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Kalanchoe 식물의 영양 번식에 영향을 줄 수 있는 유전자들의 선발
Screening of Genes Which are Able to Affect Kalanchoe Vegetative Reproduction 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.21 no.6 = no.134, 2011년, pp.865 - 874  

정유철 (성균관대학교 유전공학과) ,  정영재 (신경대학교 생명공학과) ,  김동균 (신라대학교 생물과학과)

초록
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Bryophyllum 속에서 그것들의 잎으로부터 소식물체를 생산하는 능력을 갖고 있는 많은 종들이 잘 알려졌다. 이러한 현상은 또한 식물 영양생식으로 알려져 있다. DEG 유전자 감지 기술이 소식물체 형성을 위한 무성생식과정에 관련된 유전자의 조사에 적용되었다. 탐색 된 유전자들은 NCBI 데이터베이스를 사용한 검색 법을 기반으로, 총 69 DEGs에서 38 유전자가 발견되었다. 대부분의 이러한 DEGs는 호르몬(cytokinin과 에틸렌) 신호, 세포 신호 전달, 그리고 세포 분열과 관련 된 유전자들이였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The genus Bryophyllum is best known for many of its species having the ability to produce plantlets on their leaves. This phenomenon is also known as vegetative reproduction. Differential expressed gene (DEG) detecting technique was applied in order to survey the genes involved in the process of ase...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • pinnata의 경우에는 완전한 유식물체를 체세포조직에서 발생시킨다는 독특한 특징을 보인다. 본 연구에서는 이러한 K. pinnata의 독특한 무성영양번식과 관련한 유전자의 발현 양상을 분석하기 위하여 각 시기별 유전자 발현양의 변화를 검출할 수 있는 DEG PCR 방법을 이용하여 유전자의 검색을 시도하였다. 검출된 DEG 중 많은 경우에 있어서 기존 database와 유의성을 갖지 못하였으나, 알려진 기능의 분석을 토대로 발현된 유전자간의 상호신호전달 네트워크를 예상해 보았을 때 검색된 유전자의 대부분이 cell division과 관련된 신호전달 체계에 위치하고 있음을 확인 할 수 있었다.
  • 이것은 염기서열에서는 유의성을 보이지 않으나 단백질 서열로 번역하였을 때 확인되는 단백질 아미노산 서열이 유의성을 보인다는 것으로서 12개의 clone에서 이와 같은 결과가 도출되었다. 유의성 분석으로 선발된 유전자는 신호체계에서의 위치를 파악할 수 있는 선행 논문을 기초로 분석되었다.
  • 이 논문에서는 K. pinnata의 잎 가장자리에서 나타나는 무성영양번식의 한 방법인 소식물체의 발생에 관련한 유전자를 탐색하고, 탐색된 유전자들에서 중요성 있는 유전자를 선발하여, 상호간의 신호 전달 체계에 대한 가능성을 논의하였다.
  • 식물호르몬인 cytokinin은 세포분열과 발생에 관여하며, 특히 분열조직의 발생이나 액아생성 개시에 결정적인 호르몬으로 작용한다[20]. 이에 따라 초기단계에서 유도 혹은 높은 발현율을 갖는 유전자와 cytokinin과의 연관성을 검색하였다. Cytochrome p450과 유의성을 갖는 12번, 42번 Clone은 비유도성단계와 말기단계에서 발현을 보였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
대부분의 영양번식은 어떤 형식으로 번식이 되는 경우가 많은가? 자연에서 일어나는 영양번식은 대부분 초본에서 일어나는 현상으로 유전적으로 동일한 식물을 얻기 위한 좋은 방법으로 원예품종개발에 많이 접목되어 활용되고 있다[15,30]. 대부분의 영양번식은 구조적으로 줄기나 뿌리가 변형되어 번식이 일어나는 경우가 많다. 뿌리줄기(rhizome)는 영양생식 기관 중 가장 대표적인 사례이다.
영양번식이란 무엇인가? 영양번식은 무성생식의 한 종류로서 영양번식 혹은 영양증식이라고도 한다. 이 과정은 씨앗이나 포자의 생산 없이 새로운 독립적인 식물을 발생시키는 과정으로 자연환경에서 많은 식물 종에서 발견되고 보고되었다. 자연에서 일어나는 영양번식은 대부분 초본에서 일어나는 현상으로 유전적으로 동일한 식물을 얻기 위한 좋은 방법으로 원예품종개발에 많이 접목되어 활용되고 있다[15,30].
Kalanchoe의 foliar budding은 종에 따라 두 가지 발생 형태를 따르는데, 각각 무엇인가? Kalanchoe의 foliar budding은 생식의 단계 중 개체 발생의 한 부분으로, 종에 따라 두 가지 발생 형태를 따르게 된다. Monophasic type의 발생 형태에서 bud 분화과정은 primordia에서 소식물체로 발생하는 초기 단계로부터 지속적으로 발생이 진행되는 형태이며, biphasic type의 발생 형태에서 bud 분화과정은 첫 번째 단계로 생리적으로는 휴면 상태를 유지하지만 형태적으로는 완전한 외형을 갖춘 bud를 primordia에서 발생시키고 이후에 두 번째 단계로 잎의 분리에 의하여 완전 성숙이 일어나 소식 물체를 발생시킨다. 더불어 두 번째 유형에 속하는 Kalanchoe의 소식물체 발생은 epiphyllous bud의 발생이 잎의 분리에 의한 신호와 동시에 잎의 성숙에 관련한 신호가 작용한다. 따라서 이러한 발생은 잎의 성숙 및 탈리와 관련한 일련의 두 가지 신호에 의하여 개시된다고 할 수 있다[39].
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참고문헌 (48)

