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납과 아연이 말똥성게(Hemicentrotus pulcherrimus)의 수정 및 배아 발생에 미치는 영향
Effects of Lead and Zinc on the Fertilization and Embryo Development of the Sea Urchin (Hemicentrotus pulcherrimus) 원문보기

환경생물 = Korean journal of environmental biology, v.30 no.2, 2012년, pp.128 - 135  

황운기 (국립수산과학원 서해수산연구소 해양생태위해평가센터) ,  허승 (국립수산과학원 서해수산연구소 해양생태위해평가센터) ,  박종수 (국립수산과학원 서해수산연구소 해양생태위해평가센터) ,  강한승 (국립수산과학원 서해수산연구소 해양생태위해평가센터)

초록
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본 연구는 말똥성게(Hemicentrotus pulcherrimus)의 생식세포 및 pluteus 유생을 이용하여 중금속인 납(lead, Pb)과 아연(zinc, Zn)의 독성을 조사였다. H. pulcherrimus 배우자 및 배아에 미치는 Pb과 Zn의 독성은 각각 31, 63, 125, 250, 500 ppb 및 16, 31, 63, 125, 250 ppb의 농도에서 조사하였다. 0.5 M KCl 용액을 이용하여 방란 및 방정을 유도하였고, 수정률 및 정상 배아발생률의 조사는 수정 후 각각 10분 및 64시간째 관찰하여 시행하였다. Pb 노출 시 수정률은 대조군과 비교하여 유의적인 변화가 없었다. 그러나 정상 배아발생률은 농도가 높을수록 농도의존적으로 유의적인 감소를 보였다. Zn을 노출시켰을 경우 수정률과 정상 배아발생률은 농도가 높을수록 농도의존적인 유의적 감소를 나타냈다. H. pulcherrimus의 정상 배아 발생에 대한 독성치는 각각 Pb (반수 영향농도 ($EC_{50}$) 45.13 ppb, 95% Cl 40.12~50.05 ppb), Zn (반수영향농도 ($EC_{50}$) 19.82 ppb, 95% Cl 18.26~21.31 ppb)로 나타났다. 또한 Pb과 Zn의 무영향농도(NOEC)는 각각 <31.25 ppb 및 <15.63 ppb로 나타났고, 최소영향농도(LOEC)는 31.25 및 15.63 ppb로 나타났다. 본 연구 결과, H. pulcherrimus의 초기 배아발생 과정은 Pb과 Zn 등의 중금속에 높은 민감성을 보인다. 따라서 H. pulcherrimus는 해양생태계 위해 평가를 위한 시험생물로서 사용이 가능하다고 사료된다.

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The individual toxicity of lead (Pb) and zinc (Zn) has been investigated by using the sea urchin (Hemicentrotus pulcherrimus) germ cell and pluteus-larvae. The gametotoxic and embryotoxic effects of Pb and Zn on H. pulcherrimus were each investigated at 31, 63, 125, 250, 500 ppb and 16, 31, 63, 125,...

주제어

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문제 정의

  • 본 연구는 말똥성게(Hemicentrotus pulcherrimus)의 생식세포 및 pluteus 유생을 이용하여 중금속인 납(lead, Pb) 과 아연 (zinc, Zn)의 독성을 조사였다. H.
  • 본 연구는 유용 수산생물로써 조간대 암반 지역에 서식하는 말똥성게(Hemicentrotus pulcherrimus)의 수정률 및 정상 배아 발생률을 이용하여 납과 아연이 생태계에 위해성을 나타내는 농도의 평가 및 시험생물로서의 가치를 평가하고자 한다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
인체로의 납의 노출 경로는 어떻게 되는가? 2009). 인체에의 납의 노출 경로는 산업체 근로자의 경우 호흡기계로 노출되나 일반적으로는 오염된 물과 토양, 농축산물 및 식품 등을 통한 소화기계가 주된 경로이다 (Park et al. 2006).
납의 장기간 노출시 발생하는 문제점은 무엇인가? 인체의 물질대사에 불필요한 유해금속물질(toxic and non-essential metal)인 납 (lead, Pb)은 화학공업의 각종 장치, 총탄, 축전지의 극판, 페인트의 계면활성제, 자동차 윤활유 및 낚시재료 등에 포함되어 있으며, 미량이지만 장기간 노출 시 체내에 축적되어 다양한 종류의 급, 만성 비 발암성 독성(non-carcinogenic toxicity)을 유발한다(Mahaffey et al. 1981; Mahaffey 1983; Park et al.
해양생물 종을 이용하여 해양에 유입되는 독성물질에 대한 생물 반응 연구의 문제점은 무엇인가? 최근 해양생물 종을 이용하여 해양에 유입되는 독성물질에 대한 생물 반응 연구가 활발이 진행되고 있을 뿐만 아니라 연구의 범위도 점차 넓어지고 있다. 그러나 시험생물 및 독성물질 노출시기 등의 방법의 차이로 인해 독성물질에 대한 생체 내 미치는 영향이 다양하게 나타날 수 있는 문제점이 있다. 이러한 문제점을 해결하기 위해서는 시험방법의 표준화 및 유용 시험생물 종을 선정하는 연구는 매우 중요하다.
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참고문헌 (41)

