본 연구는 Cd에 노출시킨 붕어를 통하여 각 조직에 축적된 Cd 양과 항산화효소 활성을 통해 생리적인 변화 및 아가미와 신장 조직에서의 미세구조 변화를 조사하였다. Cd을 처리한 실험군 붕어 조직 내 Cd의 함량은 아가미 조직에서 가장 높았고 근육 조직에서 가장 낮았다. 또한 모든 조직에서 Cd의 함량은 노출기간이 길어질수록 증가하여 노출 20일에 가장 높았다. 항산화효소의 활성은 아가미와 근육 조직에서 높았으며, 신장과 간 조직에서 낮았다. 모든 조직에서 SOD의 활성이 가장 높았으며, SOD와 CAT의 활성은 10일에 높은 활성을 보이고 감소하는 유사한 결과를 보였다. Cd에 20일간 노출시킨 붕어의 아가미 조직은 대조군 아가미 조직에 비하여 노출기간이 길어질수록 새변 사이에 점액세포의 수가 증가하였으며, 이차새변에서는 부종, 상피세포의 박리와 새변과 새변이 융합한 형태도 관찰되었다. 또한 아가미 조직의 미토콘드리아와 핵에서는 막의 손상이 확인되었다. 신장 조직은 대조군에서 보우만 주머니 안에 사구체가 꽉 찬 정상구조였으나 노출기간이 길어짐에 따라 사구체가 수축하여 보우만 주머니 안의 공간이 넓은 형태로 관찰되었다.
본 연구는 Cd에 노출시킨 붕어를 통하여 각 조직에 축적된 Cd 양과 항산화효소 활성을 통해 생리적인 변화 및 아가미와 신장 조직에서의 미세구조 변화를 조사하였다. Cd을 처리한 실험군 붕어 조직 내 Cd의 함량은 아가미 조직에서 가장 높았고 근육 조직에서 가장 낮았다. 또한 모든 조직에서 Cd의 함량은 노출기간이 길어질수록 증가하여 노출 20일에 가장 높았다. 항산화효소의 활성은 아가미와 근육 조직에서 높았으며, 신장과 간 조직에서 낮았다. 모든 조직에서 SOD의 활성이 가장 높았으며, SOD와 CAT의 활성은 10일에 높은 활성을 보이고 감소하는 유사한 결과를 보였다. Cd에 20일간 노출시킨 붕어의 아가미 조직은 대조군 아가미 조직에 비하여 노출기간이 길어질수록 새변 사이에 점액세포의 수가 증가하였으며, 이차새변에서는 부종, 상피세포의 박리와 새변과 새변이 융합한 형태도 관찰되었다. 또한 아가미 조직의 미토콘드리아와 핵에서는 막의 손상이 확인되었다. 신장 조직은 대조군에서 보우만 주머니 안에 사구체가 꽉 찬 정상구조였으나 노출기간이 길어짐에 따라 사구체가 수축하여 보우만 주머니 안의 공간이 넓은 형태로 관찰되었다.
The present study aimed to investigate the level of accumulated heavy metal in various tissues of Carassius auratus after exposure to Cadmium (Cd), histologically and physiologically. After treating C. auratus with Cd, the accumulated Cd in gill tissues was detected to be of the highest content, and...
The present study aimed to investigate the level of accumulated heavy metal in various tissues of Carassius auratus after exposure to Cadmium (Cd), histologically and physiologically. After treating C. auratus with Cd, the accumulated Cd in gill tissues was detected to be of the highest content, and showed the lowest content in integument tissues. Also, Cd content increased in a time dependent manner and showed the highest accumulation in the tissues exposed for 20 days. Antioxidant enzyme activities showedhigher activity in the gill and integument than in the kidney and liver tissues. In the case of SOD, antioxidation activity of SOD in all Cd exposed tissues was higher than in unexposed tissues. The activities of SOD and CAT also became higher after Cd exposure. Gill tissues exposed to Cd showed an increased number of mucous cells between lamella in a time dependent manner. In addition, the gills showed morphological changes such as edema, exfoliation of epithelial cells, and fusion of the secondary lamellae. Also, exposure to Cd for 20 days had an effect on gill tissues, causing membrane damage in the mitochondria and nucleus. In kidney tissues, atrophied glomerulus was observed, and the empty space in Bowman's capsule was wider.
