 방면에 이용되고 있다. 산화적 스트레스 유발원의 하나로 방사선에 과다 피폭 시 세포괴사 및 유전자의 특이적 발현을 일으킨다.
수은 화합물은 어떤 장기에 손상을 일으킨다고 보고되었는가?
수은 화합물은 무기수은, 메틸수은, 염화수은 등 화학적 분류에 따라 다양한 생물반응을 일으키기 때문에 다각적 측면에서의 연구가 이루어지고 있으며, 주로 신경, 신장 및 간 손상을 일으킨다는 연구결과가 보고되었다(Goyer et al. 1991; Emanuelli et al.
활성산소종에 의한 산화적 스트레스는 어디에 손상을 일으키는가?
모든 호기성 생물들은 분자형태의 산소로부터 생성되는 활성산소종(Reactive Oxygen Species, ROS)에 의해 산화적 스트레스를 받는다. ROS는 높은 활성을 지니고 있어 DNA, 지질, 단백질과 같은 세포구성 물질에 손상을 일으킨다. 따라서, 생물체의 세포들은 활성산소종으로부터 세포 구성물질을 방어할 수 있는 기작을 발전시켜왔다.
참고문헌 (19)
김진규. 2001. 환경재해 방지를 위한 생물정보로서의 사람 림프구 DNA 손상에 대한 방사선과 살충제의 상승작용. 환경생물. 19:19-24.
Aleo MF, F Morandini, F Bettoni, S Tanganelli, A Vezzola, R Giuliani, N Steimberg, P Apostoli and G Mazzoleni. 2002. Antioxidant potential and gap junction-mediated intercellular communication as early biological markers of mercury chloride toxicity in the MDCK cell line. Toxicol. in Vitro 16:457-465.
Bennett CB, LK Lewis, G Karthikeyan, KS Lobachev, YH Jin, JF Sterling, JR Snipe and MA Resnick. 2001. Genes required for ionizing radiation resistance in yeast. NAT GENET 29: 426-434
Bonin S, W Wzorek and L Koper. 2006. Influence of longtime continuous wine fermentation on yeast immobilized on foam glass. Acta Scientiarum Polonorum, Technologia Alimentaria. 5:25-38.
Coelho MAZ, I Belo, R Pinheiro, AL Amaral, M Mota, JAP Coutinho and EC Ferreira. 2004. Effect of hyperbaric stress on yeast morphology: study by automated image analysis. Applied Microbiology and Biotechnology 66: 318-324.
Emanelli T, JB Racha, ME Pereira, LO Porciuncula, VM Morsch, AF Martins and DO Souza. 1996. Effect of mercuric chloride intoxication and dimercaprol treatment on delta-aminolevulinate dehydratase from brain, liver and kidney of adult mice. Pharmcol. Toxicol. 79:136-143.
Gueldry O, M Lazard, F Delort, M Dauplais, I Grigoras, S Blanquet and P Plateau. 2003. Ycf1p-dependent Hg (II) detoxification in Saccharomyces cerevisiae. Eur. J. Biochem. 270: 2486-2496.
Keifer J. 1989. Biological Radiation Effects. Springer Verlag. Berlin. 444pp.
Migliore L, L Cocchi, C Nesti and E Sabbioni. 1999. Micronuclei assay and FISH analysis in human lymphocytes treated with six metal salts. Environ. Mol. Mutagen. 34:279-284.
Onken U and E Liefke. 1989. Effect of total and partial pressure (oxygen and carbon dioxide) on aerobic microbial processes. pp.137-169. In Advances In Biochemical Engineering/Biotechnology (Riechter A ed.). Springer, Berlin Heidelberg New York.
Panek A, JK Kim and A Cebulska-Wasliewa. 2001. In Vitro studies of repair efficiency of DNA damage induced by Xrays in lymphocytes exposed to mercury. 12nd Symposium of Polish Radiation Research Society, Sept. 10-12, 2001, Krakow, Poland.
Salmon JM, P Vuchot, T Doco and M Moutounet. 2003. Maintenance and protection of yeast morphology by contact with wine polyphenols during simulation of wine aging on Lees. Food Microbiol. Safety. 68:1782-1787.
Stohs SJ and D Bagchi. 1995. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions. Free Radic. Biol. Med. 18:321-336.
Sunner J, R Avci, L Richards, G Groenewold, J Ingram and M Arthun. 2003. Preservation of yeast cell morphology for scanning electron microscopy using 3.28- ${\mu}M$ IR laser irradiation. J. Microbiol. Methods 54:285-287.
Woo HJ, JH Kim, A Cebulska-Wasilewska and JK Kim. 2006. Evaluation of DNA damage by mercury chloride (II) and ionizing radiation in HeLa cells. Korean J. Environ. Biol. 24:46-52.
Youm JH, DH Koh, JY Kim and NS Kim. 2000. Changes on the methylmercury-induced cytotoxicity by control of cell membrane transport system. Korean J. Environ. Health. Soc. 26:88-96.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.