[논문]넙치(Paralichthys olivaceus) 성어의 viral hemorrhagic septicemia (VHS) 진단사례

김진우; 조미영; 이한나; 한현자; 오윤경; 이순정; 지보영; 명정인; 원경미

doi:10.5657/kfas.2012.0666

넙치(Paralichthys olivaceus) 성어의 viral hemorrhagic septicemia (VHS) 진단사례
Diagnosis Case of Viral Hemorrhagic Septicemia (VHS) in Adult Olive Flounder Paralichthys olivaceus 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.45 no.6, 2012년, pp.666 - 674

Abstract ▼ AI-Helper

We examined the cause of a disease outbreak in adult olive flounder Paralichthys olivaceus, which occurred at a Korean aquaculture farm in Korea in 2011. The principal signs included an expanded abdomen and congested liver, with persistent mortality (a little over two months). At the beginning of the outbreak, farm administrators misjudged the disease as bacterial in origin, because of the aforementioned signs, persistent mortality, and the detection of bacterial species, including Vibrio spp. and Streptococcus spp. Moreover, the detection of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) by reverse trasnscription-PCR analysis was complicated by use of the VHS-VN primer set, which has been in general use recently, because it produced weak bands in some samples. Therefore, we recommend the use of at least two different primer sets in the diagnosis of VHSV. Our histopathological findings indicate that necrotizing myocarditis could be considered a pathogenic sign of VHSV infection.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

본 연구에서는 2011년 1월 양식 넙치에서 발생한 VHS의 진단법과 병리조직학적 특성을 기술함으로써, VHS에 경감염되거나 개체마다 각기 다른 세균에 2차 감염된 어류의 질병진단 과정에서 VHS의 진단이 지연되거나 놓치는 경우가 생기지 않도록 하고자 하였다. 향후, 우리나라에서 발생하는 VHS의 진단에 보다 적합한 PCR 방법에 대한 추가적인 논의가 필요할 것으로 생각된다.
이에 본 연구에서는 VHSV에 경감염되거나 병원성 세균에 2차감염 된 경우 VHS의 진단에서의 주의점과 이들 병어의 병리조직학적 변화를 관찰함으로써 향후, VHS의 진단이 지연되거나 질병의 원인에서 배제되지 않도록 하고자 하였다.

