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극지유래 저온활성 Chitinase 생산균주의 스크리닝과 Chitinase 유전자 클로닝
Characterization of a Chitinase Gene and Screening of Cold Active Chitinase from Polar Microorganisms 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.48 no.4, 2012년, pp.293 - 297  

박유경 (극지연구소 생명과학연구부) ,  김정은 (극지연구소 생명과학연구부) ,  이형석 (극지연구소 생명과학연구부) ,  김지현 (극지연구소 생명과학연구부) ,  박하주 (극지연구소 생명과학연구부) ,  김덕규 (극지연구소 생명과학연구부) ,  박미라 (극지연구소 생명과학연구부) ,  임정한 (극지연구소 생명과학연구부) ,  김일찬 (극지연구소 생명과학연구부)

초록
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극지의 다양한 환경으로부터 분리되어 극지연구소 PAMC(Polar and Alpine Microbial Collection)에 보관중인 169개 균주들을 0.4% colloidal chitin이 첨가된 ZoBell 고체배지에서 배양하여 chitinase 활성을 균주 27개를 선별하였다. 그 중 PAMC 21693 균주는 저온에서 pNP-$(GlcNAc)_1$를 기질로 사용했을 때 가장 큰 활성을 보였고, $4-37^{\circ}C$의 온도 범위 중 $4^{\circ}C$에서 가장 높은 개체수 증가율을 보였다. PAMC 21693의 chitinase 유전자를 클로닝한 결과 2,619 bp의 ORF를 포함하는 총 2,857 bp의 염기서열을 확보하였다. 대장균에서 chitinase 유전자의 재조합 단백질을 발현한 결과 분자량 96 kDa의 재조합 단백질을 확인할 수 있었다. 본 논문에서는 극지 미생물 유래 저온활성 chitinase들의 생물공학 분야에서의 이용가능성을 제시하였다.

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Of the 169 strains of microorganisms stored in Polar and Alpine Microbial Collection of Korea Polar Research Institute, 27 strains were selected for their chitinase activity on ZoBell plates supplemented with 0.4% colloidal chitin. Among them, PAMC 21693 strain have shown the highest chitinolytic en...

주제어

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문제 정의

  • 본 연구는 극지의 저온 환경에서 적응해 살아가는 미생물들을, 저온 활성의 효소를 탐색하고 다양한 유전자원을 확보함으로써 생물공학 분야에서의 활용가능성을 제시하고자 하였다. 또한 추가적으로 잠재 가능성이 있는 다양한 유전자원을 발굴, 이용하는데 있어서 하나의 가능성을 제시하는데 그 의의가 있다.
  • 대장균에서 chitinase 유전자의 재조합 단백질을 발현한 결과 분자량 96 kDa의 재조합 단백질을 확인할 수 있었다. 본 논문에서는 극지 미생물 유래 저온활성 chitinase들의 생물공학 분야에서의 이용가능성을 제시하였다.
  • 본 연구는 극지의 저온 환경에서 적응해 살아가는 미생물들을, 저온 활성의 효소를 탐색하고 다양한 유전자원을 확보함으로써 생물공학 분야에서의 활용가능성을 제시하고자 하였다. 또한 추가적으로 잠재 가능성이 있는 다양한 유전자원을 발굴, 이용하는데 있어서 하나의 가능성을 제시하는데 그 의의가 있다.
  • , 1999; Antranikian and Egorova, 2007; Huston, 2008). 본 연구에서는 극지연구소에서 보관중인 극지의 다양한 환경(토양, 해양, 담수 등) 유래의 시료에서 분리한 미생물들을 대상으로 다양한 스크리닝 방법을 통해 저온활성을 가진 chitinase 유전자를 생산하는 균주를 탐색하고 생육 적정온도를 확인, iPCR을 이용한 chitinase 유전자의 분리를 통해 유전적 다양성의 확보와 재조합 단백질을 통한 산업적 이용가능성을 제시하고자 하였다.
  • 극지연구소에서는 극지의 토양, 해수, 담수 등의 환경 시료로부터 곰팡이, 지의류, 박테리아 등을 분리하여 극지 생물의 생명 현상 규명과 유용생물 소재 탐색을 목적으로 하는 생물학적 연구를 위한 기반으로 culture collection (PAMC)을 운영해 데이터베이스를 구축· 활용하고 있다. 본 연구의 목적은 유용한 미생물의 탐색과 유용 유전자의 확보를 위해 새로운 chitinase를 생산해내는 균주와 유전자를 확보하고자 하는 것이다. 사용된 균주들은 킹조지섬에 위치한 남극 세종기지 주변의 Barton Peninsula와 Weaver Peninsula 일대, 북극해에 위치한 바렌츠해와 카라해 등지에서 채취된 모래 및 바닷물 시료에서 분리되었다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Chitin 이란 어떤 다당류인가? Chitin은 N-acetylglucosamine (GlcNAc)의 β-1,4 결합의 polymer로 자연계에 풍부하게 존재하는 다당류(polysaccharide) 중 하나이다(Dutta et al., 2004; El-Hamshary et al.
Chitinase는 어떤 형태가 있는가? Chitinase는 N-acetyl-1,4-glucosamine을 가수분해하여 chitooligosaccharide를 생산해내는 endochitinase (EC 3.2.1.14)와 chitin의 비환원성 말단으로부터 GlcNAc와 chitobiose를 생산해내는 exochitinase 등 두가지 형태가 존재하는 것으로 알려져 있다(Chernin et al., 1998; Wang et al.
Chitin은 무엇을 구성하는 성분인가? , 2008). 이러한 chitin은 각종 갑각류의 외피, 곰팡이 등의 세포벽을 구성하는 성분이며, chitinase는 chitin을 가수분해하는 효소로서 박테리아나 곰팡이와 같은 생물에서 많이 발견되고 있는데, chitinase 생산 미생물들은 생물방제제로서의 활용가치가 높아 산업적으로 많이 이용되고 있다(Howard et al., 2003).
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참고문헌 (16)

