굴 Crassostrea gigas 부착기 유생의 부착에 미치는 수온 및 염분의 영향 The Effect of Water Temperature and Salinity on Settlement of Pacific Oyster, Crassostrea gigas Pediveliger Larvae원문보기
채묘시험은 4구간의 수온구 20.0, 23.0, 26.0, $29.0^{\circ}C$에 염분을 20.0, 30.0, 40.0으로 조절하여 온도와 염분의 혼합구에 대한 참굴 부착기 유생의 채묘시험을 실시한 결과, 수온 $29.0^{\circ}C$에서 염분 20.0과 30.0으로 조절된 채묘구에서 평균 $43.1{\pm}0.19%$와 $42.1{\pm}0.1%$로 유의적으로 가장 높은 채묘율을 보였고, 수온 $23.0^{\circ}C$염분 40.0에서 $34.9{\pm}0.6%$ 가장 낮은 부착률을 보였다 (P < 0.05). 부착밀도는 수온 $29.0^{\circ}C$에서 유의적으로 높았고, 염분 40.0의 고염분에서 유의적으로 낮았다(P < 0.05). 그러나 수온과 염분의 혼합효과는 유의적인 차이가 없었다 (P > 0.05). 수온에 따른 염분별 채묘구의 부착 빈도를 조사한 결과 가장 많은 부착빈도는 1.2-2.3 마리/$cm^2$을 보였고, 평균 부착밀도는 1.9-2.4마리/$cm^2$였다. 전체적으로 채묘율과 평균 부착밀도 그리고 부착빈도를 감안하면 본 실험 결과 효과적인 채묘관리를 위한 수온과 염분조건은 수온 $29.0^{\circ}C$, 염분 20.0-30.0으로 조절하는 것이 좋을 것으로 판단된다.
채묘시험은 4구간의 수온구 20.0, 23.0, 26.0, $29.0^{\circ}C$에 염분을 20.0, 30.0, 40.0으로 조절하여 온도와 염분의 혼합구에 대한 참굴 부착기 유생의 채묘시험을 실시한 결과, 수온 $29.0^{\circ}C$에서 염분 20.0과 30.0으로 조절된 채묘구에서 평균 $43.1{\pm}0.19%$와 $42.1{\pm}0.1%$로 유의적으로 가장 높은 채묘율을 보였고, 수온 $23.0^{\circ}C$염분 40.0에서 $34.9{\pm}0.6%$ 가장 낮은 부착률을 보였다 (P < 0.05). 부착밀도는 수온 $29.0^{\circ}C$에서 유의적으로 높았고, 염분 40.0의 고염분에서 유의적으로 낮았다(P < 0.05). 그러나 수온과 염분의 혼합효과는 유의적인 차이가 없었다 (P > 0.05). 수온에 따른 염분별 채묘구의 부착 빈도를 조사한 결과 가장 많은 부착빈도는 1.2-2.3 마리/$cm^2$을 보였고, 평균 부착밀도는 1.9-2.4마리/$cm^2$였다. 전체적으로 채묘율과 평균 부착밀도 그리고 부착빈도를 감안하면 본 실험 결과 효과적인 채묘관리를 위한 수온과 염분조건은 수온 $29.0^{\circ}C$, 염분 20.0-30.0으로 조절하는 것이 좋을 것으로 판단된다.
The combined effects of water temperature and salinity on the settlement rate and density (spats/$cm^2$) of Crassostrea gigas pediveliger larvae were studied under the hatchery conditions. Four water temperatures (20.0, 23.0, 26.0 and $29.0^{\circ}C$) were tested at three salin...
The combined effects of water temperature and salinity on the settlement rate and density (spats/$cm^2$) of Crassostrea gigas pediveliger larvae were studied under the hatchery conditions. Four water temperatures (20.0, 23.0, 26.0 and $29.0^{\circ}C$) were tested at three salinities (20.0, 30.0 and 40.0). The optimum water temperature by salinity conditions were $29.0^{\circ}C$ and 20.0, 30.0 which significantly (P < 0.05) the highest mean (${\pm}S.D$) larval settlement rate of $43.1{\pm}0.1%$, $42.1{\pm}0.1%$, respectively. But the combination of water temperatures and salinities for settlement density was not effected, but each factor as water temperature ($29.0^{\circ}C$), salinity (40.0) was shown significantly high and low settlement density, respectively (P < 0.05). The statistics result of settlement density frequency was appeared: mode ($1.2-2.3spats/cm^2$), Mean ($1.9-2.4spats/cm^2$), Range ($3.0-5.8spats/cm^2$) and the lowest variance was obtained 0.4 at water temperature $20.0^{\circ}C$ by salinity 30.0, but $29.0^{\circ}C$ by 20.0 was the highest (1.1). The best condition at this results for the larvae setting under the artificial seed collection of C. gigas was $29.0^{\circ}C$ and 20.0-30.0.
