C57BL/6 마우스에서 자외선 B(UV-B) 조사에 의한 표피 멜라닌세포의 변화에 대한 헤모힘의 효과를 관찰하였다. 마우스에 UV-B를 매일 $80\;mJ{\cdot}cm^{-2}$ ($0.5\;mW{\cdot}sec^{-1}$)씩 7일간 조사하고 헤모힘을 UV 조사 전 또는 조사 후에 복강내주사, 경구투여 또는 피부에 도포하여 멜라닌세포 형성 억제효과 및 형성된 멜라닌세포에 대한 미백효과를 dihydroxyphenylalanine (DOPA) 염색으로 관찰하였다. 마우스의 귀등쪽 표피를 분리하여 관찰한바, 정상대조군에서는 $mm^2$당 13~15개의 멜라닌세포가 관찰되었다. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군에서 44.9%, 경구투여군에서는 35.6%의 억제효과를 보였고, 피부도포군에서는 30% 이상의 유의성 있는 억제 효과가 관찰되었다. 형성된 멜라닌세포의 감소 효과 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군의 경우 3주 및 6주에 각각 18.3%, 12.5%의 감소 효과가 관찰되었고, 경구투여군에서는 3주 및 6주에 각각 16.9%, 20.4%의 감소 효과가 관찰되었으며, 피부도포군의 경우 3주에 32.0%, 6주에 31.2%의 감소 효과를 보였다. 이상의 결과는 헤모힘이 UV에 의한 멜라닌세포 형성 억제제 및 미백제로서의 적용 가능성을 제시하였다. 구성 단미생약, 유효성분, 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 세포의 감소 촉진에 관여하는 작용 기전에 대한 추가 연구가 필요하다.
C57BL/6 마우스에서 자외선 B(UV-B) 조사에 의한 표피 멜라닌세포의 변화에 대한 헤모힘의 효과를 관찰하였다. 마우스에 UV-B를 매일 $80\;mJ{\cdot}cm^{-2}$ ($0.5\;mW{\cdot}sec^{-1}$)씩 7일간 조사하고 헤모힘을 UV 조사 전 또는 조사 후에 복강내주사, 경구투여 또는 피부에 도포하여 멜라닌세포 형성 억제효과 및 형성된 멜라닌세포에 대한 미백효과를 dihydroxyphenylalanine (DOPA) 염색으로 관찰하였다. 마우스의 귀등쪽 표피를 분리하여 관찰한바, 정상대조군에서는 $mm^2$당 13~15개의 멜라닌세포가 관찰되었다. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군에서 44.9%, 경구투여군에서는 35.6%의 억제효과를 보였고, 피부도포군에서는 30% 이상의 유의성 있는 억제 효과가 관찰되었다. 형성된 멜라닌세포의 감소 효과 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군의 경우 3주 및 6주에 각각 18.3%, 12.5%의 감소 효과가 관찰되었고, 경구투여군에서는 3주 및 6주에 각각 16.9%, 20.4%의 감소 효과가 관찰되었으며, 피부도포군의 경우 3주에 32.0%, 6주에 31.2%의 감소 효과를 보였다. 이상의 결과는 헤모힘이 UV에 의한 멜라닌세포 형성 억제제 및 미백제로서의 적용 가능성을 제시하였다. 구성 단미생약, 유효성분, 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 세포의 감소 촉진에 관여하는 작용 기전에 대한 추가 연구가 필요하다.
We induced the activation of melanocytes in the epidermis of C57BL/6 mice by ultraviolet-B (UV-B) irradiation, and observed the effect of an herbal preparation (HemoHIM, HH) on the formation, and decrease of UV-B-induced epidermal melanocytes. C57BL/6 mice were irradiated by UV-B $80\;mJ{\cdot}...