  1. Ahlf W, H Hollert, H Neumann-Hensel and M Ricking. 2002. A guidance for the assessment and evaluation of sediment quality: A german approach based on ecotoxicological and chemical measurements. J. Soils Sediments 2:37-42. 

  2. Chu KW and KL Chow. 2002. Synergistic toxicity of multiple heavy metals is revealed by a biological assay using a nematode and its transgenic derivative. Aquat. Toxicol. 61:53-64. 

  3. Cui L, Y Takagi, M Wasa, K Sando, J Khan and A Okada. 1999. Nitric oxide synthase inhibitor attenuates intestinal damage induced by zinc deficiency in rats. J. Nutr. 129:792-798. 

  4. Davidson EH, RA Cameron and A Ransick. 1998. Specification of cell fate in the sea urchin embryo: Summary and some proposed mechanisms. Development 125:3269-3290. 

  5. Fathallah S, MN Medhioub, A Medhioub and MM Kraiem. 2010. Toxicity of Hg, Cu and Zn on early developmental stages of the European clam (Ruditapes decussatus) with potential application in marine water quality assessment. Environ. Monit. Assess. 171:661-669. 

  6. Fonia O. 1995. Down-regulation of hepatic peripheral-type benzodiazepine receptors caused by acute lead intoxication. Eur. J. Pharmacol. Environ. Toxicol. Pharmarcol. Section 293:335-339. 

  7. Gopalakrishnan S, H Thilagam and PV Raja. 2007. Toxicity of heavy metals on embryogenesis and larvae of marine sedentary polychaete Hydroides elegans. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 52:171-178. 

  8. Gopalakrishnan S, H Thilagam and PV Raja. 2008. Comparison of heavy metal toxicity in life stages (spermiotoxicity, egg toxicity, embryotoxicity and larval toxicity) of Hydroides elegans. Chemosphere 71:515-528. 

  9. Greenwood PJ. 1983. The influence of an oil dispersant chemserve OSE-DH on the viability of sea urchin gametes. Combined effects of temperature, concentration and exposure time on fertilization. Aqua. Toxicol. 4:15-29. 

  10. Han M, KM Hyun, M Nili, IY Hwang and JK Kim. 2009. Synergistic effects of ionizing radiation and mercury chloride on cell viability in fish hepatoma cells. Korean J. Environ. Biol. 27:140-145. 

  11. Hwang UK, CW Lee, SM Lee, KH An and SY Park. 2008. Effects of salinity and standard toxic metals (Cu, Cd) on fertilization and embryo development rates in the sea urchin (Strongylocentrotus nudus). J. Environ. Sci. 17:775-781. 

  12. Hwang UK, CW Rhee, KS Kim, KH An and SY Park. 2009a. Effects of salinity and standard toxic metals (Cu, Cd) on fertilization and embryo development rates in the sea urchin (Hemicentrotus pulcherrimus). J. Environ. Toxicol. 24:9-16. 

  13. Hwang UK, CW Rhee, KS Kim, HC Kim, KH An and SY Park. 2009b. Toxicity assessment of ocean dumping wastes using fertilization and embryo development rates in the sea urchin (Strongylocentrotus nudus). J. Environ. Toxicol. 24:25-32. 

  14. Hwang UK, HM Ryu, SG Kim, JS Park and KH An. 2010. Toxicity assessment of ocean dumping wastes using fertilization and embryo development rates in the sea urchin (Hemicentrotus pulcherrimus). J. Environ. Toxicol. 25:11-18. 

  15. Hwang UK, HM Ryu, YH Choi, SM Lee and HS Kang. 2011. Effect of cobalt (II) on the fertilization and embryo development of the sea urchin (Hemicentrotus pulcherrimus). Korean J. Environ. Biol. 29:251-257. 

  16. Hwang UK, JS Park, JN Kwon, S Heo, Y Oshima and HS Kang. 2012. Effect of nickel on embryo development and expression of metallothionein gene in the sea urchin (Hemicentrotus pulcherrimus). J. Fac. Agr., Kyushu Univ. 57:145-149. 