The present study aimed to investigate the level of accumulated heavy metal in various tissues of Carassius auratus after exposure to Cadmium (Cd), histologically and physiologically. After treating C. auratus with Cd, the accumulated Cd in gill tissues was detected to be of the highest content, and showed the lowest content in integument tissues. Also, Cd content increased in a time dependent manner and showed the highest accumulation in the tissues exposed for 20 days. Antioxidant enzyme activities showedhigher activity in the gill and integument than in the kidney and liver tissues. In the case of SOD, antioxidation activity of SOD in all Cd exposed tissues was higher than in unexposed tissues. The activities of SOD and CAT also became higher after Cd exposure. Gill tissues exposed to Cd showed an increased number of mucous cells between lamella in a time dependent manner. In addition, the gills showed morphological changes such as edema, exfoliation of epithelial cells, and fusion of the secondary lamellae. Also, exposure to Cd for 20 days had an effect on gill tissues, causing membrane damage in the mitochondria and nucleus. In kidney tissues, atrophied glomerulus was observed, and the empty space in Bowman's capsule was wider.
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문제 정의
또한 중금속은 철, 구리 등과 같은 생체 내 필수 원소도 있지만 납, 수은 및 카드뮴과 같은 유해금속들도 있으며 이들 대부분은 생체 내에서 다양한 유해작용을 유발하게 된다[16]. 따라서 본 연구에서는 Cd 0.3 mg/l을 처리한 실험군 붕어를 이용하여 중금속의 축적정도와 이에 따른 아가미와 신장 조직에서 미세구조의 변화와 중금속 함량 및 항산화효소의 활성을 통해 생리적인 변화를 알아보고자 하였다.
제안 방법
수조의 수온은 18~20o C를 유지하여 96시간 동안 실시하였으며 반수치사 농도는(50% lethal concentration) 96시간에서 APHA [2]의 probit 값으로 구하였다. Cd에 대한 96 hr-LC50의 값이 0.564 mg/l로 나타나 중금속 노출농도는 급성실험을 통해 구한 96 hr-LC50 농도를 고려하여 Cd 0.3 mg/l 농도로 결정하였다(Fig. 1). 또한 노출기간은 5일, 10일 및 20일 간격으로 설정하였고, 각 실험구당 70마리씩 사용하였다.
미세입자와 이물질을 제거한 조직은 액체질소로 처리하여 재차 냉동건조기에서 완전히 건조 후 건조중량을 측정하였다. 각 조직 내 Cd의 함량을 측정하기 위해 전처리는 초단파 용해장치(Ethos Plus, Mileston, USA)를 이용하였다. 전처리된 조직 내 Cd의 함량은 유도결합 플라즈마 질량 분석기(Elan DRC-e, Perkin Elmer, USA)를 이용하여 측정하였다.
또한 노출기간은 5일, 10일 및 20일 간격으로 설정하였고, 각 실험구당 70마리씩 사용하였다. 대조군은 0.3 mg/l의 Cd에 노출 실험 전 0일을 대조군으로 하여 노출기간에 따른 실험군과 비교하였다.
0)와 시료액을 넣은 후 기질로 10 mM H2O2 용액을 가하여 잘 혼합한 후 240 nm에서 흡광도의 변화를 2분간 측정하였다[1]. 대조실험으로는 기질인 H2O2 용액 대신에 50 mM phosphate buffer (pH 7.0)을 가하고 위와 동일한 방법으로 흡광도의 변화를 측정하였다. CAT의 활성은 1분 동안에 1 μmol의 H2O2를 분해하는 효소의 양을 1 unit로 하였다.