  1. Agarwal, P., M. Reddy, and S. Sopory. 2006. Role of DREB transcription factors in abiotic and biotic stress tolerance in plants. Plant Cell Rep. 25, 1263-1274. 

  2. Aviezer-Hagai, K., J. Skovorodnikova, M. Galigniana, O. Farchi-Pisanty, E. Maayan, E. Bocovza, Y. Efrat, P. von Koskull-Dring, N. Ohad, and A. Breiman. 2007. Arabidopsis immunophilins ROF1 (AtFKBP62) and ROF2 (AtFKBP65) exhibit tissue specificity, are heat-stress induced, and bind HSP 90. Plant Mol. Biol. 63, 237-255. 

  3. Bobich, E. G. and P. S. Nobel. 2001. Vegetative reproduction as related to biomechanics, morphology and anatomy of four cholla cactus species in the Sonoran Desert. Annals Bot. 87, 485-493. 

  4. Brown, D. M., L. A. H. Zeef, J. Ellis, R. Goodacre, and S. R. Turner. 2005. Identification of novel genes in Arabidopsis involved in secondary cell wall formation using expression profiling and reverse genetics. Plant Cell 17, 2281-2295. 

  5. Cercos, M., C. Urbez, and J. Carbonell. 2003. A serine carboxypeptidase gene (PsCP), expressed in early steps of reproductive and vegetative development in Pisum sativum, is induced by gibberellins. Plant Mol. Biol. 51, 165-174. 

  6. Chang, C. 1996. The ethylene signal transduction pathway in Arabidopsis: an emerging paradigm? Trends Biochem. Sci. 21, 129-133. 

  7. Chiba, Y., M. A. Johnson, P. Lidder, J. T. Vogel, H. van Erp, and P. J. Green. 2004. AtPARN is an essential poly(A) ribonuclease in Arabidopsis. Gene 328, 95-102. 

  8. Coupe, S. A., J. E. Taylor, and J. A. Roberts. 1995. Characterisation of an mRNA encoding a metallothionein-like protein that accumulates during ethylene-promoted abscission of Sambucus nigra L. leaflets. Planta 197, 442-447. 

  9. de Almeida Engler, J., R. De Groodt, M. Van Montagu, and G. Engler. 2001. In situ hybridization to mRNA of Arabidopsis tissue sections. Methods 23, 325-334. 

  10. Debretsion, A, T. Habtemariam, S. Wilson, D. Nganwa, and T. Yehualaeshet. 2007. Real-time PCR assay for rapid detection and quantification of Campylobacter jejuni on chicken rinses from poultry processing plant. Mol. Cell. Probes 21, 177-181. 

  11. Deikman, J. and P. E. Hammer. 1995. Induction of anthocyanin accumulation by cytokinins in Arabidopsis thaliana. Plant Physiol. 108, 47-57. 

  12. Devkota, M. P. and G. Glatzel. 2007. Comparative haustorium morphology and vegetative reproduction in the Old World genus Scurrula L. (Loranthaceae) from the Central Nepal Himalayas. Flora - Morphology, Distribution. Funct. Ecol. Plants 202, 179-193. 

  13. Dudley, P., C. K. Wood, J. R. Pratt, and A. L. Moore. 1997. Developmental regulation of the plant mitochondrial matrix located HSP70 chaperone and its role in protein import. FEBS Lett. 417, 321-324. 