  1. Antranikian, G. and Egorova, K. 2007. Extremophiles, a unique resource of biocatalysts for industrial biotechnology, pp. 361-406. In Gerday, C. and Glansdorff, N. (eds.), Physiology and biochemistry of extremophiles. ASM Press, Washington, D.C., USA. 

  2. Chernin, L.S., Winson, M.K., Thompson, J.M., Haran, S., Bycroft, B.W., Chet, I., Willians, P., and Stewart, G.S.A.B. 1998. Chitinolytic activity in Chromobacterium violaceum: a substrate analysis and regulation by quorum sensing. J. Bacteriol. 180, 4435-4441. 

  3. Dutta, P.K., Dutta, J., and Tripathi, V.S. 2004. Chitin and chitosan: Chemistry, properties and applications. J. Sci. Ind. Res. 63, 20-31. 

  4. El-Hamshary, O.I.M., Salem, H.H., and Soliman, N.A. 2008. Molecular screening of chitinase gene in Bacillus sp. Appl. Sci. Res. 4, 1118- 1123. 

  5. Howard, M.B., Ekborg, N.A., Weiner, R.M., and Hutcheson, S.W. 2003. Detection and characterization of chitinases and other chitin-modifying enzymes. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 30, 627-635. 

  6. Huston, A.L. 2008. Biotechnological aspects of cold-adapted enzymes, pp. 347-363. In Margesin, R. (ed.), Psychrophiles: from biodiversity to biotechnology. Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, Germany. 

  7. Kaomek, M., Mizuno, K., Fujimura, T., Sriyotha, P., and Cairns, J.R. 2003. Cloning, expression, and characterization of an antifungal chitinase from Leucaena leucocephala de Wit. Biosci. Biotechnol. Biochem. 67, 667-676. 

  8. Nichols, D., Bowman, J., Sanderson, K., Nichols, C.M., Lewis, T., McMeekin, T., and Nichols, P.D. 1999. Developments with Antarctic microorganisms: culture collections, bioactivity screening, taxonomy, PUFA production and cold-adapted enzymes. Curr. Opin. Biotechnol. 10, 240-246. 

  9. Ochman, H., Gerber, A.S., and Hartl, D.L. 1988. Genetic applications of an inverse polymerase chain reaction. Genetics 120, 621-623. 

  10. Park, H.J., Kim, D., Kim, I.H., Lee, C.E., Kim, I.C., Kim, J.Y., Kim, S.J., Lee, H.K., and Yim, J.H. 2009. Characteristics of cold-adaptive endochitinase from Antarctic bacterium Sanguibacter antarcticus KOPRI 21702. Enzyme Microbiol. Technol. 45, 391-396. 

  11. Ramaiah, N., Hill, R.T., Chun, J., Ravel, J., Matte, M.H., Straube, W.L., and Colwell, R.R. 2000. Use of a chiA probe for detection of chitinase genes in bacteria from the Chesapeake Bay. FEMS Microbiol. Ecol. 34, 63-71. 

  12. Seidl, V., Huemer, B., Seiboth, B., and Kubicek, C.P. 2005. A complete survey of Trichoderma chitinases reveals three distinct subgroups of family 18 chitinases. FEBS J. 272, 5923-5939. 

  13. Svitil, A.L. and Kirchman, D.L. 1998. A chitin-binding domain in a marine bacterial chitinase and other microbial chitinases: implications for the ecology and evolution of 1,4-beta-glycanases. Microbiology 144(Pt 5), 1299-1308. 

  14. Techkarnjanaruk, S. and Goodman, A.E. 1999. Multiple genes involved in chitin degradation from the marine bacterium Pseudoalteromonas sp. strain S91. Microbiology 145, 925-934. 

  15. Wang, S., Moyne, A., Thottappilly G., Wu S., Locy, R.D., and Singh, N.K. 2001. Purification and characterization of a Bacillus cereus exochitinase. Enzyme Microbiol. Technol. 28, 492-498. 

  16. Watanabe, T., Kobori, K., Miyashita, K., Fujii, T., Sakai, H., Uchida, M., and Tanaka, H. 1993. Identification of glutamic acid 204 and aspartic acid 200 in chitinase A1 of Bacillus circulans WL-12 as essential residues for chitinase activity. J. Biol. Chem. 268, 18567-18572. 

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