따라서 본 연구에서는 안동호와 임하호에 서식하는 붕어에서 조직 내 함량이 높으며, 안동호와 임하호 간의 함량차이가컸던 Cd을 대상으로 붕어를 Cd에 노출시킨 후 각 조직에 축적된 Cd 양과 항산화효소 활성을 통해 생리적인 변화 및 아가미와 신장 조직에서의 미세구조 변화를 조사하였다.
1). 또한 노출기간은 5일, 10일 및 20일 간격으로 설정하였고, 각 실험구당 70마리씩 사용하였다. 대조군은 0.
붕어의 아가미, 뼈, 근육 조직의 표면에 부착된 미세입자및 이물질은 초음파세척기(5210, Branson, USA)를 이용하여 최대한 제거하였다. 미세입자와 이물질을 제거한 조직은 액체질소로 처리하여 재차 냉동건조기에서 완전히 건조 후 건조중량을 측정하였다. 각 조직 내 Cd의 함량을 측정하기 위해 전처리는 초단파 용해장치(Ethos Plus, Mileston, USA)를 이용하였다.
붕어의 아가미, 신장, 간, 근육 조직을 적출하여 100 mM phosphate buffer (pH 7.2)에 혈액 및 기타 이물질 등을 세척한후 조직의 무게를 측정하였다. 무게를 측정한 시료는 homogenation buffer (5 mM tris, 38 mM glycine, pH 8.
실험은 30×60×45 cm 크기의 수조에 각 10마리씩 분배하였고, Cd의 농도는 CdCl2로 표준액을 제조한 후 농도에 따라 희석하여 사용하였다. 수조의 수온은 18~20o C를 유지하여 96시간 동안 실시하였으며 반수치사 농도는(50% lethal concentration) 96시간에서 APHA [2]의 probit 값으로 구하였다. Cd에 대한 96 hr-LC50의 값이 0.
실험은 30×60×45 cm 크기의 수조에 각 10마리씩 분배하였고, Cd의 농도는 CdCl2로 표준액을 제조한 후 농도에 따라 희석하여 사용하였다.
아가미 조직을 절취하여 glutaraldehyde에서 전고정 후, osmium tetraoxide로 1시간 30분간 후고정 하였으며, ethyl alcohol을 사용하여 계대 탈수과정을 하였다. 탈수과정 후 propylene oxide로 치환하였으며, epon resin에 포매하여 60o C 배양기에서 48시간 중합하여 block을 제작하였다.
아가미와 신장 조직은 FAA로 24시간 고정하였으며, 수세와 탈수 과정을 거친 후 일반적인 조직 제작 방법에 따라 조직을 paraffin 포매하였다. 이 후 paraffin block을 두께 4~6 μm로 제작하여 hematoxylin과 eosin에 이중염색한 후, 광학현미경 하에서 관찰하였으며 Olympus DP-71을 사용하여 사진 촬영을 하였다.
이 후 paraffin block을 두께 4~6 μm로 제작하여 hematoxylin과 eosin에 이중염색한 후, 광학현미경 하에서 관찰하였으며 Olympus DP-71을 사용하여 사진 촬영을 하였다.
탈수과정 후 propylene oxide로 치환하였으며, epon resin에 포매하여 60o C 배양기에서 48시간 중합하여 block을 제작하였다. 이 후 초미세절편기(Ultracut UCT, Leica)을 이용하여 80 nm로 박절한 후 uranyl acetate와 lead nitrate로 이중 염색하여 투과전자 현미경(H-7000, Hitachi)을 이용하여 미세구조를 관찰한다.
각 조직 내 Cd의 함량을 측정하기 위해 전처리는 초단파 용해장치(Ethos Plus, Mileston, USA)를 이용하였다. 전처리된 조직 내 Cd의 함량은 유도결합 플라즈마 질량 분석기(Elan DRC-e, Perkin Elmer, USA)를 이용하여 측정하였다.