We induced the activation of melanocytes in the epidermis of C57BL/6 mice by ultraviolet-B (UV-B) irradiation, and observed the effect of an herbal preparation (HemoHIM, HH) on the formation, and decrease of UV-B-induced epidermal melanocytes. C57BL/6 mice were irradiated by UV-B $80\;mJ{\cdot}cm^{-2}$ ($0.5\;mW{\cdot}sec^{-1}$) daily for 7 days, and HH was intraperitoneally, orally or topically applied pre- or post-irradiation. For the estimation of change of epidermal melanocytes, light microscopic observation with dihydroxyphenylalanine (DOPA) stain was performed. Split epidermal sheets prepared from the ear of untreated mice exhibited 13~15 melanocytes${\cdot}mm^{-2}$, and one week after UV irradiation, the applied areas showed an increased number of strongly DOPA-positive melanocytes with stout dendrites. But intraperitoneal, oral or topical treatment with HH before each irradiation interrupted UV-B-induced pigmentation and resulted in a marked reduction in the number of epidermal melanocytes as compared to the number found in UV-B-irradiated, untreated control skin. The number and size of DOPA-positive epidermal melanocytes were also significantly decreased in intraperitoneally injected or topically applicated group after irradiation with HH at 3rd and 6th weeks after irradiation. The present study suggests the HH as inhibitor of UV-B-induced pigmentation, and depigmenting agent.
We induced the activation of melanocytes in the epidermis of C57BL/6 mice by ultraviolet-B (UV-B) irradiation, and observed the effect of an herbal preparation (HemoHIM, HH) on the formation, and decrease of UV-B-induced epidermal melanocytes. C57BL/6 mice were irradiated by UV-B $80\;mJ{\cdot}cm^{-2}$ ($0.5\;mW{\cdot}sec^{-1}$) daily for 7 days, and HH was intraperitoneally, orally or topically applied pre- or post-irradiation. For the estimation of change of epidermal melanocytes, light microscopic observation with dihydroxyphenylalanine (DOPA) stain was performed. Split epidermal sheets prepared from the ear of untreated mice exhibited 13~15 melanocytes${\cdot}mm^{-2}$, and one week after UV irradiation, the applied areas showed an increased number of strongly DOPA-positive melanocytes with stout dendrites. But intraperitoneal, oral or topical treatment with HH before each irradiation interrupted UV-B-induced pigmentation and resulted in a marked reduction in the number of epidermal melanocytes as compared to the number found in UV-B-irradiated, untreated control skin. The number and size of DOPA-positive epidermal melanocytes were also significantly decreased in intraperitoneally injected or topically applicated group after irradiation with HH at 3rd and 6th weeks after irradiation. The present study suggests the HH as inhibitor of UV-B-induced pigmentation, and depigmenting agent.
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문제 정의
헤모힘의 주요 구성 단미인 당귀, 천궁 및 백작약은 식품공전에 등재되어있는 무독성의 물질이며, 복합제로서도 독성 효과를 전혀 나타내지 않은 물질로 알려져 있다[26]. 따라서 헤모힘은 안전한 천연물 유래, 멜라닌 침착 방지 및 피부미백제로서의 적용 가능성을 제시하였다. 구성 단미생약, 유효성분, 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 세포의 감소 촉진에 관여하는 작용 기전에 대한 추가 연구가 필요하다.
본 연구에서 헤모힘의 UV에 의한 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 멜라닌세포의 감소 효과를 관찰한 바, 복강내 주사, 경구투여 및 피부도포 적용에서 공히 유의성 있는 결과를 나타냈다. UV에 의한 피부손상은 일부 물리적 작용을 포함하나 대부분 활성산소에 의한 DNA 손상이 주원인[21,22]으로 작용한다.
제안 방법
The C57BL/6 mice (n=6) were treated with UV-B (80 mJ/cm2/day for 7 days) and were sacrificed 3 and 6 weeks later.
