본 연구의 목적은 누에형질전환 기술을 이용하여 적색형광실크를 개발하는 것으로서, 본 실험에서는 피브로인 H-chain의 N-말단과 C-말단을 이용하여 피브로인 재조합 단백질 발현 시스템을 제작하였고, 종결 코돈이 없는 DsRed2 유전자를 위의 발현 시스템에 클로닝하여 적색형광실크를 제작하였다. 누에형질전환체 선발을 위해서는 3xP3 promoter와 EGFP 유전자를 이용하여 선발하였고, 1020개의 누에알에 microinjection 하여 F1 세대에서 6 broods의 형질전환체를 선발하였다. 선발된 누에형질전환체는 초기배 단계의 눈과 신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 EGFP 형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었다. 또한 실크의 피브로인에서 DsRed2 단백질이 발현되는 것을 확인하기 위해, F2세대의 누에형질전환체 중에서 5령 5일 유충을 해부하여 견사선을 형광현미경으로 관찰하였고, 중부와 후부 견사선에서 적색형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었고, F2 세대의 고치에서도 적색형광단백질의 발현을 확인할 수 있었다. 이상의 결과에서 적색형광실크를 생산하는 누에형질전환체가 성공적으로 제작되었음을 확인할 수 있었고 이러한 결과를 토대로 새로운 산업소재로서 실크를 활용할 수 있을 것으로 기대한다.
본 연구의 목적은 누에형질전환 기술을 이용하여 적색형광실크를 개발하는 것으로서, 본 실험에서는 피브로인 H-chain의 N-말단과 C-말단을 이용하여 피브로인 재조합 단백질 발현 시스템을 제작하였고, 종결 코돈이 없는 DsRed2 유전자를 위의 발현 시스템에 클로닝하여 적색형광실크를 제작하였다. 누에형질전환체 선발을 위해서는 3xP3 promoter와 EGFP 유전자를 이용하여 선발하였고, 1020개의 누에알에 microinjection 하여 F1 세대에서 6 broods의 형질전환체를 선발하였다. 선발된 누에형질전환체는 초기배 단계의 눈과 신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 EGFP 형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었다. 또한 실크의 피브로인에서 DsRed2 단백질이 발현되는 것을 확인하기 위해, F2세대의 누에형질전환체 중에서 5령 5일 유충을 해부하여 견사선을 형광현미경으로 관찰하였고, 중부와 후부 견사선에서 적색형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었고, F2 세대의 고치에서도 적색형광단백질의 발현을 확인할 수 있었다. 이상의 결과에서 적색형광실크를 생산하는 누에형질전환체가 성공적으로 제작되었음을 확인할 수 있었고 이러한 결과를 토대로 새로운 산업소재로서 실크를 활용할 수 있을 것으로 기대한다.
We constructed the fibroin H-chain expression system to produce Discosoma sp. red fluorescent protein variant2 (DsRed2) in transgenic silkworm cocoon. Fluorescent cocoon could be made by fusing DsRed2 cDNA to the heavy chain gene and injecting it into a silkworm. The DsRed2 fusion protein, each with...
We constructed the fibroin H-chain expression system to produce Discosoma sp. red fluorescent protein variant2 (DsRed2) in transgenic silkworm cocoon. Fluorescent cocoon could be made by fusing DsRed2 cDNA to the heavy chain gene and injecting it into a silkworm. The DsRed2 fusion protein, each with N- and C-terminal sequences of the fibroin H-chain, was designed to be secreted into the lumen of the posterior silk glands. The expression of the DsRed2/H-chain fusion gene was regulated by the fibroin H-chain promoter. The use of the 3xP3-driven EGFP cDNA as a marker allowed us to rapidly distinguish transgenic silkworms. The EGFP fluorescence became visible in the ocelli and in the central and peripheral nervous system on the seventh day of embryonic development. A mixture of the donor and helper vector was micro-injected into 1,020 Kumokjam, bivoltin silkworm eggs. We obtained 6 broods. The cocoon was displayed strong red fluorescence, proving that the fusion protein was present in the cocoon. Accordingly, we suggest that the DsRed2 fluorescence silk will enable the production of novel biomaterial based on the transgenic silk.