  14. Duval, M., T. F. Hsieh, S. Y. Kim, and T. L. Thomas. 2002. Molecular characterization of AtNAM: a member of the Arabidopsis NAC domain superfamily. Plant Mol. Biol. 50, 237-248. 

  15. Elster, C. and L. Perdomo. 1999. Rooting and vegetative propagation in Laguncularia racemosa. Aquatic Bot. 63, 83-93. 

  16. Ge, C., X. Cui, Y. Wang, Y. Hu, Z. Fu, Zhang, D. Z. Cheng, and J. Li. 2006. BUD2, encoding an S-adenosylmethionine decarboxylase, is required for Arabidopsis growth and development. Cell Res. 16, 446-456. 

  17. Gehrig, H. H., K. Winter, J. Cushman, A. Borland, and T. Taybi. 2000. An improved RNA isolation method for succulent plant species rich in polyphenols and polysaccharides. Plant Mol. Biol. Rep. 18, 369-376. 

  18. Green, K. A., M. J. Prigge, R. B. Katzman, and S. E. Clark. 2005. CORONA, a Member of the Class III Homeodomain Leucine Zipper Gene Family in Arabidopsis, Regulates Stem Cell Specification and Organogenesis. Plant Cell 17, 691-704. 

  19. Han, B. W., C. A. Bingman, D. K. Mahnke, R. M. Bannen, S. Y. Bednarek, R. L. Sabina, and G. N. Phillips Jr. 2006. Membrane association, mechanism of action, and structure of Arabidopsis embryonic factor 1 (FAC1). J. Biol. Chem. 281, 14939-14947. 

  20. Inze, D. and L. De Veylder. 2006. Cell cycle regulation in plant development. Annual Rev. Gen. 40, 77-105. 

  21. Ito, T. and E. M. Meyerowitz. 2000. Overexpression of a gene encoding a cytochrome P450, CYP78A9, induces large and seedless fruit in arabidopsis. Plant Cell 12, 1541-1550. 

  22. Jing, W., Y. Sheng, and S. Jang. 2006. The ribosomal protein L32-2 (RPL32-2) of S. pombe exhibits a novel extraribosomal function by acting as a potential transcriptional regulator. FEBS Lett. 580, 1827-1832. 

  23. Kim, Y. R., J. S. Kim, S. H. Lee, W. R. Lee, J. N. Sohn, Y. C. Chung, H. K. Shim, S. C. Lee, M. H. Kwon, and Y. S. Kim. 2006. Heavy and light chain variable single domains of an anti-DNA binding antibody hydrolyze both doubleand single-stranded DNAs without sequence specificity. J. Biol. Chem. 281, 15287-15295. 

  24. Komsta-Szumska, E. and J. Chmielnicka. 1983. Effect of zinc, cadmium or copper on mercury distribution in rat tissues. Toxicol. Lett. 17, 349-354. 

  25. Kuroha, T., C. Ueguchi, H. Sakakibara, and S. Satoh. 2006. Cytokinin Receptors are required for Normal Development of Auxin-transporting Vascular Tissues in the Hypocotyl but not in Adventitious Roots. Plant Cell Physiol. 47, 234-243. 

  26. Lam, B. C., T. L. Sage, F. Bianchi, and E. Blumwald. 2001. Role of SH3 domain-containing proteins in clathrin-mediated vesicle trafficking in Arabidopsis. Plant Cell 13, 2499-2512. 

  27. Li, H. Y. and M. L. Chye. 2003. Membrane localization of Arabidopsis acyl-CoA binding protein ACBP2. Plant Mol. Biol. 51, 483-492. 

  28. Li, S., L. Yin, E. S. Cole, R. A. Udani, and K. M. Karrer. 2006. Progeny of germ line knockouts of ASI2, a gene encoding a putative signal transduction receptor in Tetrahymena thermophila, fail to make the transition from sexual reproduction to vegetative growth. Develop. Biol. 295, 633-646. 

  29. Ludwig, A. and R. Tenhaken. 2001. Suppression of the ribosomal L2 gene reveals a novel mechanism for stress adaptation in soybean. Planta 212, 792-798. 

  30. Malagnac, F., H. Lalucque, G. Lepere, and P. Silar. 2004. Two NADPH oxidase isoforms are required for sexual reproduction and ascosporic germination in the filamentous fungus Podospora anserina. Fungal Genet. Biol. 41, 982-997. 

