$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

Proteus mirabilis 전사 조절 단백질의 DNA 결합 특성
DNA Binding Specificity of Proteus mirabilis Transcription Regulator 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.47 no.2, 2011년, pp.158 - 162  

강종백 (경원대학교 화학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

Proteus mirabilis 전사 조절($\underline{P}$roteus $\underline{m}$irabilis $\underline{t}$ranscription $\underline{r}$egulator ) 단백질의 중금속 결합 부위에 대한 아미노산 서열분석에서 PMTR 단백질은 ZntR (아연 저항성) 단백질이 아닌 CueR (구리 저항성) 단백질과 동일한 환경이다. 그리고 겔시프트 법(gel shift assay) 실험에 의하면 PMTR 단백질은 Escherichia coli의 zntA (zinc-translocating P-type ATPase gene) 프로모터에 결합하지 않고 copA (copper-translocating P-type ATPase gene) 프로모터와 Proteus mirabilis에서 atpase (copper-translocating P-type ATPase gene) 프로모터에 결합하였다. DNase I protection 실험에서 PMTR 단백질 결합부위와 DNase I 민감성 염기들이 관찰되었다. P. mirabilis atpase 프로모터에서 민감성 염기로 주형가닥(template strand)에서 C와 A 그리고 비주형가닥(non-template strand)에서 G와 C 염기들이다. 이런 민감성 염기들은 다른 MerR 패밀리 단백질에서 또한 관찰되었으며, 이것은 단백질에 의한 DNA bending을 의미한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Amino acid sequence alignment shows that $\underline{P}$roteus $\underline{m}$irabilis $\underline{t}$ranscription $\underline{r}$egulator (PMTR) has cystein sequence homology at metal binding domain to CueR (copper resistance) protein, which conserves two...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

제안 방법

  • mirabilis)의 atpase (8) 프로모터(copper-translocating P-type ATPase gene)와 PMTR 단백질 사이의 결합을 관찰하였다. 그리고 DNase I protection 실험으로 P. mirabilis의 atpase 프로모터에서 PMTR 단백질의 결합부위와 단백질 결합에 따른 DNA 구조적 변화를 관찰하였다.
  • 단백질 결합 부위와 단백질 결합에 따른 DNA의 구조 변화를 관찰하기 위하여 DNase I protection 실험을 수행하였다. 먼저 증폭에 필요한 한 가닥의 프라이머를 γ32P ATP가 존재하는 상태에서 폴리뉴클레오티드 키나제(polynucleotide kinase)를 처리한 이후에 PROT1 플라즈미드(12)로부터 atpase 프로모터를 PCR로 증폭하였다.
  • 6에 도달된 후, PMTR 단백질은 isopropyl β-D-thiogalactopyranoside (IPTG)를 부가하여 25°C에서 4시간 동안 유도되었다. 단백질 분리는 Ni-NTA 아가로스(agarose) 수지(Qiagen)와 이미다졸(imidazole) 농도 기울기를 이용하여 단백질을 분리하였다. 순수하게 분리된 PMTR 단백질은 15% SDS-PAGE (sodium dodecylsulfatepolyacrylamide gel electrophoresis)에 의하여 확인하였으며, 95% 이상의 순도를 갖는다(자료 미제시).
  • 먼저 증폭에 필요한 한 가닥의 프라이머를 γ32P ATP가 존재하는 상태에서 폴리뉴클레오티드 키나제(polynucleotide kinase)를 처리한 이후에 PROT1 플라즈미드(12)로부터 atpase 프로모터를 PCR로 증폭하였다.
  • 본 연구는 겔 시프트 법(gel shift assay)을 이용하여 E. coli의 copA (copper-translocating P-type ATPase gene) (14)와 zntA (zinc-translocating P-type ATPase gene) (13) 프로모터 그리고 Proteus mirabilis (P. mirabilis)의 atpase (8) 프로모터(copper-translocating P-type ATPase gene)와 PMTR 단백질 사이의 결합을 관찰하였다. 그리고 DNase I protection 실험으로 P.
  • 위의 각 가닥과 상보적인 가닥을 동일한 몰수로 취하여 10 mM sodium cacodylate (pH 6.5) 용액에서 80°C에서 10분 동안 중탕한 후 서서히 실온으로 냉각시킴으로써, 겔 시프트 법에 필요한 duplex DNA를 준비하였다.
  • 이 결과를 토대로 세포 내·외 조건에서 구축된 재조합 유전자를 이용한 전사실험(transcription assay)을 통하여 중금속에 의한 유전자의 전사과정 조절을 관찰한다.
  • 이와 동일한 실험 결과(14)가 CueR 단백질에도 관찰되었으며, CueR 단백질만 존재할 때 보다 Cu(II)와 Cu(I) 이온이 존재할 때 DNA 결합에 필요한 단백질의 농도가 증가함을 보였다. 이런 PMTR 단백질의 DNA 결합력이 높은 중금속 농도에서 중금속과의 결합으로 인한 단백질의 구조적인 변화 가능성을 CD (circular dichroism) 스펙트럼으로 관찰하였다(미발표 자료). CD 스펙트럼에 의하면 100 μM 중금속이 존재할 때 먼 UV 파장 범위(far UV region)에서 PMTR 단백질의 알파 나선이 59.
  • 앞에서 언급되었듯이, pmtR 유전자를 포함한 재조합 플라즈미드로 형질 전환된 대장균에서 PMTR 단백질이 어떤 작용을 통하여 아연 이온 저항성을 증가시켰는지 지금은 설명할 수 없다. 하지만 이를 설명하기 위하여, 우선 구리 이온 뿐만 아니라 아연 이온의 단백질 결합을 확인하기 위하여 1-5 mM DTT (dithiothreitol) 조건에서 하나의 subunit에 결합하는 이온 수를 ICP (Inductively Coupled Plasma) mass spectrometer로 확인 중이다. 이 결과를 토대로 세포 내·외 조건에서 구축된 재조합 유전자를 이용한 전사실험(transcription assay)을 통하여 중금속에 의한 유전자의 전사과정 조절을 관찰한다.