We constructed the fibroin H-chain expression system to produce Discosoma sp. red fluorescent protein variant2 (DsRed2) in transgenic silkworm cocoon. Fluorescent cocoon could be made by fusing DsRed2 cDNA to the heavy chain gene and injecting it into a silkworm. The DsRed2 fusion protein, each with N- and C-terminal sequences of the fibroin H-chain, was designed to be secreted into the lumen of the posterior silk glands. The expression of the DsRed2/H-chain fusion gene was regulated by the fibroin H-chain promoter. The use of the 3xP3-driven EGFP cDNA as a marker allowed us to rapidly distinguish transgenic silkworms. The EGFP fluorescence became visible in the ocelli and in the central and peripheral nervous system on the seventh day of embryonic development. A mixture of the donor and helper vector was micro-injected into 1,020 Kumokjam, bivoltin silkworm eggs. We obtained 6 broods. The cocoon was displayed strong red fluorescence, proving that the fusion protein was present in the cocoon. Accordingly, we suggest that the DsRed2 fluorescence silk will enable the production of novel biomaterial based on the transgenic silk.
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문제 정의
그러나 2화성 누에품종은 휴면각성을 위해 고온에서 염산처리를 해야 하므로 다화성 품종에 비해 누에형질전환 실험의 진행에 많은 어려움이 있었다. 따라서 본 실험에서는 누에형질전환을 위한 누에알 제조의 최적시기인 산란 후 1시간 전에산 처리하는 방법으로 문제점을 해결하고자 하였다. 또한 형질전환에 사용된 누에 품종인 금옥잠은 일본종계 원종인 잠125와 중국종계 원종인 140의 교잡종으로서 타 품종에 비해 인공사료의 섭식성과 원종의 산란능력 및 생사생산력이 우수하다.
따라서 본 실험에서는 실크 섬유를 다양한 산업분야에 적용하기 위한 소재로 개발하기 위해 피브로인 재조합 단백질 발현 시스템을 이용하여 적색형광실크를 제작하였다.
2000). 따라서 본 실험에서는 이러한 시스템을 기반으로 피브로인 H-chain에서 재조합단백질을 발현시키는 누에형질전환 체를 제작하였다. 일반적으로 실크가 생성되는 과정은 누에의 후부 견사선에서 피브로인이 생성된 후 중부 견사선에서 세리신이 코팅되고 전부 견사선에서 토사공을 통해 밖으로 용출된다.
일반적으로 실크가 생성되는 과정은 누에의 후부 견사선에서 피브로인이 생성된 후 중부 견사선에서 세리신이 코팅되고 전부 견사선에서 토사공을 통해 밖으로 용출된다. 따라서 피브로인에서 적색형광단백 질이 발현되는 것을 확인하기 위해 F2세대의 5령 5일 누에를 해부하여 후부 견사선을 형광현미경으로 확인하였다. 그 결과 피브로인과 융합된 적색형광단백질은 후부 견사선과 중부 견사선에서 적색형광이 관찰 되었고(Fig.
본 연구의 목적은 누에형질전환 기술을 이용하여 적색 형광실크를 개발하는 것으로서, 본 실험에서는 피브로인 H-chain의 N-말단과 C-말단을 이용하여 피브로인 재조합 단백질 발현 시스템을 제작하였고, 종결 코돈이 없는 DsRed2 유전자를 위의 발현 시스템에 클로닝하여 적색형광실크를 제작하였다. 누에형질전환체 선발을 위해서는 3xP3 promoter 와 EGFP 유전자를 이용하여 선발하였고, 1020개의 누에알에 microinjection 하여 F1 세대에서 6 broods의 형질전환체를 선발하였다.
가설 설정
Arrows point to eyes and nervous system in panel. B) Larva show EGFP expression in the eyes of a F1 1th instar larvae. C) and D) Fluorescent images of pupa and moth.
제안 방법
H-chain gene ORF의 180 bp 3’말단과 피브로인 H 유전자(nt 79,021 to 80,009 of AF226688)의 300 bp 3’영역 포함된 단편은 누에에서 분리한 genomic DNA와 프라이머들(pFibHC-F: 5-AGCGTCAGTTACGGAGCTGGCAGGGGA-3) 과 pFibHCF: 5-TATAGTATTCTTAGTTGAGAAGGCATA-3)을 사용하여 PCR로 증폭하였고, pGEM-T Easy Vector System (Promega, USA)에 클로닝하였다.