  31. Merchant, S. and M. R. Sawaya. 2005. The light reactions: A guide to recent acquisitions for the picture gallery. Plant Cell 17, 648-663. 

  32. Micheli, F. 2001. Pectin methylesterases: cell wall enzymes with important roles in plant physiology. Trends Plant Sci. 6, 414-419. 

  33. Millenar, F. F., M. C. Cox, Y. E. van Berkel, R. A. Welschen, R. Pierik, L. A. Voesenek, and A. J. M. Peeters. 2005. Ethylene-induced differential growth of petioles in Arabidopsis. Analyzing natural variation, response kinetics, and regulation. Plant Physiol. 137, 998-1008. 

  34. Nishimura, T., T. Wada, and K. Okada. 2004. A key factor of translation reinitiation, ribosomal protein L24, is involved in gynoecium development in Arabidopsis. Biochem. Soc. Trans. 32, 611-613. 

  35. Pfeiffer, T. 2007. Vegetative multiplication and patch colonisation of Asarum europaeum subsp. europaeum L. (Aristolochiaceae) inferred by a combined morphological and molecular study. Flora-Morphology, Distribution. Funct. Ecol. Plants 202, 89-97. 

  36. Pi, Y., Z. Liao, Y. Chai, H. Zeng, P. Wang, Y. Gong, Y. Pang, X. Sun, and K. Tang. 2006. Molecular cloning and characterization of a novel stem-specific gene from Camptotheca acuminata. J. Biochem. Mol. Biol. 39, 68-75. 

  37. Picault, N., L. Palmieri, I,. Pisano, M. Hodges, and F. Palmieri. 2002. Identification of a novel transporter for dicarboxylates and tricarboxylates in plant mitochondria. J. Biol. Chem. 277, 24204-24211. 

  38. Sakakibara, H. and L. Gerald. 2005. Cytokinin biosynthesis and regulation. pp. 271-287. Vitamins and hormones. Vol. 72, Academic press. 

  39. Sawhney, N. and S. Sawhney. 2002. Local anaesthetic lidocaine modulates epiphyllous bud differentiation in Kalanchoe pinnata. Plant Growth Regul. 38, 45-49. 

  40. Schaller, G. E. 1997. Ethylene and cytokinin signaling in plants: the role of two-component systems. Essays Biochem. 32, 10-11. 

  41. Serna, L. and C. Martin. 2006. Trichomes: different regulatory networks lead to convergent structures. Trends Plant Sci. 11, 274-280. 

  42. Shoji, T., R. Winz, T. Iwase, K. Nakajima, Y. Yamada, and T. Hashimoto. 2002. Expression patterns of two tobacco isoflavone reductase-like genes and their possible roles in secondary metabolism in tobacco. Plant Mol. Biol. 50, 427-440. 

  43. Spielewoy, N., H. Schulz, J. M. Grienenberger, L. Thony-Meyer, and G. Bonnard. 2001. CCME, a nuclear- encoded heme-binding protein involved in cytochrome c maturation in plant mitochondria. J. Biol. Chem. 276, 5491-5497. 

  44. Thompson, M. D., C. M. Jacks, T. R. Lenvik, and J. S. Gantt. 1992. Characterization of rps17, rp19 and rpl15: three nucleus- encoded plastid ribosomal protein genes. Plant Mol. Biol. 18, 931-944. 

  45. van Eldik, G. J., R. K. Ruiter, P. H. W. N. Colla, M. M. A. van Herpen, J. A. M. Schrauwen, and G. J. Wullems. 1997. Expression of an isoflavone reductase-like gene enhanced by pollen tube growth in pistils of Solanum tuberosum. Plant Mol. Biol. 33, 923-929. 

  46. Weber, H., A. Chetelat, P. Reymond, and E. E. Farmer. 2004. Selective and powerful stress gene expression in Arabidopsis in response to malondialdehyde. Plant J. 37, 877-888. 

  47. Werner, T., V. Motyka, V. Laucou, R. Smets, H. Van Onckelen, and T. Schmulling. 2003. Cytokinin-deficient transgenic Arabidopsis plants show multiple developmental alterations indicating opposite functions of cytokinins in the regulation of shoot and root meristem activity. Plant Cell 15, 2532-2550. 

  48. Zeng, Y. and A. R. Kermode. 2004. A gymnosperm ABI3 gene functions in a severe abscisic acid-insensitive mutant of Arabidopsis (abi3-6) to restore the wild-type phenotype and demonstrates a strong synergistic effect with sugar in the inhibition of post-germinative growth. Plant Mol. Biol. 56, 731-746. 

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