제안 방법

2. Detection of the viral hemorrhagic septicaemia virus (VHSV) gene in diseased olive flounder Paralichthys olivaceus tissue samples by reverse transcription PCR (RT-PCR) on various primer sets, VHS-VN primer set (A), VHS-811 primer set (B) and VHS-G primer set (C). Lane 1: 100 bp ladders(Bionner); lane 2 to 9: samples corresponding to isolate 1 to isolate 8, respectively; lane 10: negative control; lane 11 VHSV-positive control.
검사용 시료는 감염어를 무균적으로 해부하여 적출한 신장, 비장 및 뇌를 사용하였다. PCR을 위한 DNA는 시판되는 High pure PCR template preparation kit (Roche, Germany)를 사용하여 매뉴얼에 따라 분리하였으며, RNA는 매뉴얼에 따라 TRIZOL^Ⓡ Reagent (Invitrogen, USA)로 분리한 후, SuperScript^TMⅡ Reverse Transcriptase (Invitrogen, USA)를 이용하여 cDNA를 합성하였다. RSIV의 PCR 분석을 위해 분리된 DNA를 template로 사용하였으며, 그 외 VHSV, VNNV, HRV 및 MBV의 PCR 분석을 위해 분리된 RNA에서 합성한 cDNA 를 사용하였다.
PCR을 위한 DNA는 시판되는 High pure PCR template preparation kit (Roche, Germany)를 사용하여 매뉴얼에 따라 분리하였으며, RNA는 매뉴얼에 따라 TRIZOL^Ⓡ Reagent (Invitrogen, USA)로 분리한 후, SuperScript^TMⅡ Reverse Transcriptase (Invitrogen, USA)를 이용하여 cDNA를 합성하였다. RSIV의 PCR 분석을 위해 분리된 DNA를 template로 사용하였으며, 그 외 VHSV, VNNV, HRV 및 MBV의 PCR 분석을 위해 분리된 RNA에서 합성한 cDNA 를 사용하였다. PCR 분석은 ExTaq^Ⓡ hotstart version(TaKaRa, Japan)을 이용하여 매뉴얼에 따랐으며, 사용된 primer set 및 PCR 조건은 Table 1에 나타내었다.
2011년 1월 울산시 소재 양어장의 넙치 성어(어체중 200-250g)가 체표궤양, 지느러미 발적 및 복부팽만 증상을 보이며 폐사하였다. 대량폐사는 발생하지 않았으나, 하루 50-60 마리씩 지속적으로 폐사하였다. 이에 증상을 보이는 빈사어 8마리를 시험어로 사용하여 기생충, 세균 및 바이러스 검사를 실시하였다.
분리균주에 대한 약제 감수성 시험은 Miller-Hinton agar (BD, USA)를 이용하여 항균제 디스크(Becton Dickinson, USA)법으로 실시하였다. 배양 후 나타난 발육저지대의 지름을 측정하여 BD (BBL^TMSensi-Disc^TM)의 항균제 감수성 테스트 디스크 사용 설명서 기준으로 내성(resistant), 중간 내성(intermediate resistant), 감수성(susceptible)으로 구분하여 분석하였다(Table 2).
병든 넙치(n=8)의 각 기관(간, 신장, 비장, 심장, 뇌, 장, 위, 근육)을 적출하여 10% 중성포르말린(10% Neutral Buffer formalin, BNF)에 고정하고 24 시간 후 각 장기를 세절한 다음 동고정액에 재고정하였다. 재고정한 기관은 일반적인 조직처리 과정을 따라 순차농도의 알콜에 탈수·탈지 과정을 거친 후 xylene에 탈알콜시켜 파라핀으로 포매하였다.
해산어에서 주로 검출되는 5종의 바이러스, 즉 RSIV, VHSV, VNNV, HRV 및 MBV에 대한 PCR 분석을 실시한 결과, VHSV 이외의 4 종의 바이러스는 검출되지 않았다(data not shown). 병어의 증상으로 미루어 VHSV 감염이 의심되었으므로, 확진을 위해 VHSV에 대해서는 3가지 특이 primer를 사용하여 PCR 분석을 실시하였다. 그 결과, primer에 따라 다소 상이한 결과를 보였는데, 최근 일반적으로 사용되는 VHS-VN primer set (505 bp, OIE registered primer set)의 경우, 2번과 5번 개체에서만 약한 band를 형성한 반면(Fig.
분리균의 genomic DNA 추출과 PCR 분석은 바이러스 검사와 동일하게 High pure template preparation kit(Roche, Germany)와 ExTaq hotstart^Ⓡ version (Takara, Japan)을 사용하였다. 분리균의 동정을 위해 Eubac 27F (5′-CTGAGCCAGGATCAAACTCT-3′)와 Eubac 1429R (5′-CGTTACCTTGTTACGACTT-3′) primer sets를 이용하여 16S rDNA 유전자를 증폭하였으며, 1,505bp의 PCR 산물은 전기영동으로 band를 확인한 후, Gel SV kit (GeneAll, Korea)로 정제하고 Topo TA cloning^Ⓡ (Invitrogen, USA)을 이용하여 cloning하여 염기서열을 확인하였다.
