$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

트레드밀 트레이닝이 비만 쥐의 neurotrophins와 초기발현 단백질에 미치는 영향
The Effects of Treadmill Training on Neurotrophins and Immediately Early Protein in Obese Rats 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.21 no.7 = no.135, 2011년, pp.985 - 991  

우진희 (동아대학교 체육학과) ,  신기옥 (동아대학교 체육학과) ,  여남회 (동아대학교 체육학과) ,  박소영 (동아대학교 약리학 교실) ,  강성훈 (동아대학교 체육학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구는 고지방식이로 인한 비만으로 불균형된 지질구성과 산화적 손상이 신경세포형성과 초기발현단백질에 미치는 생물학적 영향을 알아보고, 규칙적인 운동의 효과를 알아보기 위하여 실시하였다. 실험동물은 4주령 SD rat 수컷 30마리를 1주간의 적응기간을 둔 뒤, 15주간 고지방식이를 통해 비만으로 유도하였으며, high fat diet sedentary (HDS, n=15)와 high fat diet and training (HDT, n=15)으로 분류하여 연구하였다. 운동강도는 1~4주는 저강도, 5~8주는 중강도로 주5회 실시하였다. 8주 트레이닝 후 혈청지질, 8-OHdG, MDA, neurotrophic factor, 그리고 IEG를 분석하였다. 그 결과 TC와 TG에서 HDS와 HDT 사이 유의한 차이가 나타났다(p<0.05). 8-OHdG에서 HDT는 트레드밀 트레이닝 후에 HDS보다 낮게 나타났다(p<0.05). 해마에서 c-jun, BDNF 그리고 간에서 MDA의 단백질 발현은 HDT가 트레드밀 트레이닝 후 HDS보다 높게 나타났다(p<0.05). 결론적으로 8주간 트레드밀 훈련은 고지방식이 비만 유도 쥐의 혈청지질 성분의 불균형을 개선시키고, 조직과 혈청의 산화적 손상과 DNA 손상을 완화시켜 주어, 비만으로 인한 합병증 예방에 도움을 줄 수 있을 것으로 사료된다. 또한 NT의 발현을 증가시킴으로써 손상된 뇌기능과 신경세포의 생성 기전 활동에 긍정적 영향을 나타냄으로써 공간적 학습기능의 향상을 가져온 것으로 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