UV-B 조사는 광원으로 UV-B lamp GL20SE (Sankyo denki, Japan)를 이용하여 제작한 UV-B 조사기를 사용하였으며 광량은 Solarmeter (Solartech Inc., USA)로 측정하였다. 대조군을 제외한 실험군 마우스 양쪽 귀 등쪽면에 매일 오전 UV-B를 80 mJ·cm-2 (0.
37℃ buffered EDTA 용액에서 2시간 동안 침적 처리하고 겹자로 진피부분을 제거하여 표피를 분리한 후 조직을 생리식염수로 세척한 다음 4℃ cacodylate buffered formaldehyde solution에 20분 동안 고정시켰다. 고정 후 0.1% levodihydroxyphenylalanine(L-DOPA)용액에 37℃에서 1시간, 그리고 용액을 바꾸어 2시간을 배양한 후 glycerol로 봉입하여 광학현미경으로 검경하였다. 현미경 100배 시야에서 눈금이 있는 렌즈로, 세포의 분포가 비교적 균일한 귀등쪽 중간부위에서 2시야를 측정하고 mm2 당 세포수로 환산하였다.
대조군을 제외한 실험군 마우스 양쪽 귀 등쪽면에 매일 오전 UV-B를 80 mJ·cm-2 (0.5 mW·sec-1)씩 7일 동안 조사하였다.
독성이 적으면서 전리방사선에 의한 생체 손상 개선 효과가 밝혀져 있는 헤모힘을 적용하여 비전리방사선인 UV에 의한 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 멜라닌세포의 감소 효과를 표피조직에서 직접 관찰 측정하였다. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군에서 44.
동물의 사육은 온도 22±2℃, 상대 습도 50±10%, 조명시간은 12시간(오전 8시 점등, 오후 8시 소등) 및 조도 200~300 lux로 설정된 시설에서 수행하였다.
귀등쪽표피내 멜라닌세포는 불균등분포를 하고 있으며 위쪽 가장자리는 세포수가 많은 반면 기저부로 갈수록 세포수가 감소한다[18,19]. 따라서 본 실험에서는 부위에 따른 세포수의 차이를 감안하여 세포의 분포가 비교적 균일한 귀등쪽 중간 부위에서 수를 측정하였다. 본 실험에서 관찰된 바와 같이 귀등쪽 표피에서의 멜라닌세포 수적 증가는 주로 이미 존재하는 멜라닌세포의 증가에 기인할 것으로 사료되나, C57BL 마우스의 몸통과 같이 정상적으로 활동성 멜라닌세포가 존재하지 않는 부위에서도 UV 조사에 의해 양성 멜라닌세포가 증가한다는 보고[20]가 있어 비활동성 멜라닌세포의 활성화나 전구세포에서의 기원 등도 배제할 수 없으며 이와 같은 복합적 요인에 대한 별도의 연구가 필요할 것으로 생각된다.
헤모힘은 동결건조하여 실험적용 시까지 냉동 저장하였다[8]. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서 실험군의 설정은, 정상대조군(생리식염수 복강내주사), UV 조사대조군(UV + 생리식염수 복강내주사), HH복강내주사군(UV + HH 복강내주사), HH 경구투여군(UV + HH 경구투여) (Table 1), 연고기재 도포 정상대조군(연고기재도포), UV 조사대조군(UV + 연고기재도포), HH 0.075% 연고도포군(UV + HH 0.075% 연고도포) 및 HH 0.2% 연고도포군(UV + HH 0.2% 연고도포) (Table 2)으로 하였다. 복강내주사군의 경우 체중 kg당 25 mg을 최초 UV 조사 전 12 시간에 투여하고 이 후 격일로 동일 용량을 각 UV 조사전 12시간에 투여하였으며, 경구투여군은 체중 kg당 250 mg을 최초 UV조사전 7일부터 부검시까지 매일 투여하였으며, 피부도포군의 경우는 연고기재(1,3-butylene glycol, aloe vera gel, cyclopentasiloxane, decamethylcyclopentasiloxan, dimethicone copoyol crosspolymer, glycerin, imidazolidinyl urea, methyl parahydroxybenzoate, sodium meta bisulfate가 주성분이며 각종 화장품 제조시 기재로 사용되고 있고, 한국콜마 주식회사에서 제공받았음)에 헤모힘을 0.
멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 최종 UV 조사 후 24시간에, 형성된 멜라닌세포의 감소 효과 실험에서는 최종 UV 조사 후 3주 및 6주에 마우스를 경부탈구 방법으로 희생시켰다. 마우스의 양쪽 귀를 등쪽과 배쪽 피부로 분리한 후 등쪽의 표피쪽이 테이프의 접착면을 향하도록 투명 테이프에 표피를 부착시켰다.
2% 연고도포) (Table 3)으로 하였다. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서와 같은 용량을 적용하였으며 복강내주사군의 경우 최종 UV 조사 후 30분, 48시간, 96시간 및 144시간에 각각 투여하였고, 경구투여 군은 최종 UV 조사 후부터 부검 시까지 투여하였으며, 피부도포는 최종 UV 조사 후 15분 및 매일 1회씩 부검 시까지 도포하였다.
2% 연고도포) (Table 2)으로 하였다. 복강내주사군의 경우 체중 kg당 25 mg을 최초 UV 조사 전 12 시간에 투여하고 이 후 격일로 동일 용량을 각 UV 조사전 12시간에 투여하였으며, 경구투여군은 체중 kg당 250 mg을 최초 UV조사전 7일부터 부검시까지 매일 투여하였으며, 피부도포군의 경우는 연고기재(1,3-butylene glycol, aloe vera gel, cyclopentasiloxane, decamethylcyclopentasiloxan, dimethicone copoyol crosspolymer, glycerin, imidazolidinyl urea, methyl parahydroxybenzoate, sodium meta bisulfate가 주성분이며 각종 화장품 제조시 기재로 사용되고 있고, 한국콜마 주식회사에서 제공받았음)에 헤모힘을 0.075% 및 0.2%로 혼합 제조하여 최초 UV 조사 전 24시간과 15분에 마우스 귀등쪽 피부에 도포하고 이 후 매일 UV 조사 전 15분에 반복 도포하였다. 도포는 귀 등쪽 전면에 얇은 막을 형성할 정도로 시행하였으며 여분의 연고는 가능한 제거하였다.
본 연구에서는 비교적 독성이 적으면서 전리방사선(ionizing radiation)에 의한 생체 손상 개선 효과[8]가 밝혀져 있으며, 식품의약품안전청에 ‘건강식품의 원료 또는 성분’으로 등재 인정된, 헤모힘을 적용하여 비전리방사선인 UV에 의한 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 멜라닌세포의 감소 효과를 표피조직에서 직접 관찰 측정하였다.
일차 생약복합추출물의 일부를 취하여 4배 부피의 100% 에탄올 주정을 첨가하고 25℃ 이하에서 16시간 정치한 후, 원심분리하여 침전된 조다당 분획을 수거하였다. 수거한 조다당 분획의 일부를 이에 해당하는 일차 생약복합추출물에 첨가하여 헤모힘을 제조하였다. 헤모힘은 동결건조하여 실험적용 시까지 냉동 저장하였다[8].
동물의 사육은 온도 22±2℃, 상대 습도 50±10%, 조명시간은 12시간(오전 8시 점등, 오후 8시 소등) 및 조도 200~300 lux로 설정된 시설에서 수행하였다. 순화기간을 거쳐 polycarbonate 사육상자에 3마리씩 수용하였고 실험동물용 고형사료(삼양사료, 원주, 한국)와 정수장치를 통과한 수도수를 자유롭게 섭취하도록 하였다. 동물실험은 전남대학교 동물실험윤리위원회의 승인 및 관리 하에 수행되었다.