분리균의 동정을 위해 Eubac 27F (5′-CTGAGCCAGGATCAAACTCT-3′)와 Eubac 1429R (5′-CGTTACCTTGTTACGACTT-3′) primer sets를 이용하여 16S rDNA 유전자를 증폭하였으며, 1,505bp의 PCR 산물은 전기영동으로 band를 확인한 후, Gel SV kit (GeneAll, Korea)로 정제하고 Topo TA cloningⓇ (Invitrogen, USA)을 이용하여 cloning하여 염기서열을 확인하였다.
시험어를 무균적으로 해부하여 신장, 비장, 간 등의 내부 장기 및 체표 환부를 NaCl 1.5% 첨가 TSA 배지, BHIA 배지, TCBS 배지, SS 배지 등에 접종하여 20℃, 24-48시간 배양하여 균의 성상을 확인하였으며 이를 순수분리하여 이후의 실험에 사용하였다.
증폭된 PCR 산물은 전기영동으로 band를 확인한 후, Gel SV kit (GeneAll, Korea)로 정제하고 Topo TA cloning^Ⓡ (Invitrogen, USA)을 이용하여 cloning하여 염기서열을 확인하였다. 염기서열의 분석에는 Genetyx Ver. 8.0 (SDC Software Development, Japan)을 사용하였으며, NCBI에서 제공되는 BLAST program 정보를 이용하여 상동성을 비교하였다.
이에 반해 해산어류에 피해를 입히는 바이러스를 특이 primer를 이용하여 분석한 결과, RSIV, VNNV, HRV 및 MBV는 검출되지 않았으나, VHSV에 대한 특이 primer인 VHS-VN primer set (OIE registered, 2009)를 이용한 PCR 분석에서 매우 약한 band를 형성하여 정밀조사가 필요할 것으로 추정되었다. 이에 OIE 2009개정 이전에 사용되던 primer set (VHS-811, 811 bp)와 본 연구실에서 VHS 진단에 사용하고 있는 VHS-G primer set (600 bp)를 함께 사용하여 분석하였다. 그 결과, 1 개체를 제외한 모든 개체에서 명확한 VHSV 양성 band를 형성하였으며, 이 band의 염기서열 분석을 통해 VHSV (AB490792)와 98.
본 연구에서도 이 primer set를 이용하여 VHSV 검출을 시도하였으나, 예상과 달리 일부 시료에서 매우 흐린 band를 형성하였다. 이에 VHSV 감염여부를 확인하기 위해, 다른 2가지 primer (VHS-811와 VHS-G primer set)를 이용하여 분석한결과, 명확한 추정 band를 형성하였다. VHS-VN primer set는 128 종의 VHSV를 대상으로 제작한 특이 primer set로, Snow et al.
대량폐사는 발생하지 않았으나, 하루 50-60 마리씩 지속적으로 폐사하였다. 이에 증상을 보이는 빈사어 8마리를 시험어로 사용하여 기생충, 세균 및 바이러스 검사를 실시하였다.
PCR 분석은 ExTaq^Ⓡ hotstart version(TaKaRa, Japan)을 이용하여 매뉴얼에 따랐으며, 사용된 primer set 및 PCR 조건은 Table 1에 나타내었다. 증폭된 PCR 산물은 전기영동으로 band를 확인한 후, Gel SV kit (GeneAll, Korea)로 정제하고 Topo TA cloning^Ⓡ (Invitrogen, USA)을 이용하여 cloning하여 염기서열을 확인하였다. 염기서열의 분석에는 Genetyx Ver.
질병 증상을 보이는 넙치의 아가미, 체표, 지느러미 및 각 내부 장기를 생검시료로 제작한 후 검경하여 조직의 상태 및 기생충 감염 여부를 확인하였다.
재고정한 기관은 일반적인 조직처리 과정을 따라 순차농도의 알콜에 탈수·탈지 과정을 거친 후 xylene에 탈알콜시켜 파라핀으로 포매하였다. 파라핀 블록은 microtome (Richert-Jung 820, Leica)으로 박절(4-5 ㎛ 두께)하여 Hematoxyline-eosin (H-E) 염색한 뒤 광학현미경(BX50F4, Olympus)으로 검경하였다.
해산어에서 주로 검출되는 바이러스의 감염 유무를 확인하기 위하여 참돔이리도바이러스(red seabream iridovirus, RSIV), 바이러스성출혈성패혈증바이러스(viral hemorrhagic septicemia virus, VHSV)를 포함하여 바이러스성신경괴사증바이러스(viral nervous necrosis virus, VNNV), 히라메랩도바이러스(hirame rhabdovirus, HRV) 및 해산 버나바이러스(marine birnavirus, MBV)에 대한 polymerase chain reaction (PCR) 분석을 시행하였다.