The purpose of this study was to investigate the biological effect of obesity-induced oxidative damage on neurogenesis and early protein expression. Obesity was induced I thirty 4-week old male Sprague-Dawley rats through a high fat diet for 15 weeks. After one week of environmental adaptation, the ...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 또한 비만으로 인한 산화적 스트레스 증가가 규칙적인 운동으로 산화적 스트레스 감소를 통하여 뇌 조직의 IEGs (c-fos, c-jun)에 어떠한 영향을 주는지 규명하는 연구가 절실히 필요하다. 따라서 본 연구는 고지방식이 비만유도 rat을 대상으로 조직의 산화적 손상이 neurogenesis 과정에 어떠한 영향을 미치는지 알아보고, 규칙적인 유산소성 운동으로 인한 개선 효과를 분자 생물학적 차원에서 규명하고자 한다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
NT에 의한 신경 세포 성장 기전으로 IEG를 어떻게 발현시키는가? 또한, 신생 뉴런과 시냅스의 성장과 분화를 도와주어 학습, 기억, 그리고 사고력 활성을 위한 역할을 수행하는 것으로 운동으로 neurogenesis를 자극하고 뇌손상을 예방하며, 학습과 정신적 기능강화[6]는 물론, 세포 성장의 주요한 조절자로서 긍정적인 역할을 수행하는 것으로 알려져 있다[36]. NT에 의한 신경 세포성장 기전을 살펴보면, 4개의 NT (NGF, BDNF, NT-3, NT-4)는 그들과 상응하는 Trk-A, Trk-B와 Trk-C에 의해서 발현되며[12,34], MEK1/2, SEK와 MKK3/6에 의하여 MAPK가 활성화되고[28], 이러한 MAPK는 신호 기전의 활성으로 초기발현 유전자(immediately early gene, IEG)를 발현 시킨다[26]. 초기발현 유전자는 세포외부의 자극에 가장 먼저 반응하는 전사(transcription)이며, c-fos, fosB, fosBdel, fra-2, c-jun, junB, junD 등으로 분류된다[16].
신경세포의 손상과 조절을 담당하는 neurotrophin로 어떤 것이 있는가? 신경세포의 손상과 조절을 담당하는 neurotrophin (NT)는 nerve growth factor (NGF), brain-derived neurotrophic factor (BDNF), NT-3, 그리고 NT-4로 분류된다[11]. NGF는 뉴런의 목표에 의해 분비되는 단백질이며, 교감 및 감각뉴런 유지와 더불어 세포성장을 포함하는 생물학적 활동에 중요한 역할을 담당한다[31].
규칙적인 운동이 초기발현 유전자 발현과 관련 세포 성장에 긍정적인 영향을 준다는 것을 알 수 있는 연구 사례는? 운동과 관련된 연구를 살펴보면, Toldy 등[35]은 쥐를 대상으로 6주간의 수영 운동 후 c-jun 발현이 활성화되었다고 하였으며, Iemitsu 등[13]은 48시간의 트레드밀 운동이 그렇지 않은 그룹보다 c-jun과 c-fos의 단백질 발현이 증가함을 보고하였다. 또한 Sim 등[30]은 알코올을 통한 산화스트레스를 증가시킨 결과 c-fos의 발현이 감소하며, 가벼운 강도와 적정 강도의 운동 이후 c-fos발현이 증가함을 보고하여 규칙적인 운동이 유기체의 세포 성장에 긍정적인 영향을 준다고 하였다.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (39)

  1. Angel, P. and M. Karin. 1991. The role of Jun, Fos and the AP-1 complex in cell-proliferation and transformation. Biochim. Biophys. Acta. 1072, 129-157. 

  2. Bogani, P., C. Galli, M. Villa, and F. Visioli. 2007. Postprandial anti-inflammatory and antioxidant effects of extra virgin olive oil. Atherosclerosis 190, 181-186. 

  3. Bullo, M., M. R. Peeraully, P. Trayhum, J. Folch, and J. Salas-Salvado. 2007. Circulating nerve growth factor levels in relation to obesity and the metabolic syndrome in women. Eur. J. Endocrinol. 157, 303-310. 

  4. Chae, C. H., S. L. Jung, S. H. An, B. Y. Park, S. W. Wang, I. H. Cho, J. Y. Cho, and H. T. Kim. 2009. Treadmill exercise improves cognitive function and facilitates nerve growth factor signaling by activating mitogen-activated protein kinase/extracellular signal-regulated kinase 1/2 in the streptozotocin-induced diabetic rat hippocampus. Neuroscience 164, 1665-1673. 

  5. Chen, L., L. Liu, Y. Luo, and S. Huang. 2008. MAPK and mTOR pathways are involved in cadmium-induced neuronal apoptosis. J. Neurochem. 105, 251-261. 

  6. Cotman, C. W. and C. Engesser-Cesar. 2002. Exercise enhances and protects brain function. Exerc. Sport. Sci. Rev. 30, 75-79. 

  7. Derijard, B., M. Hibi, I. H. Wu, T. Barrett, B. Su, T. Deng, M. Karin, and R. J. Davis. 1994. JNK1: a protein kinase stimulated by UV light and Ha-Ras thst bind and phosphorylates the c-jun activation domain. Cell 76, 1025-1037. 

  8. Furukawa, S., T. Fujita, M. Shimabukuro, M. Iwaki, Y. Yamada, Y. Nakajima, O. Nakayama, M. Makishima, M. Matsuda, and I. Shimomura. 2004. Increased oxidative stress in obesity and its impact on metabolic syndrome. J. Clin. Invest. 114, 1752-1761. 