1 mM EDTA 및 효소액이 포함된 용액을 25o C에서 예치한 다음 xanthine oxidase를 첨가하여 반응을 개시하였다[17]. 효소의 활성은 550 nm에서 10초 단위로 150초간 흡광도를 측정하였고, xanthine oxidase 첨가량은 효소액을 함유하지 않은 반응액의 흡광도흡수가 분당 0.025가 되도록 조절하였다. 효소의 활성은 cytochrome C의 환원 속도를 50% 억제하는 양을 1 unit로 하여 unit/mg protein으로 나타냈다
대상 데이터
본 실험에 사용한 붕어(Carassius auratus)는 경북 의성군 비안면에 위치한 약수 양어장에서 사육한 것으로 7일간 순치과정을 거친 후 체장 6.5±0.5 cm, 무게 3.5±1.1 g인 건강한 개체만을 선별하여 실험에 사용하였다.
데이터처리
각 실험에서 얻어진 자료에 대하여 통계 프로그램 패키지 (SPSS Inc., ver 12.0K)를 이용하여 분석한 후, ANOVA test를 사용하여 평균값들 간의 유의성을 검정하였으며(p<0.05), 모든 데이터는 평균±표준편차(mean±SD)로 표시하였다.
성능/효과
Cd을 처리한 실험군의 붕어 조직 내 Cd의 함량은 모든 조직에서 노출기간이 길어질수록 Cd의 함량이 증가하였으며, 노출 20일에 가장 높은 함량을 보였다. Cd의 함량이 가장 높은 조직은 아가미 조직으로 노출 20일에 40.
Cd을 처리한 실험군의 붕어 조직 내 항산화효소의 활성은 모든 조직에서 노출 5일부터 증가하기 시작하여 노출 10일에 가장 높은 활성을 보인 후 노출 20일에 감소하는 경향을 보였다. 아가미, 근육 및 신장 조직의 SOD의 활성은 노출 기간이 길어질수록 증가하여 노출 10일에 가장 높은 활성을 보인 후 감소하는 경향을 보였으나, 간 조직에서는 노출 기간이 길어질수록 활성이 증가하여 노출 20일에 가장 높은 활성을 보였다.
GPX의 활성이 가장 높은 조직은 아가미 조직으로 노출 10일에 15.52±0.54 unit/mg protein의 활성을 보였으며, 간 조직이 가장 낮은 활성을 보였다.
SOD의 활성 중 가장 높은 활성은 아가미 조직으로 노출 10일에 55.00±9.12 unit/mg protein의 활성을 보였으며, 신장 조직이 가장 낮은 활성을 보였다.
가장 높은 활성을 보인 근육 조직은 노출 10일에 33.90±1.44 unit/mg protein을보였으며, 신장 조직이 가장 낮은 활성을 보였다.
따라서 항산화효소의 활성은 아가미와 근육 조직에서 활성이 높았으며, 신장과 간 조직에서 활성이 낮았다. 그러나 대조군과 비교 시활성의 차이는 아가미와 근육 조직 보다 신장과 간 조직에서 높은 활성의 차이를 보였다(Fig. 3).
대조군 아가미 조직은 이차새변 사이의 공간이 비교적 일정 하였고 새변사이의 점액세포 수의 증가도 관찰되지 않았다. Cd을 5일간 처리한 실험군 붕어의 아가미 조직은 이차새변사이의 공간이 비교적 일정하였으나 점액세포 수가 증가하기시작하였으며 10일에는 상피세포의 비대와 곤봉화가 나타나기 시작하였다.
대조군과 비교 시 활성의 차이가 가장 큰 조직은근육 조직으로 노출 후 20일에 7.42±1.63 unit/mg protein으로 대조군의 활성에 비해 6배의 활성 차이를 보였다.
5). 대조군의 신장 조직은 보우만 주머니 안에 사구체가 가득 차 있는 정상적인 구조로 관찰되었고 노출 5일에서도 정상적인 구조를 보였다. 그러나 10일과 20일로 노출기간이길어짐에 따라 사구체의 수축이 점점 증가하여 보우만 주머니 안의 공간이 넓게 관찰되었다(Fig.