대상 데이터

2011년 1월 우리나라 울산광역시 소재의 넙치 양어장에서 200-300 g의 넙치 성어가 복부팽만, 체표궤양을 보이며 폐사하는 사례가 발생하였다. 급작스런 폐사는 발생하지 않았으나 1일 50-60마리 정도의 폐사가 약 2개월 가량 지속되었다.
2011년 1월 울산시 소재 양어장의 넙치 성어(어체중 200-250g)가 체표궤양, 지느러미 발적 및 복부팽만 증상을 보이며 폐사하였다. 대량폐사는 발생하지 않았으나, 하루 50-60 마리씩 지속적으로 폐사하였다.
검사용 시료는 감염어를 무균적으로 해부하여 적출한 신장, 비장 및 뇌를 사용하였다. PCR을 위한 DNA는 시판되는 High pure PCR template preparation kit (Roche, Germany)를 사용하여 매뉴얼에 따라 분리하였으며, RNA는 매뉴얼에 따라 TRIZOL^Ⓡ Reagent (Invitrogen, USA)로 분리한 후, SuperScript^TMⅡ Reverse Transcriptase (Invitrogen, USA)를 이용하여 cDNA를 합성하였다.

이론/모형

RSIV의 PCR 분석을 위해 분리된 DNA를 template로 사용하였으며, 그 외 VHSV, VNNV, HRV 및 MBV의 PCR 분석을 위해 분리된 RNA에서 합성한 cDNA 를 사용하였다. PCR 분석은 ExTaq^Ⓡ hotstart version(TaKaRa, Japan)을 이용하여 매뉴얼에 따랐으며, 사용된 primer set 및 PCR 조건은 Table 1에 나타내었다. 증폭된 PCR 산물은 전기영동으로 band를 확인한 후, Gel SV kit (GeneAll, Korea)로 정제하고 Topo TA cloning^Ⓡ (Invitrogen, USA)을 이용하여 cloning하여 염기서열을 확인하였다.
분리균주에 대한 약제 감수성 시험은 Miller-Hinton agar (BD, USA)를 이용하여 항균제 디스크(Becton Dickinson, USA)법으로 실시하였다. 배양 후 나타난 발육저지대의 지름을 측정하여 BD (BBL^TMSensi-Disc^TM)의 항균제 감수성 테스트 디스크 사용 설명서 기준으로 내성(resistant), 중간 내성(intermediate resistant), 감수성(susceptible)으로 구분하여 분석하였다(Table 2).