  9. Hebben, N., S. Corkin, H. Eichenbaum, and K. Shedlack. 1985. Diminished ability to interpret and report internal states after bilateral medial temporal resection: case H.M. Behav. Neurosci. 99, 1031-1039. 

  10. Heled, Y., Y. Shapiro, Y. Shani, D. S. Moran, L. Langzam, L. Braiman, S. R. Sampson, and J. Meyerovitch. 2002. Physical exercise prevents the development of type 2 diabetes mellitus in Psammomys obesus. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 282, E370-E375. 

  11. Hempstead, B. L. 2006. Dissecting the diverse actions of proand mature neurotrophins. Curr. Alzheimer. Res. 3, 19-24. 

  12. Huang, E. J. and L. F. Reichardt. 2003. Trk receptors: roles in neuronal signal transduction. Annu. Rev. Biochem. 72, 609-642. 

  13. Iemitsu, M., S. Maeda, S. Jesmin, T. Otsuki, Y. Kasuya, and T. Miyauchi. 2006. Activation pattern of MAPK signaling in the hearts of trained and untrained rats following a single bout of exercise. J. Appl. Physiol. 101, 151-163. 

  14. Kakar, M., H. Nystrom, L. R. Aarup, T. J. Nottrup, and D. R. Olsen. 2005. Respiratory motion prediction by using the adaptive neuro fuzzy inference system (ANFIS). Phys. Med. Biol. 50, 4721-4728. 

  15. Kanoski, S. E., R. L. Meisel, A. J. Mullins, and T. L. Davidson. 2007. The effects of energy-rich diets on discrimination reversal learning and on BDNF in the hippocampus and prefrontal cortex of the rat. Behav. Brain Res. 182, 57-66. 

  16. Kornhauser, J. M., D. E. Nelson, K. E. Mayo, and J. S. Takahashi. 1992. Regulation of jun-B messenger RNA and AP-1 activity by light and a circadian clock. Science 255, 1581-1584. 

  17. Levinger, I., C. Goodman, V. Matthews, D. L. Hare, G. Jerums, A. Garnham, and S. Selig. 2008. BDNF, metabolic risk factors, and resistance training in middle-aged individuals. Med. Sci. Sports Exerc. 40, 535-541. 

  18. Molteni, R., R. J. Barnard, Z. Yinq, C. K. Roberts, and F. Gomez-Pinilla. 2002. A high-fat, refined sugar diet reduces hippocampal brain-derived neurotrophic factor, neuronal plasticity, and learning. Neuroscience 112, 803-814. 

  19. Neeper, S. A., F. Gomez-Pinilla, J. Choi, and C. W. Cotman 1995. Exercise and brain neurotrophins. Nature 373, 109. 

  20. Nisoli, E., C. Tonello, M. Benarese, P. Liberini, and M. O. Carruba. 1996. Expression of nerve growth factor in brown adipose tissue: implications for thermogenesis and obesity. Endocrinology 137, 495-503. 

  21. Oladehin, A. and R. S. Waters. 2001. Location and distribution of Fos protein expression in rat hippocampus followting acute moderate aerobic exercise. Exp. Brain. Res. 137, 26-35. 

  22. Radak, Z., T. Kaneko, S. Tahara, H. Nakamoto, J. Pucsok, M. Sasvari, C. Nyakas, and S. Goto. 2001. Regular exercise imporves cognitive function and decreases oxidative damage in rat brain. Neurochem. Int. 38, 17-23. 

  23. Radak, Z., A.W. Taylor, H. Ohno, and S. Goto. 2001b. Adaptation to exercise induced oxidative stress: from muscle to brain. Exerc. Immunol. Rev. 7, 90-107. 

  24. Radak, Z., A. Toldy, Z. Szabo, S. Siamilis, C. Nyakas, G. Silye, J. Jakus, and S. Goto. 2006. The effects of training and detraining on memory, neurotrophins and oxidative stress markers in rat brain. Neurochem. Int. 49, 387-392. 

  25. Rajala, M. W. and P. E. Scherer. 2003. Minireview: The adipocyte- at the crossroads of energy homeostasis, inflammation, and atherosclerosis. Endocrinology 144, 3765-3773. 