The combined effects of water temperature and salinity on the settlement rate and density (spats/$cm^2$) of Crassostrea gigas pediveliger larvae were studied under the hatchery conditions. Four water temperatures (20.0, 23.0, 26.0 and $29.0^{\circ}C$) were tested at three salinities (20.0, 30.0 and 40.0). The optimum water temperature by salinity conditions were $29.0^{\circ}C$ and 20.0, 30.0 which significantly (P < 0.05) the highest mean (${\pm}S.D$) larval settlement rate of $43.1{\pm}0.1%$, $42.1{\pm}0.1%$, respectively. But the combination of water temperatures and salinities for settlement density was not effected, but each factor as water temperature ($29.0^{\circ}C$), salinity (40.0) was shown significantly high and low settlement density, respectively (P < 0.05). The statistics result of settlement density frequency was appeared: mode ($1.2-2.3spats/cm^2$), Mean ($1.9-2.4spats/cm^2$), Range ($3.0-5.8spats/cm^2$) and the lowest variance was obtained 0.4 at water temperature $20.0^{\circ}C$ by salinity 30.0, but $29.0^{\circ}C$ by 20.0 was the highest (1.1). The best condition at this results for the larvae setting under the artificial seed collection of C. gigas was $29.0^{\circ}C$ and 20.0-30.0.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
따라서 채묘률 개선을 위한 연구개발을 매우 시급한 실정이다. 이에 본 연구는 참굴 인공종묘생산 시 채묘률 향상을 위해 적정 수온과 염분 조건을 결정하기 위해 실시하였다.
제안 방법
4구간의 수온구 20.0, 23.0, 26.0, 29.0℃에 염분을 20.0, 30.0, 40.0으로 조절하여 온도와 염분의 혼합구에 대한 참굴 부착기 유생의 채묘시험을 실시한 결과, 각 실험구별 평균 채묘률 변화는 Fig 1에서 보는 것과 같다. 전체적으로 수온과 염분 조합구에서 29.
0 cm 크기의 플라스틱 간극제를 패각과 패각 사이에 넣고 10개씩 코팅철사에 조립하여 수하연을 만든 후 각각의 실험 용기에 3연씩 (총 30 패각) 설치한 다음 선별된 부착기 유생을 1마리/mL (1,000마리) 밀도로 투입하였다. 그리고 부착기 유생의 고른 분포를 유도하기 위하여 미세하게 공기를 공급하였고, 빛에 의한 영향을 줄이기 위해 빛을 차단하여 조도를 200 Lux 이하로 유지하면서 48시간 동안 부착을 유도하였다. 부착실험 기간 동안 먹이공급은 I.
급된 동일 먹이를 공급하면서 2주간 (부착치패가 명확히 관찰되는 시기) 유수 사육을 실시한 후 각 부착지질 당 부착마리수를 육안으로 개수 후 다음 식으로 계산하였다.
한편, 채묘기질 당 부착마리수의 분포변화를 조사하기 위하여 채묘기질당 부착빈도를 조사하였다. 기질당 부착빈도는 전체 90개 채묘기 (30개 x 3 시험구) 를 모집단으로 각각의 채묘기별 부착마리수를 채묘기질 면적으로 나누어 cm2 당 부착 밀도 및 부착빈도를 조사하였다. 이 때 각 빈도별 계급값은 0.
부착실험 기간 동안 먹이공급은 I. galbana와 C. gracilis를 동일 비율로 혼합하여 1일 2회 3 × 104 cells/mL 공급하였고, 환수는 하지 않았다.
0 구간으로 설정하여 실시하였다. 염분과 온도구간의 선택은 남해안 굴 자연채묘 시기인 6월에서 9월의 예년의 평균 수온과 염분범위를 기초로 하여 설정하였다. 염분조절은 1μm 카트리지 필터와 자외선살균기로 처리한 해수에 증류수와 천일염을 이용하여 조절하였고, 수온조절은 먼저 수용적 1톤 사각 FRP 수조 4개에 담수를 채우고 온도조절기와 2 kw 티타늄 히터를 이용하여 각각의 온도를 설정한 후 중탕식으로 염분이 각각 조절된 수용적 1 L 원형 PET 용기를 각각 3반복 설치하여 실시하였다.