그 결과 60마리의 유충이 부화되었다. 그리고 성충이 된 42마리(수놈: 20마리, 암놈: 22 마리)의 나방들을 서로 교배시켜 20개 아구의 F1세대를 얻었고, 형질전환체 선발을 위해 시기에 따라 형광현미경으로 관찰하였다. 기존에 보고된 문헌에 의하면 3xP3 promoter는 누에 초기배 단계의 눈과신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 작용한다고 알려져 있다(Thomas et al.
누에 실크에서 적색 형광단백질이 발현되는 형질전환 누에를 만들기 위해 피브로인 프로모터와 DsRed2 유전자를 pBac3xP3EGFP 벡터에 도입하여 제작하였다. 먼저 피브로인 프로모터를 얻기 위해서, 1,124 bp 프로모터 서열과 1,430 bp N-말단에 피브로인 H 유전자(nt 61,312 to 63,870 of AF226688)의 인트론(972 bp)이 포함된 단편은 누에에서 분리된 genomic DNA와 프라이머들(pFibHN-F: 5’-GGCGCGCCGTGCGTGATCAGGAAAAAT-3’)과 (pFibHNR: 5’-TGCACCGACTGCAGCACTAGTGCTGAA-3’)을 사용하여 PCR로 증폭하였고, pGEM-T Easy Vector System (Promega, Madison WI)에 클로닝하였다.
형질전환체를 선발하기 위한 마커 유전자로는 EGFP 유전자를 사용하였고, 이 유전자의 조절 프로모터로는 3xP3 promoter를 사용하였다. 누에의 피브로인 프로모터를 얻기 위해서, 1,124 bp 프로모터 서열과 1,430 bp N-말단에 피브로인 H 유전자의 인트론(972 bp)이 포함된 단편을 누에 게놈 으로부터 PCR을 이용하여 증폭하였다. 또한 말단에 피브로인 H-chain 유전자의 C-말단과 피브로인 H-chain gene ORF의 180 bp 3’ 말단과 피브로인 H 유전자의 300 bp 3’ 영역을 PCR을 이용하여 증폭하였다.
또한 말단에 피브로인 H-chain 유전자의 C-말단과 피브로인 H-chain gene ORF의 180 bp 3’ 말단과 피브로인 H 유전자의 300 bp 3’ 영역을 PCR을 이용하여 증폭하였다.
누에 초기배로의 microinjection위치는 예측되는 초기배의 배면 (Dorsal) 부분에 주사하였는데, 그 과정은 다음과 같이 실시하였다. 먼저 텅스텐 침으로 누에알에 작은 구멍을 뚫고, 이 구멍에 DNA 용액이 들어있는 microcapillary의 끝을 삽입 후, microinjector의 공기압을 이용하여 DNA 용액을 알 속으로 주입하였다. 이때 각 초기배에 주입된 DNA 용액의 양은 10-15 nl가 사용되었고, 난각에 생긴 구멍은 Cyanocrylate 성분이 함유된 접착제(Henkel, Germany) 를 사용하여 막았다.
먼저 피브로인 프로모터를 얻기 위해서, 1,124 bp 프로모터 서열과 1,430 bp N-말단에 피브로인 H 유전자(nt 61,312 to 63,870 of AF226688)의 인트론(972 bp)이 포함된 단편은 누에에서 분리된 genomic DNA와 프라이머들(pFibHN-F: 5’-GGCGCGCCGTGCGTGATCAGGAAAAAT-3’)과 (pFibHNR: 5’-TGCACCGACTGCAGCACTAGTGCTGAA-3’)을 사용하여 PCR로 증폭하였고, pGEM-T Easy Vector System (Promega, Madison WI)에 클로닝하였다.
본 실험에서는 누에 실크의 피브로인에서 적색형광단백 질이 발현되는 형질전환누에를 제작하기 위해 pBac3xP3EGFP 벡터를 이용하여 전이벡터를 구축하였다. 형질전환체를 선발하기 위한 마커 유전자로는 EGFP 유전자를 사용하였고, 이 유전자의 조절 프로모터로는 3xP3 promoter를 사용하였다.