  26. Ruwhof, C. and A. van der Laarse. 2000. Mechanical stress-induced cardiac hypertrophy: mechanisms and signal transduction pathways. Cardiovasc. Res. 47, 23-37. 

  27. Schulz, K. H., S. M. Gold, J. Witte, K. Bartsch, U. E. Lang, R. Hellweg, R. Reer, K. M. Braumann, and C. Heesen. 2004. Impact of aerobic training on immune-endocrine parameters, neurotrophic factors, quality of life and coordinative function in multiple sclerosis. J. Neurol. Sci. 225, 11-18. 

  28. Seger, R. and E. G. Krebs. 1995. The MAPK signaling cascade. FASEB. J. 9, 726-735. 

  29. Siamilis, S., J. Jakus, C. Nyakas, A. Costa, B. Mihalik, A. Falus, and Z. Radak. 2009. The effect of exercise and oxidant- antioxidant intervention on the levels of neurotrophins and free radicals in spinal cord of rats. Spinal Cord 47, 453-457. 

  30. Sim, K. J., H. Kim, M. S. Shin, H. K. Chang, M. C. Shin, I. G. Ko, K. J. Kim, T. S. Kim, B. K. Kim, Y. T. Rhim, S. Kim, H. Y. Park, J. W. Yi, S. J. Lee, and C. J. Kim 2008. Effect of postnatal treadmill exercise on c-Fos expression in the hippocampus of rat pups born from the alcohol-intoxicated mothers. Brain Dev. 30, 118-125. 

  31. Steers, W. D. and J. B. Tuttle. 2006 Mechanisms of Disease: the role of nerve growth factor in the pathophysiology of bladder disorders. Nat. Clin. Pract. Urol. 3, 101-110. 

  32. Suzuki, K., Y. Ito, J. Ochiai, Y. Kusuhara, S. Hashimoto, S. Tokudome, M. Kojima, K. Wakai, H. Toyoshima, K. Tamakoshi, Y. Watanabe, N. Hayakawa, M. Maruta, M. Watanabe, K. Kato, Y. Ohta, and A. Tamakoshi. 2003. Relationship between obesity and serum markers of oxidative stress and inflammation in Japanese. Asian Pac. J. Cancer Prev. 4, 259-266. 

  33. Sweatt, J. D. 2004. Mitogen-activated protein kinases in synaptic plasticity and memory. Curr. Opin. Neurobiol. 14, 311-317. 

  34. Thoenen, H. 2000. Neurotrophins and activity-dependent plasticity. Prog. Brain Res. 128, 183-191. 

  35. Toldy, A., K. Stadler, M. Sasvari, J. Jakus, K. J. Jung, H. Y. Chung, I. Berkes, C. Nyakas, and Z. Radak. 2005. The effect of exercise and nettle supplementation on oxidative stress markers in the rat brain. Brain Res. Bull. 65, 487-493. 

  36. Wirth, M. J., A. Brun, J. Grabert, S. Patz, and P. Wahle. 2003. Accelerated dendritic development of rat cortical pyramidal cells and interneurons after biolistic transfection with BDNF and NT4/5. Development 130, 5827-5838. 

  37. Yanagita, S., S. Amemiya, S. Suzuki, and I. Kita. 2007. Effects of spontaneous and forced running on activation of hypothalamic corticotropin-releasing hormone neurons in rats. Life Sci. 80, 356-363. 

  38. Yu, Y., Q. Wang, and X. F. Huang. 2009. Energy-restricted pair-feeding normalizes low levels of brain-derived neurotrophic factor/tyrosine kinase B mRNA expression in the hippocampus, but not ventromedial hypothalamic nucleus, in diet-induced obese mice. Neuroscience 160, 295-306. 

  39. Zheng, H., Y. F. Li, K. G. Cornish, I. H. Zucker, and K. P. Patel. 2005. Exercise training improves endogenous nitric oxide mechanisms within the paraventricular nucleus in rats with heart failure. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 288, 2332-2341. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로