대상 데이터

  • 이렇게 준비된 반응 용액을 TAE 완충용액(Tris-Acetate EDTA)에서 12% 폴리아크릴아미드 겔에 전기영동하였다. 전기영동이 끝난 겔은 건조하여 470 nm 들뜬(excitation) 파장과 535 nm 방출(emission)파장에서 코닥 이미지 스캐너(Kodak image scanner)로 자료를 얻었다. 겔 시프트 법(Fig.
  • DNase I 실험의 반응 조건은 겔 시프트 법과 동일한 조건을 사용하였다. 전기영동이 끝난 겔은 건조하여 포스포 이미지 스캐너(phosphoimager scanner, Kodak)를 사용하여 자료를 얻었다. 그리고 DNA 염기 서열 결정 반응은 Maxam과 Gilbert 방법(10)을 사용하였다.

이론/모형

  • Dot lines (----) shown above DNA sequences indicate the protected region by PMTR protein. G and A sequencing reactions were conducted by Maxam and Gilbert sequencing methods. + and - symbols denote either in the presence or absence of PMTR, respectively.
  • 전기영동이 끝난 겔은 건조하여 포스포 이미지 스캐너(phosphoimager scanner, Kodak)를 사용하여 자료를 얻었다. 그리고 DNA 염기 서열 결정 반응은 Maxam과 Gilbert 방법(10)을 사용하였다. Fig.
  • 순수하게 분리된 PMTR 단백질은 15% SDS-PAGE (sodium dodecylsulfatepolyacrylamide gel electrophoresis)에 의하여 확인하였으며, 95% 이상의 순도를 갖는다(자료 미제시). 단백질의 농도는 계산에 의한 몰 흡광계수 값(6)과 BSA단백질을 이용한 Lowry 방법으로 결정된 농도를 비교하여 결정되었다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
세포 내 중금속 저항성은 어떻게 이루어지나요? 그래서 박테리아는 세포 내· 외의 격리(intra- and extracellular sequestration), 배출 펌프(efflux pumps), 효소에 의한 비독성화(enzymatic detoxification), 혹은 환원(reduction) 등의 다양한 저항성(항상성) 시스템을 이용한다(11, 15). 세포 내 중금속 저항성은 중금속 조절(metalloregulatory) 단백질의 중금속 특이적 결합과 이들 복합체에 의한 중금속 저항 시스템 유전자의 발현으로 이루어진다.
MerR 패밀리 단백질에서 아미노산 서열의 어떤 특징이 중금속 선택적 결합에 관여하는가? MerR 패밀리에 MerR (수은 저항성)(2, 7), ZntR (아연 저항성)(5, 16), 그리고 CueR (구리 저항성)(5, 14) 등의 단백질이 속한다. MerR 패밀리 단백질은 아미노 말단의 DNA 결합부위에서 아미노산 서열의 유사성이 높으나, 카르복실 도메인의 중금속 결합부위는 아미노산 서열의 유사성이 낮으며 이는 중금속의 선택적 결합에 관여한다. 그리고 두 도메인을 연결하는 링커(linker helix)로 이루어진다.
수은 저항성 패밀리 단백질(MerR)의 아미노산 서열 분석 결과 PMTR 단백질이 아연과 결합하는 ZntR 단백질과 달리 CueR 단백질과 같은 중금속의 결합을 예상하는 이유는? 그러나 MerR 패밀리 단백질들의 아미노산 서열 분석(Fig. 1)에 의하면 PMTR 단백질은 CueR 단백질과 같이 중금속 결합 부위에 두 개의 시스테인(C112와 C120) 만이 존재한다. 반면에 ZntR 단백질은 PMTR에서 언급된 두 개의 시스테인에 추가로 두 개의 시스테인(Cys 79와 Cys 115)과 히스티딘(His 119)이 아연 결합에 참여한다(5, 17). 그래서 PMTR 단백질은 아연과 결합하는 ZntR 단백질과 달리 CueR 단백질과 같은 중금속의 결합이 예상된다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (17)