종결 코돈 없는 DsRed2 유전자 단편은 프라이머들(DsRed2-F: 5-GCGGCCGCATGGCCTCCTCCGAGAACGTCATCACC-3’과 DsRed2-R: 5-GCTGAGGCAGGAACAGGTGGTGGCGGCCCTCGGTG-3)을 사용하여 pDsRed2-C1(Clontech, UAS)으로부터 증폭하였고, pGEM-T Easy Vector에 클로닝하였다. 이 플라스미드는 Not I과 Bbvc I으로 제한효소 처리하였고, 분리된 단편은 Not I과 Bbvc I으로 제한효소 처리된 pFibHNC-nul에 클로닝하였다. 완성된 플라스미드는 pFibHNC-DsRed2로 명명하였다.
종결 코돈 없는 DsRed2 유전자 단편은 프라이머들(DsRed2-F: 5-GCGGCCGCATGGCCTCCTCCGAGAACGTCATCACC-3’과 DsRed2-R: 5-GCTGAGGCAGGAACAGGTGGTGGCGGCCCTCGGTG-3)을 사용하여 pDsRed2-C1(Clontech, UAS)으로부터 증폭하였고, pGEM-T Easy Vector에 클로닝하였다.
형광현미경을 사용한 누에형질전환체 선발은 Leica(USA) 사의 LEICA MZ16FA 현미경과 Leica(USA)사의 Microscope MZ FLIII Flourescence Filter EGFP 형광필터를 사용하여, 세대별, 시기별로 수행했다. 또한 DsRed 발현은 Leica(USA) 사의 LEICA Z6 APO 현미경과 Leica(USA)사의 Microscope MZ FLIII Flourescence Filter DsRed 를 사용하였다.
대상 데이터
완성된 플라스미드는 pGEMT-CTD로 명명하였다. 그리고, pGEMT-pFibH-NTD는 Asc I과 BamH I으로, pGEMT-CTD는 Sal I과 Fse I으로 각각 제한효소 처리함으로써 단편들을 준비하였다. 이들 단편들은 Apa I과 Not I으로 제한효소 처리된 pBluescriptII SK(-) vector(Stratagene, CA)에 함께 클로닝하였고, pFibHNCnull로 명명하였다.
누에 해부에 사용 된 누에 형질전환체는 F2세대의 5령 5일 누에를 사용하였다. 누에 견사선은 전부 견사선에서 후부 견사선까지 동시에 적출하였고, DsRed 발현은 Leica(USA)사의 LEICA Z6 APO 현미경과 Leica(USA)사의 Microscope MZ FLIII Flourescence Filter DsRed 를 사용하였다.
누에 해부에 사용 된 누에 형질전환체는 F2세대의 5령 5일 누에를 사용하였다. 누에 견사선은 전부 견사선에서 후부 견사선까지 동시에 적출하였고, DsRed 발현은 Leica(USA)사의 LEICA Z6 APO 현미경과 Leica(USA)사의 Microscope MZ FLIII Flourescence Filter DsRed 를 사용하였다.
농촌진흥청 농업생물부의 표준 사육 기준(온도, 24℃-27℃; 상대습도, 70%-90%)에 준하여 사육하였다. 누에 형질전환에 사용된 벡터는 체코의 Jindra 박사로부터 분양 받은 pBac3xP3EGFP 벡터(Horn et al. 2000)와 helper 벡터인 pHA3PIG(Tamura et al. 2000)를 사용하였다.
본 연구의 목적은 누에형질전환 기술을 이용하여 적색 형광실크를 개발하는 것으로서, 본 실험에서는 피브로인 H-chain의 N-말단과 C-말단을 이용하여 피브로인 재조합 단백질 발현 시스템을 제작하였고, 종결 코돈이 없는 DsRed2 유전자를 위의 발현 시스템에 클로닝하여 적색형광실크를 제작하였다. 누에형질전환체 선발을 위해서는 3xP3 promoter 와 EGFP 유전자를 이용하여 선발하였고, 1020개의 누에알에 microinjection 하여 F1 세대에서 6 broods의 형질전환체를 선발하였다. 선발된 누에형질전환체는 초기배 단계의 눈과 신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 EGFP 형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었다.