02 ug/g으로 대조군 보다 100배의 함량 증가를 보였다. 따라서 Cd을 처리한 실험군의 붕어 조직 내 Cd의 축적량은 대조군과 비교시 아가미 조직에서 가장 함량이 높았으며, 근육 조직에서 가장 낮은 함량을 보였다(Fig. 2).
63 unit/mg protein으로 대조군의 활성에 비해 6배의 활성 차이를 보였다. 따라서 항산화효소의 활성은 아가미와 근육 조직에서 활성이 높았으며, 신장과 간 조직에서 활성이 낮았다. 그러나 대조군과 비교 시활성의 차이는 아가미와 근육 조직 보다 신장과 간 조직에서 높은 활성의 차이를 보였다(Fig.
또한 대조군과 비교 시 가장 높은 활성의 차이를 보인 조직은 아가미 조직으로 노출 5일에 23.32±4.88 unit/mg protein으로 대조군의 활성에 비해 2.2배의 활성 차이를 보였다.
또한 대조군의 활성과 비교시 가장 높은 활성의 차이를 보인 조직은 간 조직으로 노출 20일에 48.36±5.51 unit/mg protein으로 3.6배의 활성 차이를 보였다.
아가미 조직에서 Cd의 함량은 다른 뼈와 근육조직에 비해 노출 5일부터 높은 함량을 보였다. 또한 뼈 조직과 근육 조직은 대조군에 비하여 노출 5일에는 함량의 변화가 크지 않았으나 노출 20일에는 대조군과 비교 시 높은 함량의 차이를 보였다. 뼈 조직은 노출 20일에 6.
6배의 활성 차이를 보였다. 모든 조직에서 CAT의 활성은 노출 10일에 가장 높은 활성을 보인 후 노출 20일에 감소하였다. 가장 높은 활성을 보인 근육 조직은 노출 10일에 33.
또한 Cd의 축적에 따른 붕어의아가미 조직에서는 새판 상피층의 비후, 새판 말단부의 미약한 곤봉화 및 모세혈관의 확장과 혈구의 증가, 새엽 및 새판 상피층의 비후, 새판의 만곡 및 곤봉화 현상의 진행, 새판 및 새엽 상피층의 박리가 순차적으로 관찰되었다[3]. 본 연구에서 Cd을 처리한 실험군 붕어에서 관찰된 아가미 조직은 노출기간이 길어질수록 이차 새엽의 두께가 점점 두꺼워졌으며 점액 세포 수의 증가와 곤봉화 형태가 두드러지게 나타났다. 이러한 병변들은 보편적으로 나타나는 어류 아가미 조직에서의 병리조직학적 변화로 독성물질에 대한 아가미의 조직학적 변화로 생각된다.
또한 어류의 아가미와 더불어 신장도 수질오염과 같은 환경적 스트레스에 의해서 사구체 수축의 구조적 변형을 나타내는데 사구체의 수축은 포유류의 만성 사구체신염과 유사한 병변으로 어류의 경우에도 2차 병변의 원인이될 수 있다[11]. 본 연구에서는 노출초기에는 사구체의 수축이 두드러지지 않았으나 노출후기에 두드러진 것으로 보아 장기간 Cd에 노출될 경우 사구체의 수축이 증가함으로써 신장 조직의 구조적 변형에 따른 어류의 2차 병변을 나타낼 것으로 사료된다.
또한 어류는 이러한 활성산소를 여러 종류의 비 효소성 항산화제와 효소성인 항산화효소의 작용을 통해 제거함으로서 세포의 기능손상을 막게 된다[4,25]. 본 연구의 Cd 0.3 mg/l에 처리한 실험군 붕어의 경우 아가미, 신장, 근육조직에서 SOD활성은 노출초기에 증가하며 노출후기인 20일에 활성이 감소하는 경향을 보였다. 신장 조직에서 CAT의 활성은 대조군과 유사하였으며 다른 조직에서의 활성은 노출초기에 증가하였다가 노출후기인 20일에 감소하는 경향을 보였다.