  1. Ansari, A.Z., J.E. Bradner, and T.V. O'Halloran. 1995. DNA-bend modulation in a repressor-to-activator switching mechanism. Nature 374, 371-375. 

  2. Barkay, T., S.M. Miller, A.O. Summer. 2003. Bacterial mercury resistance from atoms to ecosystems FEMS Microbiol. Rev. 27, 355-384. 

  3. Brown, N.L., J.V. Stoyanov, S.P. Kidd, and J.L. Hobman. 2003. The MerR family of transcriptional regulators. FEMS Microbiol. Rev. 27, 145-163 

  4. Busenlehner, L.S., T.C. Weng, J.E. Penner-Hahn, and D.P. Giedroc. 2002. Elucidation of primary ( $\alpha3N$ ) and vestigial ( $\alpha5$ ) heavy metal binding sites in Staphlococcus aureus pI258 CadC: evolutionary implications for metal ion selectivity of ArsR/SmtB metal sensor proteins. J. Mol. Biol. 319, 685-701. 

  5. Changela, A., K. Chen, Y. Xue, J. Holschen, C.E. Outten, T.V. O'Halloran, and A. Mondragon. 2003. Molecular basis of metalion selectivity and zeptomolar sensitivity by CueR. Science 301, 1383-1387. 

  6. Gill, S.C. and P.H. von Hippel. 1989. Calculation of protein extinction coefficients from amino acid sequence data. Anal. Biochem. 182, 319-326. 

  7. Hobman, J.L. 2007. MerR family transcription activators: similar design, different specificities. Mol. Microbiol. 63, 1275-1278. 

  8. Huffman, J.L. 2001. DNA and metal specificity of MerR family member PMTR, Proteus mirabilis transcription regulator. Ph. D. thesis. Oregon Health and Sciences University. 

  9. Kar, S.R., J. Lebowitz, S. Blume, K.B. Taylor, and L.M. Hall. 2001. SmtB-DNA and protein-protein interactions in the formation of the cyanobacterial metallothionein repression complex: $Zn^{2+}$ does not dissociate the protein-DNA compex in vitro. Biochemistry 40, 13378-13389. 

  10. Maxm, A. and W. Gilbert. 1977. A new method for sequencing DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 74. 560-564. 

  11. Nies, D.H. 1999. Microbial heavy-metal resistance. Appl. Microbiol. Biotechnol. 51, 730-750. 

  12. Noll, M., K. Petrukhin, and S. Lutchenko. 1998. Identification of a novel transcription regulator from Proteus mirabilis, PMTR, revealed a possible role of YJAI protein in balancing zinc in E.coli. J. Biol. Chem. 273, 21393-21401. 

  13. Outten, C.E., F.W. Outten, and T.V. O'Halloran. 1999. DNA distortion mechanism for transcriptional activation by ZntR. J. Biol. Chem. 275, 31024-31029. 

  14. Outten, F.W., C.E. Outten, J. Hale, and T.V. O'Halloran. 2000. Transcription activation of an Escherichia coli copper efflux regulon by the chromosomal MerR homologue, CueR. J. Biol. Chem. 275, 31024-31029. 

  15. Permina, E.A., A.E. Kazakov, O.V. Kalininia, and M.S. Gelfand. 2006. Comparative genomics of regulation of heavy metal resistance in Eubacteria. BMC Microbiol. 6, 1-11. 

  16. Singh, V.K., A. Xiong, T.R. Usgaard, S. Chakrabarti, R. Deora, T.K. Misra, and R.K. Jayaswal. 1999. ZntR is an autoregulatory protein and negatively regulates the chromosomal zinc resistance operon znt of Staphylococcus aureus. Mol. Microbiol. 33, 200- 207. 

  17. Zhen, M., F.E. Jacobsen, and D.P. Giedroc. 2009. Coordination chemistry of bacterial metal transport and sensing. Chem. Rev. 109, 4644-4681. 

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로