  17. King JC, DM Shames and LR Woodhouse. 2000. Zinc homeostasis in humans. J. Nutr. 130:1360-1366. 

  18. Kobayashi N. 1973. Studies on the effects of some agents on fertilized sea urchin eggs, as a part of the bases for marine pollution bioassay I. Publ. Seto. Mar. Biol. Lab. 21:109-114. 

  19. Kobayashi N. 1977. Preliminary experiments with sea urchin pluteus and metamorphosis in marine pollution bioassay. Publ. Seto. Mar. Biol. Lab. 24:9-21. 

  20. Kobayashi N. 1981. Comparative toxicity of various chemicals, oil extracts and oil dispersant to Canadian and Japanese sea urchin eggs. Publ. Seto. Mar. Biol. Lab. 27:76-84. 

  21. Kobayashi N. 1995. Bioassay data marine pollution using echinoderms. Encyclpedia of Environmental Control Technology 9:539-609. 

  22. Lee HH, MJ Cheong, J Huh, SY Song and HO Boo. 2009. Effects of Momordica Charantia L. water extracts on the rat liver and kidney with acute toxicated by lead. Korean J.Microscopy 39:355-363. 

  23. Mahaffey KR, SG Capar, BC Gladen and BA Fowler. 1981. Concurrent exposure to lead, cadmium, and arsenic. Effects on toxicity and tissue metal concentrations in the rat. J. Lab. Clin. Med. 98:463-481. 

  24. Mahaffey KR. 1983. Biotoxicity of lead: influence of various factors. Fed. Proc. 42:1730-1734. 

  25. Martin JM and M Whitfield. 1983. The significance of river input of chemical elements to the ocean. In Trace Metals in Sea Water. New York. pp. 265-296. 

  26. Matthiessen P and AE Brafield. 1973. The effect of dissolved zinc on the gills of the stickleback, Gasterosteus aculeatus. J. Fish boil. 5:607-613. 

  27. Monroy A. 1986. A centennial debt of developmental biology to the sea urchin. Biol. Bull. 171:509-519. 

  28. Nava-Ruiz C, M Mendez-Armenta and C Rios. 2012. Lead neurotoxicity: effects on brain nitric oxide synthase. J. Mol. Histol. Epub ahead of print. 

  29. Pagono G, M Cipollaro, G Corsale, A Esposite, E Ragucciand and GG Giordano. 1985a. Ph-induced changes in mitotic and development patterns in sea urchin embryogenesis, I. Exposure of embryos. Teratogenesis Carcinog Mutagen 5: 101-112. 

  30. Pagono G, M Cipollaro, G Corsale, A Esposite, E Ragucciand and GG Giordano. 1985b. Ph-induced changes in mitotic and development patterns in sea urchin embryogenesis, II. Exposure of sperm. Teratogenesis Carcinog Mutagen 5:113- 121. 

  31. Park SW, KY Kim, DW Kim, SJ Choi, HS Kim, BS Choi, MK Choi and JD Park. 2006. The relation between blood lead concentration, epidemiologic factors and body iron status. J. Environ. Toxicol. 21:153-16 

  32. Phillips DJH and DA Segar. 1986. Use of bioindicators in monitoring conservative contaminants: programme design imparatives. Mar. Pollut. Bull. 17:10. 

  33. Prasad AS. 1996. Zinc deficiency in women, infants and children. J. Am. Coll. Nutr. 15:113-120. 

  34. Skidmore JF. 1970. Respiration and osmoregulation in rainbow trout with gills damaged by zinc sulfate. J. Exp. Biol. 52: 481-494. 

  35. Smith DR, JD Osterloh, S Niemeyer and AR Flegal. 1992. Stable isotope labeling of lead compartments in rats with ultralow lead concentrations. Environ. Res. 57:190-207. 

  36. Sokol RZ. 1989. Reversibility of the toxic effect of lead on the male reproductive axis. Reproductive Toxicology 3:175- 180. 

  37. Viarengo A. 1985. Biochemical effects of trace metals. Mar. Pollut. Bull. 16:153-158. 

  38. Wong MH, KC Luk and KY Choi. 1977. The effects of zinc and copper salts on Cyprinus carpio and Ctenopharyngodon idellus. Acta. Anatomica. 99:450-454. 

  39. Wu FYH and CW Wu. 1987. Zinc in DNA replication and transcription. Ann. Rev. Nutr. 7:251-271. 

  40. Wui IS, JB Lee and SH Yoo. 1992. Bioassay on marine sediment pollution by using sea urchin embryo culture in the south-west inland sea of Korean. J. Environ. Biol. 10:92- 99. 

  41. Yu CM. 1998. A study on the effect of heavy metals on embryos formation of sea urchins. Kor. J. Env. Hlth. Soc. 24:6-10. 

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