2002). 따라서 이러한 특징을 근거로 산란 후 7일째부터 누에 초기배아의 눈과 신경조직에서 녹색형광이 발현되는 유충을 선발하였다. 또한 번데기와 성충의 눈에서 녹색형광을 확인할 수 있었고(Fig.
따라서 이러한 특징을 근거로 산란 후 7일째부터 누에 초기배아의 눈과 신경조직에서 녹색형광이 발현되는 유충을 선발하였다. 또한 번데기와 성충의 눈에서 녹색형광을 확인할 수 있었고(Fig. 2), 총 6 아구(Broods)의 형질전환체 누에를 선발할 수 있었다(Table. 1).
형질전환에 사용된 누에(Bombyx mori)는 금옥잠(잠125× 잠140)을 사용하였다.
본 실험에서는 누에 실크의 피브로인에서 적색형광단백 질이 발현되는 형질전환누에를 제작하기 위해 pBac3xP3EGFP 벡터를 이용하여 전이벡터를 구축하였다. 형질전환체를 선발하기 위한 마커 유전자로는 EGFP 유전자를 사용하였고, 이 유전자의 조절 프로모터로는 3xP3 promoter를 사용하였다. 누에의 피브로인 프로모터를 얻기 위해서, 1,124 bp 프로모터 서열과 1,430 bp N-말단에 피브로인 H 유전자의 인트론(972 bp)이 포함된 단편을 누에 게놈 으로부터 PCR을 이용하여 증폭하였다.
이론/모형
형질전환에 사용된 누에(Bombyx mori)는 금옥잠(잠125× 잠140)을 사용하였다. 농촌진흥청 농업생물부의 표준 사육 기준(온도, 24℃-27℃; 상대습도, 70%-90%)에 준하여 사육하였다. 누에 형질전환에 사용된 벡터는 체코의 Jindra 박사로부터 분양 받은 pBac3xP3EGFP 벡터(Horn et al.
본 실험에서는 누에형질전환체 제작을 위해 2000년 Tamura 등이 사용한 microinjection 법에 준하여 실험을 진행하였고, 총1020개의 누에알을 microinjection 하였다. 그 결과 60마리의 유충이 부화되었다.
형질전환에 사용된 누에알과 전이벡터의 준비는 Inoue, 2005 방법에 준하여 다음과 같이 실험하였다. 금옥잠은 이화성이므로, 이들을 비휴면상태로 만들기 위해 25℃에서 1시간 동안 염산 처리 후 흐르는 물에 30분간 세척하였고, 산란 후 4시간 이내의 것만 사용하였다.
성능/효과
따라서 피브로인에서 적색형광단백 질이 발현되는 것을 확인하기 위해 F2세대의 5령 5일 누에를 해부하여 후부 견사선을 형광현미경으로 확인하였다. 그 결과 피브로인과 융합된 적색형광단백질은 후부 견사선과 중부 견사선에서 적색형광이 관찰 되었고(Fig. 3), F2세대의 고치에서도 적색형광을 관찰할 수 있었다. 이러한 결과는 후부 견사선에서 생성된 적색형광단백이 피브로인과 융합되어 누에고치에도 같이 존재한다는 것을 의미하며, 따라서 피브로인에서 DsRed2 재조합단백질이 정상적으로 발현된다는 것을 확인할 수 있었다(Fig.
선발된 누에형질전환체는 초기배 단계의 눈과 신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 EGFP 형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었다. 또한 실크의 피브로인에서 DsRed2 단백질이 발현되는 것을 확인하기 위해, F2세대의 누에형질전환체 중에서 5령 5일 유충을 해부하여 견사선을 형광현미경으로 관찰하였고, 중부와 후부 견사선에서 적색형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었고, F2 세대의 고치에서도 적색형 광단백질의 발현을 확인할 수 있었다. 이상의 결과에서 적색형광실크를 생산하는 누에형질전환체가 성공적으로 제작되었음을 확인할 수 있었고 이러한 결과를 토대로 새로운 산업소재로서 실크를 활용할 수 있을 것으로 기대한다.
완성된 플라스미드는 pFibHNC-DsRed2로 명명하였다. 마지막으로, pFibHNC-DsRed2를 Asc I과 Fse I 으로 제한효소 처리하여 분리된 단편을 Asc I과 Fse I으로 제한효소 처리된 p3xP3EGFP에 클로닝하였고, 완성된 플라스미드는 p3xP3EGFPpFibHDsRed2로 명명하였다.