시험에 사용한 시료(헤모힘)는 한국원자력연구원의 기술제공에 따라 제조된 완성시료를 (주)선바이오텍(충남 연기군, 한국)에서 공급 받아 사용하였다. 제조과정을 간단히 설명하면, 당귀(Danggui, Angelica gigas Nakai)의 뿌리, 천궁(Chuanxiong, Cnidium offinale Makino)의 근경, 백작약(Baishaoyao, Paeonia japonica Miyabe)의 뿌리를 동일한 무게비율로 혼합한 후, 혼합 생약재 100 g당 증류수 1,000 ml을 가하고 4시간 열탕 추출하였다. 추출물의 고형분을 제거하고 감압농축하여 일차 생약복합추출물을 얻었다.
제조과정을 간단히 설명하면, 당귀(Danggui, Angelica gigas Nakai)의 뿌리, 천궁(Chuanxiong, Cnidium offinale Makino)의 근경, 백작약(Baishaoyao, Paeonia japonica Miyabe)의 뿌리를 동일한 무게비율로 혼합한 후, 혼합 생약재 100 g당 증류수 1,000 ml을 가하고 4시간 열탕 추출하였다. 추출물의 고형분을 제거하고 감압농축하여 일차 생약복합추출물을 얻었다. 일차 생약복합추출물의 일부를 취하여 4배 부피의 100% 에탄올 주정을 첨가하고 25℃ 이하에서 16시간 정치한 후, 원심분리하여 침전된 조다당 분획을 수거하였다.
도포는 귀 등쪽 전면에 얇은 막을 형성할 정도로 시행하였으며 여분의 연고는 가능한 제거하였다. 형성된 멜라닌세포의 감소 효과 실험에서 실험군의 설정은 정상대조군(무처치 대조군), UV 조사대조군(UV 단독 조사), HH복강내 주사군(UV + HH 복강내주사), HH 경구투여군(UV + HH 경구투여) 및 HH 0.2% 연고도포군(UV + HH 0.2% 연고도포) (Table 3)으로 하였다. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서와 같은 용량을 적용하였으며 복강내주사군의 경우 최종 UV 조사 후 30분, 48시간, 96시간 및 144시간에 각각 투여하였고, 경구투여 군은 최종 UV 조사 후부터 부검 시까지 투여하였으며, 피부도포는 최종 UV 조사 후 15분 및 매일 1회씩 부검 시까지 도포하였다.
대상 데이터
The C57BL/6 mice (n=6) were treated with UV-B (80 mJ/cm2/day for 7 days) and were killed 24 hours after last irradiation.
The C57BL/6 mice (n=6) were treated with UV-B (80 mJ/cm2/day for 7 days) and were sacrificed at 24 hours after last irradiation.
성숙(7~8주령) C57BL/6N 마우스(오리엔트바이오, 성남, 한국)를 사용하였고, 각 실험에서 6마리를 하나의 실험군으로 적용하였다. 동물의 사육은 온도 22±2℃, 상대 습도 50±10%, 조명시간은 12시간(오전 8시 점등, 오후 8시 소등) 및 조도 200~300 lux로 설정된 시설에서 수행하였다.
시험에 사용한 시료(헤모힘)는 한국원자력연구원의 기술제공에 따라 제조된 완성시료를 (주)선바이오텍(충남 연기군, 한국)에서 공급 받아 사용하였다. 제조과정을 간단히 설명하면, 당귀(Danggui, Angelica gigas Nakai)의 뿌리, 천궁(Chuanxiong, Cnidium offinale Makino)의 근경, 백작약(Baishaoyao, Paeonia japonica Miyabe)의 뿌리를 동일한 무게비율로 혼합한 후, 혼합 생약재 100 g당 증류수 1,000 ml을 가하고 4시간 열탕 추출하였다.