뼈 조직은 노출 20일에 6.62±0.02 ug/g으로 대조군에 비해 165배의 높은 함량의 차이를 보였으며, 근육 조직에서는 노출 20일에 2.21±0.02 ug/g으로 대조군 보다 100배의 함량 증가를 보였다.
3 mg/l에 처리한 실험군 붕어의 경우 아가미, 신장, 근육조직에서 SOD활성은 노출초기에 증가하며 노출후기인 20일에 활성이 감소하는 경향을 보였다. 신장 조직에서 CAT의 활성은 대조군과 유사하였으며 다른 조직에서의 활성은 노출초기에 증가하였다가 노출후기인 20일에 감소하는 경향을 보였다. 이러한 결과로 보아 Cd에 노출시킨 환경적 스트레스에 대해 환경변화초기에는 SOD와 CAT와 같은 항산화효소에 의한 항산화작용이 주로 이루어지나 장시간 노출이 되면 어느 정도 환경적 변화요인에 적응해 가는 것으로 사료된다.
05 ug/g으로 대조군에 비해 215배 함량이 높았다. 아가미 조직에서 Cd의 함량은 다른 뼈와 근육조직에 비해 노출 5일부터 높은 함량을 보였다. 또한 뼈 조직과 근육 조직은 대조군에 비하여 노출 5일에는 함량의 변화가 크지 않았으나 노출 20일에는 대조군과 비교 시 높은 함량의 차이를 보였다.
Cd을 처리한 실험군의 붕어 조직 내 항산화효소의 활성은 모든 조직에서 노출 5일부터 증가하기 시작하여 노출 10일에 가장 높은 활성을 보인 후 노출 20일에 감소하는 경향을 보였다. 아가미, 근육 및 신장 조직의 SOD의 활성은 노출 기간이 길어질수록 증가하여 노출 10일에 가장 높은 활성을 보인 후 감소하는 경향을 보였으나, 간 조직에서는 노출 기간이 길어질수록 활성이 증가하여 노출 20일에 가장 높은 활성을 보였다. SOD의 활성 중 가장 높은 활성은 아가미 조직으로 노출 10일에 55.
신장 조직에서 CAT의 활성은 대조군과 유사하였으며 다른 조직에서의 활성은 노출초기에 증가하였다가 노출후기인 20일에 감소하는 경향을 보였다. 이러한 결과로 보아 Cd에 노출시킨 환경적 스트레스에 대해 환경변화초기에는 SOD와 CAT와 같은 항산화효소에 의한 항산화작용이 주로 이루어지나 장시간 노출이 되면 어느 정도 환경적 변화요인에 적응해 가는 것으로 사료된다.
4). 투과전자현미경을 통한 아가미 조직의 형태적 변화에서는 대조군 아가미 조직의 세포 소기관인 미토콘드리아 및 핵에서 막의 손상 없이 정상적인 형태로 관찰되었다. 그러나 Cd에 20일간 처리한 실험군의 아가미 조직은 세포소기관인 미토콘드리아와 핵에서 막이 손상되었다 (Fig.
후속연구
본 연구에서도 노출기간이 길어질수록 Cd의 함량이 증가하여 Cho 와 Kim [6]과 Park 등[19]의 보고에서 Cd의 함량이 미량일지라도 노출기간이 길어짐에 따라 증가한다는 결과와 유사하였다. 또한 이러한 결과는 중금속의 함량이 미량일지라도 장시간 노출이 되면 어류에 체내에 지속적인 축적이 일어나며 이러한 축적은 어류 조직에서 미세구조의 변화와 생리적 병변을나타낼 것으로 생각된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
어류가 미량의 카드뮴에 노출될 경우 어떤 피해를 보나요?