성능/효과

이에 OIE 2009개정 이전에 사용되던 primer set (VHS-811, 811 bp)와 본 연구실에서 VHS 진단에 사용하고 있는 VHS-G primer set (600 bp)를 함께 사용하여 분석하였다. 그 결과, 1 개체를 제외한 모든 개체에서 명확한 VHSV 양성 band를 형성하였으며, 이 band의 염기서열 분석을 통해 VHSV (AB490792)와 98.8%상동성을 보여, 본 발병의 원인을 VHSV로 확정진단할 수 있었다.
병어의 증상으로 미루어 VHSV 감염이 의심되었으므로, 확진을 위해 VHSV에 대해서는 3가지 특이 primer를 사용하여 PCR 분석을 실시하였다. 그 결과, primer에 따라 다소 상이한 결과를 보였는데, 최근 일반적으로 사용되는 VHS-VN primer set (505 bp, OIE registered primer set)의 경우, 2번과 5번 개체에서만 약한 band를 형성한 반면(Fig. 2A), VHSN (811 bp) primer (Fig. 2B)와 VHS-G (600 bp) primer (Fig. 2C)에 의해서는 4번 개체를 제외한 7마리 모두에서 VHSV 추정 band를 형성하였다. 증폭된 PCR 산물의 염기서열을 분석한 결과, VHSV (AB490792)와 98.
(1999)이 정의한 4가지 genotype을 모두 포함하고 있어, 그 유용성을 인정받아 2009년에 개정된 OIE manual에 명시되었다. 그러나, genotypeⅠ에 속하는 88 균주, genotypeⅡ에 속하는 7 균주, genotypeⅢ에 속하는 30 균주에 비해, 본 분리균이 속하는 genotypeⅣ에 속하는 3 균주만을 분석하였으며, 이들은 모두 미국에서 분리한 것으로 각각 은연어Oncorhynchus kisutch, 명태 Gadus macrocephalus, 및 청어 Clupea pallasii 유래의 균주였다. 하지만 최근에 보고된 Kim et al.
따라서 본 발병의 일부 개체에서 세균이 분리되었으나, 증상과 어체 크기 등을 종합적으로 고려하여 발병의 1차 원인체로 판단하기는 힘든 것으로 사료된다. 더욱이 분리된 세균에 대한 약제감수성 결과, 분리균주에 따라 감수성을 보이는 약제가 다른 것으로 나타났다. 이는 질병발생 초기 세균성 질병으로 오인하여 항생제를 투여하였음에도 불구하고 전혀 치료효과가 나타나지 않은 사실과도 무관하지 않을 것으로 생각된다.
ichthyoenteri를 미성어(4-5 g)에 인위감염시켰으나 병원성이 없었다고 보고하여, 현재까지 넙치 성어에서의 병원성은 확인된 바가 없다. 따라서 본 발병의 일부 개체에서 세균이 분리되었으나, 증상과 어체 크기 등을 종합적으로 고려하여 발병의 1차 원인체로 판단하기는 힘든 것으로 사료된다. 더욱이 분리된 세균에 대한 약제감수성 결과, 분리균주에 따라 감수성을 보이는 약제가 다른 것으로 나타났다.
병든 넙치는 개체에 따라 다소 차이가 있었으나, 전반적인 주요 외부증상은 체표 궤양, 지느러미 발적 및 복부팽만이었으며, 주요 내부증상은 복수 및 심한 간울혈이었다(Fig. 1). 단, 8마리 중 1마리(no.
, 2009). 본 연구에서도 복부 팽만, 심한 간울혈 증상 및 아가미 탈색을 보였으나, 체색흑화, 비장과 신장의 비대 및 근육출혈은 나타나지 않았다. Ghittino(1965)는 무지개송어에 대한 VHS의 감염단계를 급성, 만성, 신경형으로 구분하였다.
2, 3 및 7)에서 우점적인 colony가 형성되었으나, 그 외의 5마리에서는 배양된 세균이 없었다. 분리된 3 종류의 세균을 각각 OF2, OF3 그리고 OF7로 명명하고 순수분리하여 16S rDNA 유전자 분석을 통한 동정을 실시한 결과, OF2 균주는 Streptococcus parauberis KCTC11537과 100% 상동성을 보였으며, OF3과 OF7 균주는 Vibrio ichthyoenteri HQ010223과 100% 상동성을 보이는 것으로 나타났다(Table 2).
분리균에 대한 약제 감수성 시험 결과는 Table 3에 나타내었다. 시험에 사용한 13 종류의 약제 중에서, OF2 균주는 clavulanic acid 및 ampicillin에 대해서 감수성을 보였으며, OF3과 OF7 균주는 nalidixic acid 및 doxycycline에 대해서만 감수성을 보였다.
(2001)은 넙치의 VHSV 감염증을 "VHS-viral Necotizing Myocarditis of Hirame"라는 명칭을 제시할 만큼 심장의 과사소견이 뚜렷함을 보고하였다. 이들 결과와 유사하게 본 연구에서 밝힌 넙치 성어의 VHSV 감염증에서도 비장과 심장의 조혈영역을 중심으로 괴사병변이 폭넓게 확인되었으며, 그중에서도 가장 두드러진 병리조직학적 특징으로서 심근 괴사(Zenker necrosis)를 관찰할 수 있었다. 한편, 본 연구에서의 넙치 VHSV 감염증에서는 해부시 육안적으로 간의 울혈 및 출혈 증상이 심하게 나타난 것과는 달리, 병리조직학적 검사에서는 간세포 괴사 및 공포변성 이외의 병리조직학적 변화는 볼 수 없었다.
그러나 3개체에서만 분리되고 나머지 5개체에서는 세균분리가 되지 않았으며, 또한 1 개체는 Streptococcus parauberis, 나머지 2 개체는 Vibrio ichthyoenteri로 각기 달리 분리되어 어류폐사의 직접적인 원인으로 보기 힘들었다. 이에 반해 해산어류에 피해를 입히는 바이러스를 특이 primer를 이용하여 분석한 결과, RSIV, VNNV, HRV 및 MBV는 검출되지 않았으나, VHSV에 대한 특이 primer인 VHS-VN primer set (OIE registered, 2009)를 이용한 PCR 분석에서 매우 약한 band를 형성하여 정밀조사가 필요할 것으로 추정되었다. 이에 OIE 2009개정 이전에 사용되던 primer set (VHS-811, 811 bp)와 본 연구실에서 VHS 진단에 사용하고 있는 VHS-G primer set (600 bp)를 함께 사용하여 분석하였다.
폐사율이 낮고 복부팽만과 체표궤양과 전형적인 세균성 질병을 징후를 보여 항생제가 투여되었으나, 전혀 호전되지 않았다. 정밀검사결과, VHSV에 감염된 것으로 확인되었으나, 일부 개체에서 병원성 세균이 함께 분리되거나, VHSV의 진단법에 따라 상이한 결과가 도출되는 등의 혼란으로 확정진단이 지연되었다.
2C)에 의해서는 4번 개체를 제외한 7마리 모두에서 VHSV 추정 band를 형성하였다. 증폭된 PCR 산물의 염기서열을 분석한 결과, VHSV (AB490792)와 98.8% 상동성을 보였다.
해산어에서 주로 검출되는 5종의 바이러스, 즉 RSIV, VHSV, VNNV, HRV 및 MBV에 대한 PCR 분석을 실시한 결과, VHSV 이외의 4 종의 바이러스는 검출되지 않았다(data not shown). 병어의 증상으로 미루어 VHSV 감염이 의심되었으므로, 확진을 위해 VHSV에 대해서는 3가지 특이 primer를 사용하여 PCR 분석을 실시하였다.