데이터처리
실험결과는 평균 ± 표준편차로 표시하였으며 모든 성적의 분석은 Graph PAD In Plot program (GPIP, Graph PAD software, USA)을 사용하였고 Student's t-test를 이용하여 통계적 분석을 하였다.
성능/효과
1). 멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군에서 44.9%, 경구투여군에서는 35.6%의 억제효과를 보였고(Table 1), 피부도포군에서는 30% 이상의 유의성 있는 억제 효과가 관찰되었으나 도포제내 헤모힘의 용량에는 비례하지 않았다(Table 2).형성된 멜라닌 세포의 감소 효과 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군의 경우 3주 및 6주에 각각 18.
독성이 적으면서 전리방사선에 의한 생체 손상 개선 효과가 밝혀져 있는 헤모힘을 적용하여 비전리방사선인 UV에 의한 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 멜라닌세포의 감소 효과를 표피조직에서 직접 관찰 측정하였다. 멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군에서 44.9%, 경구투여군에서는 35.6%의 억제효과를 보였고, 피부도포군에서는 30% 이상의 유의성 있는 억제 효과가 관찰되었다. 형성된 멜라닌세포의 감소 효과 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군의 경우 3주 및 6주에 각각 18.
정상대조군에서 표피 mm2 당 약 13~15개의 DOPA 양성 멜라닌세포가 관찰되었으며, 자외선조사에 따라 멜라닌세포의 세포체가 커지고 가지돌기의 수와 길이도 증가하였으며 분지의 정도도 잘 발달된 양상을 보였다(Fig. 1). 멜라닌세포 형성 억제 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군에서 44.
6%의 억제효과를 보였고(Table 1), 피부도포군에서는 30% 이상의 유의성 있는 억제 효과가 관찰되었으나 도포제내 헤모힘의 용량에는 비례하지 않았다(Table 2).형성된 멜라닌 세포의 감소 효과 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군의 경우 3주 및 6주에 각각 18.3%, 12.5%의 감소 효과가 관찰되었고, 경구투여군에서는 3주 및 6주에 각각 16.9%, 20.4%의 감소 효과가 관찰되었으며, 피부도포군의 경우 3주에 32.0%, 6주에 31.2%의 감소 효과를 보였다(Table 3). 헤모힘 투여군에서는 세포의 가지돌기 형성도 미약하였다.
6%의 억제효과를 보였고, 피부도포군에서는 30% 이상의 유의성 있는 억제 효과가 관찰되었다. 형성된 멜라닌세포의 감소 효과 실험에서는 평균치를 기준으로 복강내주사군의 경우 3주 및 6주에 각각 18.3%, 12.5%의 감소 효과가 관찰되었고, 경구투여군에서는 3주 및 6주에 각각 16.9%, 20.4%의 감소 효과가 관찰되었으며, 피부도포군의 경우 3주에 32.0%, 6주에 31.2%의 감소 효과를 보였다. 헤모힘의 주요 구성 단미인 당귀, 천궁 및 백작약은 식품공전에 등재되어있는 무독성의 물질이며, 복합제로서도 독성 효과를 전혀 나타내지 않은 물질로 알려져 있어, 헤모힘은 안전한 천연물 유래, 멜라닌 침착 방지 및 피부미백제로서의 적용 가능성을 제시하였다.
후속연구
따라서 헤모힘은 안전한 천연물 유래, 멜라닌 침착 방지 및 피부미백제로서의 적용 가능성을 제시하였다. 구성 단미생약, 유효성분, 멜라닌세포 형성 억제 및 형성된 세포의 감소 촉진에 관여하는 작용 기전에 대한 추가 연구가 필요하다.
