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[국내논문] 옥수수 깜부기균에 의한 페닐알라닌의 대사적 분해
Metabolic Fate of Phenylalanine in the Corn Smut Fungus Ustilago maydis 원문보기

한국균학회지 = The Korean journal of mycology, v.39 no.3, 2011년, pp.249 - 253  

현민우 (단국대학교 미생물학과 및 기초과학연구소) ,  김성환 (단국대학교 미생물학과 및 기초과학연구소)

초록
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Ustilago maydis(옥수수깜부기균)에 있어서 동포자 melanin의 구성성분으로 catecol 계 알려진바 이 물질의 전구체인 benzoic acid의 생성 여부와 그 유래 원천을 추적하고자 phenylalanine의 분해 과정을 조사하였다. 방사성 동위원소가 표지된 L-$^{14}C$-phenylalanine 및 $^{14}C$-trans-cinnamic acid를 첨가한 액체배지에서 균체와 배양액을 대상으로 대사산물을 추적 조사한 결과 trans-cinnamic acid, benzoic acid, 4-hydroxybenzoic acid와 hydroxybenzoic acid derivatives 추정되는 물질 등이 검출되었다. 또한 L-$^{14}C$-phenylalanine을 대사하여 매우 천천히 공기 중으로 $^{14}CO_2$를 방출함을 확인하여 phenylalanine을 완전히 분해 할 수 있음을 밝혔다. 결론적으로 본 연구는 옥수수깜부기균이 benzoic acid를 생성하고 그 유래는 phenylalanine의 분해에서 만들어지는 증거를 제시하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Cetecol has been known as a component of melanin in teliospores of the corn smut fungus Ustilago maydis. Its metabolic precursor has been assumed to be benzoic acid but it has not been proven yet. This study was carried out to verify the synthesis of benzoic acid and to chase its metabolic origin in...

주제어

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문제 정의

  • 이러한 의문에 대한 하나의 가능성은 phenylalanine 아미노산 분해의 대사산물로부터 유래 할 것으로 추정되었으나 아직 연구보고 된 바 없다. 이에 따라 본 연구에서는 U. maydis균이 phenylalanine을 분해하여 benzoic acid을 생성하는지 알아보고자 방사성 동위 원소 추적을 통하여 대사 경로를 조사하였다.
  • maydis 균이 phenylalanine 이나 cinnamic acid를 에너지원으로 사용 할 수 있음을 보여준다. 미생물 중 페닐링을 분해하는 기능이 있는 균들이 그다지 많지 않은데다 특히 진균류에서 페닐링의 분해에 대한 보고가 많지 않은바 본 연구 결과는 U. maydis 균의 대사특성에 대한 새로운 정보를 제공한다.
  • 아직 까지 진균에서 C4H와 4CL에 대한 연구가 없는바 U. maydis에서 이들 두 효소의 benzoic acid 형성 가능성에 대한 또 다른 증거를 찾고자 하였다. 현재 GenBank DNA 데이터베이스(www.
  • 또한 L-14C-phenylalanine을 대사하여 매우 천천히 공기 중으로 14CO2를 방출함을 확인하여 phenylalanine을 완전히 분해 할 수 있음을 밝혔다. 결론적으로 본 연구는 옥수수깜부기균이 benzoic acid를 생성하고 그 유래는 phenylalanine의 분해에서 만들어지는 증거를 제시하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Ustilago maydis이란? Ustilago maydis(옥수수 깜부기균)는 담자균으로서 옥수수 식물의 잎, 줄기, 이삭, 화기 등에 침입하여 검은색의 포자를 돌출시키면서 곰팡이로서는 유일하게 기주식물에 암종(plant tumor)을 일으키는 진핵생물체이며, 우리나라를 비롯하여 세계 각국의 옥수수 생산에 피해를 주는 식물병원균이다(Agrios, 1988). U.
U. maydis가 만드는 동포자의 색소는 어떤 멜라닌으로 분석되었는가? U. maydis가 만드는 동포자의 색소는 catecol 계 멜라닌으로 분석되면서(Piattelli et al., 1965) 이 대사물질의 전구체인 benzoic acid가 세포내에서 만들어질 것으로 추정되는 한편 benzoic acid가 어디서 유래하는지 그 원천에 대한 의문이 있어왔다.
옥수수 깜부기균이 식물에 세포 비대성 암을 일으키는 데는 식물조직 내에서 무엇을 형성하기 시작하면서 이루어지는가? U. maydis가 식물에 세포 비대성 암을 일으키는 데는 식물조직 내에서 유성세대의 포자인 동포자(teliospore)를 형성하기 시작하면서 이루어지는데 동포자는 항상 검고 진한 갈색의 색소를 띄고 있다. 따라서 동포자의 색소 형성과 조직의 암화는 어떠한 연계가 있을 것으로 사려 되고 있다.
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참고문헌 (13)

  1. Agrios, G. N. 1988. The smuts. pp. 474-486 in: Plant Pathology. 3rd ed. Academic Press, Inc., San Diego. 

  2. Allina, S. M., Pri-Hadash, A., Theilmann, D. A., Ellis, B. E. and Douglas, C. J. 1998. 4-coumarate:coenzyme A ligase in hybrid poplar; properties of native enzymes, cDNA cloning, and analysis of recombinant enzymes. Plant Physiol. 116:743-754. 

  3. Douglas, C. J. 1996. Phenylpropanoid metabolism and lignin biosynthesis: from weeds to trees. Trends Plant Sci. 1:171-178. 

  4. Hahlbrock K. and Scheel, D. 1989. Physiology and molecular biology of phenylpropanoid metabolism. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 40:347-369. 

  5. Holliday, R. 1974. Handbook of Genetics. Ed. by King, RC, p.575. Pleum, New York. 

  6. Kim, S. H., Kronstad, J. W. and Ellis, B. E. 1996. Purification and characterization of phenylanine ammonia-lyase from Ustilago maydis. Phytochemistry 34:351-357. 

  7. Kim, S. H., Kronstad, J. W. and Ellis, B. E. 2001a. Cloning and disruption of a gene from Ustilago maydis. Current Genetics 40:40-48. 2001. 

  8. Kim, S. H., Kronstad, J. W. and Ellis, B. E. 2001b. Induction of phenylalanine ammonia-lyase activity by tryptophan in Ustilago maydis. Phytochemistry 58:849-857. 

  9. Park, Y. M., Yoon, M. Y., Kim K., W., Cho, N. Y., Lim, H. W., Lee, J. Y., Lee, J. H., Kim Y., J., Kim, J. C. and Sim, S. S. 2003. Effects of phenylpropanoid compounds on melanin production in B16 melanoma cells. Yakhak Hoeji 47:398-403. 

  10. Piattelli, M., Fattorusso, E., Nicolaus, R. A. and Magno, S. 1965. The structure of melanins and melanogenesis. Tetrahedron 21:3229-3236. 

  11. Pritchard, N. J. and Bell, A. A. 1967. Relative activity of germination inhibitors from spores of rust and smut fungi. Phytopathology 57:932-934. 

  12. Yalpani, N., Leon, J., Lawton, M. and Raskin, I. 1993. Pathway of salicylic acid biosynthesis in healthy and virus-inoculated tobacco. Plant Physiol. 103:315-321. 

  13. Yoshida, S. 1969. Biosynthesis and conversion of aromatic amino acids in plants. Annu. Rev. Plant Physiol. 20:41-62. 

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