후속연구

실제로 genotype Ⅳa의 유전자와 VHS-VN primer의 상동성을 조사해 본 결과, forward primer 20 base 중3 base, reverse primer 20 base 중 1 base가 달라서 primer의 특이성이 다소 떨어지는 것으로 추측된다. 따라서 VHS-VN primer를 사용할 경우, PCR 수행조건을 조정하거나, genotype에 따라 특이성이 높은 primer set를 사용하는 등의 조정이 필요할 것으로 생각되며, 앞으로 이에 대한 연구가 진행되어야 할 것으로 생각된다.
본 연구에서는 2011년 1월 양식 넙치에서 발생한 VHS의 진단법과 병리조직학적 특성을 기술함으로써, VHS에 경감염되거나 개체마다 각기 다른 세균에 2차 감염된 어류의 질병진단 과정에서 VHS의 진단이 지연되거나 놓치는 경우가 생기지 않도록 하고자 하였다. 향후, 우리나라에서 발생하는 VHS의 진단에 보다 적합한 PCR 방법에 대한 추가적인 논의가 필요할 것으로 생각된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	Viral hemorrhagic septicemia virus는 1980년대까지 어떤 어류에 국한되어 나타나는 질병으로 알려졌는가?	Viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV)는 1980년대까지 유럽의 무지개송어를 비롯한 담수산 연어과 어류에 국한 되어 질병을 야기하는 것으로 알려졌다(Jørgense, 1980). 그러나 이후 폭넓은 지역에서 다양한 담수 및 해수 어류 모두에 질병을 유발하는 병원체라는 것이 밝혀지면서(Mortensen et al.
	우리나라에서 VHS가 처음으로 보고된 것은 무엇인가?	, 1999). 우리나라에서 VHS가 처음으로 보고된 것은 2001년부터 2004년 사이에 발생한 양식넙치의 대량폐사를 조사하여 그 원인이 VHSV임을 밝힌 것이다(Kim, 2003). 이후 부산 인근 해역의 숭어 Mugil cephalus와 포항 인근 해역의 고등어 Scomber japonicus에서도 검출되어(Kim and Park, 2004) 자연산 해수어에서도 확인되었으며, 이후, 치어 뿐 아니라 상품크기의 양식넙치에도 피해를 입히는 것이 밝혀졌다(Kim et al.
	현재 Viral hemorrhagic septicemia virus의 감염 숙주는 총 몇 종에 이르는가?	그러나 이후 폭넓은 지역에서 다양한 담수 및 해수 어류 모두에 질병을 유발하는 병원체라는 것이 밝혀지면서(Mortensen et al., 1999; Smail, 1999; Kim and Park, 2004), 현재는 VHSV 의 감염숙주가 총 90종에 이르는 것으로 확인되었다(세계동물보건기구 OIE, 2009). 이 중 해수 어류에서의 VHSV는 1979년 Atlantic cod Gadus morhua에서 첫 보고된 이후(Jensen et al.

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저자의 다른 논문 :

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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