그러나 최근 멜라닌 생성이 tyrosinase에 의한 산화반응 뿐만 아니라, 여러 가지 복잡한 요인에 의해 진행된다는 것이 밝혀졌고, 또한 시험관내 시험에서의 tyrosinase활성 억제물질이 melanoma cell line에서는 활성이 전혀 나타나지 않는 등의 문제로 멜라닌 생성을 종합적으로 억제하는 물질의 개발이 요구되고 있다[7]. 따라서 피부의 멜라닌 생성을 억제하거나 미백 효과의 확인은 종래에 주로 이용되던 tyrosinase 활성 억제 확인법과 함께 상피조직에서의 멜라닌세포의 수적변화를 현미경 표본에서 형태학적으로 직접 관찰하는 실험이 더욱 정확하리라 생각된다.
따라서 본 실험에서는 부위에 따른 세포수의 차이를 감안하여 세포의 분포가 비교적 균일한 귀등쪽 중간 부위에서 수를 측정하였다. 본 실험에서 관찰된 바와 같이 귀등쪽 표피에서의 멜라닌세포 수적 증가는 주로 이미 존재하는 멜라닌세포의 증가에 기인할 것으로 사료되나, C57BL 마우스의 몸통과 같이 정상적으로 활동성 멜라닌세포가 존재하지 않는 부위에서도 UV 조사에 의해 양성 멜라닌세포가 증가한다는 보고[20]가 있어 비활동성 멜라닌세포의 활성화나 전구세포에서의 기원 등도 배제할 수 없으며 이와 같은 복합적 요인에 대한 별도의 연구가 필요할 것으로 생각된다.
이러한 헤모힘의 효과가 직접 또는 간접적으로 UV에 의한 멜라닌세포 변화에도 관여한 것으로 사료된다. 피부도포의 경우 도포제내 헤모힘의 용량에 따른 차이가 관찰되지 않은 것은 피부를 통한 흡수의 차이가 용량의존적이지 않을 가능성과 도포제내의 헤모힘의 용량이 효과용량 초과 범위에 해당될 가능성이 있으며 이에 대한 추후연구가 필요하다고 사료된다. 헤모힘의 주요 구성 단미인 당귀, 천궁 및 백작약은 식품공전에 등재되어있는 무독성의 물질이며, 복합제로서도 독성 효과를 전혀 나타내지 않은 물질로 알려져 있다[26].
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
멜라닌의 사용처는?
다양한 피부보호제 및 미백제가 개발되어 사용되고 있으나, 이에 수반된 문제점도 보고되고 있다. 미백제로서, 4-hydroxyanisole 및 hydroquinone 등은 기미, 주근깨, 반점 및 임신기 hyperpigmentation과 같은 과잉 색소증 치료에 국소적용 되고 있다.
멜라닌이란?
멜라닌은 표피의 기저층에 존재하는 멜라닌세포에서 아미노산의 일종인 tyrosine이 tyrosinase를 주효소로 하는 효소의 작용으로 합성되어 멜라노좀 과립을 형성하고, 생성된 멜라닌은 각질형성세포로 이동되어 자외선 등에 의한 피부의 노화나 일광각화증을 억제하여 피부를 보호하는 긍정적인 기능을 가지고 있는 반면에, 과잉생산에 의한 피부의 색소침착 및 멜라닌 전구물질들에 의한 독성으로 세포사멸을 촉진하는 부정적인 기능을 동시에 가지고 있다[1,2].
4-hydroxyanisole 및 hydroquinone 등은 어디에 적용되는가?
다양한 피부보호제 및 미백제가 개발되어 사용되고 있으나, 이에 수반된 문제점도 보고되고 있다. 미백제로서, 4-hydroxyanisole 및 hydroquinone 등은 기미, 주근깨, 반점 및 임신기 hyperpigmentation과 같은 과잉 색소증 치료에 국소적용 되고 있다. 그러나 이들 화합물은 강력한 멜라닌 생성 저해 활성을 보이지만 색소 세포의 변성 또는 치사를 일으키고 세포 본래의 기능을 손상시키는 등의 부작용을 나타낸다.
참고문헌 (26)
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