누에형질전환체 선발을 위해서는 3xP3 promoter 와 EGFP 유전자를 이용하여 선발하였고, 1020개의 누에알에 microinjection 하여 F1 세대에서 6 broods의 형질전환체를 선발하였다. 선발된 누에형질전환체는 초기배 단계의 눈과 신경조직, 유충과 번데기 그리고 성충의 눈에서 EGFP 형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었다. 또한 실크의 피브로인에서 DsRed2 단백질이 발현되는 것을 확인하기 위해, F2세대의 누에형질전환체 중에서 5령 5일 유충을 해부하여 견사선을 형광현미경으로 관찰하였고, 중부와 후부 견사선에서 적색형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었고, F2 세대의 고치에서도 적색형 광단백질의 발현을 확인할 수 있었다.
3), F2세대의 고치에서도 적색형광을 관찰할 수 있었다. 이러한 결과는 후부 견사선에서 생성된 적색형광단백이 피브로인과 융합되어 누에고치에도 같이 존재한다는 것을 의미하며, 따라서 피브로인에서 DsRed2 재조합단백질이 정상적으로 발현된다는 것을 확인할 수 있었다(Fig. 4).
후속연구
따라서 지금까지의 결과에서 적색형광실크를 생산하는 누에형질전환체가 성공적으로 제작되었음을 확인할 수 있었고, 이러한 결과는 재조합 단백질 생산을 위한 연구 및 실크 소재의 개발에 활용될 수 있을 것으로 생각된다.
또한 실크의 피브로인에서 DsRed2 단백질이 발현되는 것을 확인하기 위해, F2세대의 누에형질전환체 중에서 5령 5일 유충을 해부하여 견사선을 형광현미경으로 관찰하였고, 중부와 후부 견사선에서 적색형광단백질이 발현되는 것을 확인 할 수 있었고, F2 세대의 고치에서도 적색형 광단백질의 발현을 확인할 수 있었다. 이상의 결과에서 적색형광실크를 생산하는 누에형질전환체가 성공적으로 제작되었음을 확인할 수 있었고 이러한 결과를 토대로 새로운 산업소재로서 실크를 활용할 수 있을 것으로 기대한다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
누에 형질전환 기술을 최초로 성공한 사례는 무엇인가?
누에 형질전환 기술 개발은 일본의 Tamura 연구팀에 의해 나비목곤충인 Trichopusia ni에서 유래한 piggyBac 유전자를 이용하여 형질전환용 전이벡터를 구축하고 이를 다화성 누에 품종의 알에 미세주사하여 최초로 형질전환 누에 제작에 성공하였다(Tamura et al. 2000).
하나의 누에고치로 뽑을 수 있는 견사의 길이는 얼마인가?
누에는 번데기시기에 자신을 보호하기 위해 견사선으로 부터 실크 단백질을 합성, 분비하는데, 상족 후 약 60시간에 걸쳐 약 2.5 g의 고치를 만들며, 하나의 고치가 1천 2백 ~ 1천5백 m에 이르는 견사를 뽑을 수 있다. 또한 누에 실크 단백질은 -(Gly-Ala-Gly-X)-의 반복되는 아미노산 서열의 crystalline 형으로서 아미노산 X는 serine이나 tyrosine 으로 치환되어 있다.
누에의 견사선은 어떻게 구성되어 있는가?
또한 누에 실크 단백질은 -(Gly-Ala-Gly-X)-의 반복되는 아미노산 서열의 crystalline 형으로서 아미노산 X는 serine이나 tyrosine 으로 치환되어 있다. 실크단백질의 합성장소인 견사선은 크게 피브로인(fibroin)의 합성 장소인 후부견사선(posterior silk gland, PSG)과 세리신(sericin)의 합성 장소인 중부견 사선(middle silk gland, MSG) 그리고 실크를 토사시키는 전부견사선(anterial silk gland, ASG)로 구성되어 있고, 실크합성은 후부견사선에서 피브로인이 생성 된 후 후부견 사선에서 피브로인을 세리신으로 코팅하고, 전부견사선을 통해 토사된다(Altman et al. 2003, Hino et al.
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