또한 수계로 유입된 카드뮴은 동물의 조직에 지속적으로 축적되고, 축적된 카드뮴의 독성은 노출되는 양과 형태[7], 체내유입경로[14]에 따라 다르게 나타나는데, 신장 기능, 중추 신경계, 골변화증, 근육통, 고혈압, 호흡곤란 등이 유발되는 것으로 보고되고 있다[7]. 특히 어류의 경우, 미량의 카드뮴에 노출될 경우에도 조직 손상, 척추 변형, 호흡기 변화등 치사에까지 이르게 된다[22]. 그러나 지금까지의 생체 내 Cd 축적에 대한 연구는 주로 실험동물을 이용한 실험적 연구가 대부분일 뿐 수중에서의 어류를 이용한 실험적 연구는 많지 않다.
어류에서 Cd와 같은 중금속 축적 변화의 경향을 파악하기 어려운 이유는?
그러나 지금까지의 생체 내 Cd 축적에 대한 연구는 주로 실험동물을 이용한 실험적 연구가 대부분일 뿐 수중에서의 어류를 이용한 실험적 연구는 많지 않다. 또한 어류에 대한 중금속 축적 연구는 자연 생태계에서의 어류를 채집하여 중금속 농도를 측정한 실험이 대부분이어서 이들이 서식하는 생활환경과 물의 오염상태에 따라 측정치에 차이가 있을 수 있어 사실상 특정 중금속에 어류가 노출되었을 때 어느 정도 축적되는지, 시간 경과에 따른 축적변화는 어떠한 경향인지를 알아내기가 어렵다[19].
붕어가 생물검정 시험에 적합한 재료로 활용되는 이유는?
어류의 생체 내 중금속 축적이나 독성실험에는 수중 생태계의 제반 특성과 어류의 종류에 따라 차이가 있으나 어류에 대한 독성시험법에 의하면 송사리, 붕어, 잉어, 금붕어 및 미꾸라지 등을 공시어로 지정하고 있다. 따라서 잉어목, 잉어과에 속하는 붕어(Carassius auratus)는 한국, 중국 및 일본 등 아시아권에 널리 분포하고 개체수도 풍부한 대표적인 담수어종이며, 실험실에서 순화가 잘 될 뿐만 아니라 채집에도 용이한 점이 있기 때문에 생물검정시험에 적합한 재료로 활용되고 있다[5]. 또한 선진국에서는 환경오염에 따른 수생생태계의 변화를 파악하고자 이화학적 수질분석만을 이용한 수질관리에서 벗어나 생물학적 감시망을 구축하였고, 이를 바탕으로 악화된 수 환경을 보전 및 복원하고자 꾸준한 생물모니터링 및 수생생물의 생태적 특성 및 생리·생화학적 연구를 실시하고 있다[21].
참고문헌 (25)
Aebi, H. 1984. Catalase in vitro, pp. 121-126, In Packer, L. (ed.), Methods in Enzymology, 105, Academic Press Inc., New York.
APHA-AWWA-WPCF. 1985. Standard methods for the examination of water and wastewater. pp. 715-742. 16th eds., Washington, D. C.
Bae, H. K., E. K. Kim, S. S. Nam, C. K. Moon, S. H. Jeon, J. G. Na, and K. S. Park. 2002. A study on cadmium accumulations and histopathological changes in the gills of Crucian Carp (Carassius auratus). Korean J. Environ. Toxicol. 17, 53-61.
Chance, B., H. Siec, and A. Boveris. 1979. Hydroperoxide metabolism in mammalian organs. Physiol. Rev. 59, 527-605.
Cho, K. S., J. H. Park, and J. C. Kang. 2004. Acute toxicity of Carassius auratus and Pungtungia herzi lavra on mercury, lead and copper exposure. J. Korean Soc. on Water Quality 20, 265-268.
Cho, Y. G. and G. B. Kim. 2007. Bioaccumulation of Pb and Cd in Blue mussel (Mytilus edulis) and Oliver flounder (Paralichthys olivaceus) exposed to rearing media. J. Korean Soc. for Marine Eviron. Eng. 10, 21-28.
Dudkey, R. E., D. J. Sovovoda, and C. D. Klaassen. 1982. Acute exposure to cadmium causes servere liver injury in rats. Toxicol. Appl. Pharmacol. 65, 302-313.
EPA. 1978. Criteria and rationale for decision making in aquatic hazard evalution, aquatic hazard of pesticides task group, Amer. Inst. Biol. Science, pp. 46, Arlinton, Virginia.
EPA. 1989. Short-term method for estimating the chronic toxicity of effluent and receiving water to freshwater organism, U.S. EPA-600/4-89-001.
Faeder, E. J., S. Q. Chanet, and L. C. King. 1977. Biochemical and ultrastructural changes in livers of cadmium treated rats. Toxicol. Appl. Pharmacol. 39, 473-483.
Fennel, R. H. and V. M. Pardo. 1967. Experimental glomerulonephritis in rats. Lab. Invest. 17, 483-488.
Flohe, L., A. Wolfgang, and W. A. Gunzler. 1984. Assay of glutathione peroxidase, pp. 105-114, In Packer, L. (ed.), Methods in enzymatic analysis, Academic Press Inc., New York.
Friberg, L. and J. Vostal. 1972. Mercury in the environment, pp. 17-23, CRS Press Inc., Cleveland.
Goyer, R. A. 1986. Toxic effect of metals. Casarett and Doull’s Toxicology, pp. 623-680, In Klaassen, C. D., M. D. Amder, and J. Doull (eds.), Mecmillian Publishing Co., New York.
Kim, J. S., M. J. Shin, J. E. Lee, and E. W. Seo. 2009. Heavy metal contents in tissues of Carassius auratus in Andong and Imha reservoir. J. Life Sci. 19, 1562-1567.
Lee, J. S., J. C. Kang, and Y. K. Shin. 2001. Histological responses of the flounder, Paralichthys olivaceus exposed to copper. J. Fish Pathol. 14, 81-90.
McCord, J. M. and I. Fridovich. 1969. Superoxide dismutase an enzymic function ferythrocuprotein (Hemocuprotein). J. Biol. Chem. 244, 6049-6055.
Muller, M. E., D. A. Sanchez, H. L. Bergman, D. G. Rhem, and C. M. Wood. 1991. Nature and time course of acclimation to aluminium in juvenile brook trout (Salvelinus fontinalis). Gill histology. Can. J. Fish Sci. 48, 2016-2027.
Park, S. H., I. S. Song, and Y. C. Cho. 2000. Experimental study on the accumulation of cadmium and other metals in the fish bodies (Oryzias latipes). Korean J. Environ. Hlth. Soc. 26, 25-31.
Probes, G. S., W. F. Bousquet, and T. S. Miya. 1977. Kinetics of cadmium-induced hepatic and renal metallothionein synthesis in the mouse. Toxicol. Appl. Pharmacol. 39, 51-60.
Schmitt, C. J. and G. M. Dethloff. 2000. Biomonitoring of environmental status and trends (BEST) program, selected methods for monitoring chemical contaminants and their effects in aquatic ecosystems. U. S. Geological Survey, Biological Resources Division, Information and Technology Report, USGS/ BRD/ITR-2000-0005.
Sorensen, E. M. 1991. Cadmium. In: Metal Poisoning in Fish. pp. 175-234, CRC press Inc., Boston.
Stacey, N. H. and C, D. Klaassen. 1981. Comparison of the effects of metals on cellular injury and lipid peroxidation in isolated rat hepatocyte. J. Toxicol. Environ. Hlth. 7, 139.
Wendel, A. and S. Feuerstin. 1981. Drug-induced lipid peroxidation in mice-l. Modulation by monoxygenase activity, glutathione and selsnium status. Biochem. Pharmacol. 30, 2513-2520.
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