염분조절은 1μm 카트리지 필터와 자외선살균기로 처리한 해수에 증류수와 천일염을 이용하여 조절하였고, 수온조절은 먼저 수용적 1톤 사각 FRP 수조 4개에 담수를 채우고 온도조절기와 2 kw 티타늄 히터를 이용하여 각각의 온도를 설정한 후 중탕식으로 염분이 각각 조절된 수용적 1 L 원형 PET 용기를 각각 3반복 설치하여 실시하였다.
채묘시험은 4구간의 수온구 20.0, 23.0, 26.0, 29.0℃에 염분을 20.0, 30.0, 40.0으로 조절하여 온도와 염분의 혼합구에 대한 참굴 부착기 유생의 채묘시험을 실시한 결과, 수온 29. 0℃에서 염분 20.
채묘시험은 동일한 부착면적을 얻기 위해 굴 패각을 3.0 cm × 3.0 cm 크기로 절단하여 가운데 전기드릴로 직경 3.0 mm 구멍을 뚫은 다음, 부착 생물부착층 등 이물질을 제거하기 위하여 pH 2의 염산 수용액에 10분간 침지한 후 담수로 수회 세척한 다음 자연광 조건에서 24시간 건조 후 직경 5.0 mm, 길이 1.0 cm 크기의 플라스틱 간극제를 패각과 패각 사이에 넣고 10개씩 코팅철사에 조립하여 수하연을 만든 후 각각의 실험 용기에 3연씩 (총 30 패각) 설치한 다음 선별된 부착기 유생을 1마리/mL (1,000마리) 밀도로 투입하였다.
한편, 채묘기질 당 부착마리수의 분포변화를 조사하기 위하여 채묘기질당 부착빈도를 조사하였다. 기질당 부착빈도는 전체 90개 채묘기 (30개 x 3 시험구) 를 모집단으로 각각의 채묘기별 부착마리수를 채묘기질 면적으로 나누어 cm2 당 부착 밀도 및 부착빈도를 조사하였다.
대상 데이터
실험에 이용한 참굴 부착기 유생은 남동해수산연구소 남해 패류센터 패류중간육 성장에서 관리하던 만 1년생 참굴 (평균 각장 63.7 ± 6.4 cm, n = 50) 을 이용하여 채란 후 14일 동안 수온 26 ± 1℃, 염분 32 ± 2로 조절된 수용적 10 톤 콘크리트 수조에서 먹이생물로 Isochrysis galbana (KMCCH-2), Cheatoceros gracilis (KMCC B-52), Pavlova lutheri (KMCC H-006), Phaeodactylum tricornutum(KMCC B-14), Nannochloris oculata (KMCC C-31), Tetraselmis tetrathele (KMCC P-002) 를 각각 30% :20% : 20% : 10% :10% :10%의 비율로 혼합하여 일일 3회 공급하면서 채란 후 14일 동안 사육한 것을 망목 230 μm인 거름망을 이용하여 선별된 부착기 유생 (평균 각장 331.2 ±13.8 μm, 각고 349.3 ± 13.8 μm, n = 50) 이었다.
데이터처리
각 채묘 실험구간의 부착율과 부착밀도에 대한 유의차 유무는 One-way 및 Two-way ANOVA-test 를 실시한 후, Duncan’s test로 평균간의 유의성 (P ＜ 0.05) 을 검정하였고, 부착밀도의 분포를 조사하기 위하여 빈도분석을 실시하였다.
05) 을 검정하였고, 부착밀도의 분포를 조사하기 위하여 빈도분석을 실시하였다. 모든 분석은 SPSS 통계 프로그램을 사용하여 분석하였다.
성능/효과
0℃에서 염분 20.0과 30.0으로 조절된 채묘구에서 평균 43.1± 0.19%와 42.1 ± 0.1%로 유의적으로 가장 높은 채묘율을 보였고, 수온 23.0℃염분 40.0에서 34.9 ± 0.6% 가장 낮은 부착률을 보였다 (P ＜ 0.05).
23.0℃ 구간의 평균 부착마리수는 각각 2.1 ± 0.1, 2.2 ± 0.1, 1.9 ± 0.1 이었고, 부착마리수의 범위는 각각 3.0, 5.8, 4.0마리/cm2 였다.
26.0℃ 구간의 평균 부착마리수는 각각 2.1 ± 0.1, 2.1 ± 0.1, 2.0 ± 0.1 이었고, 부착마리수의 범위는 각각 4.2, 4.7, 4.0마리/cm2 였다.
7마리/cm2 였다. 가장 빈번한 빈도는 각각 1.3, 1.8, 2.2마리/cm2로 염분 40.0에서 가장 높은 빈도를 보였다. 왜도와 첨도는 각각 0.
0마리/cm2 였다. 가장 빈번한 빈도는 각각 1.7, 1.3, 1.3마리/cm2로 20.0℃ 채묘구와 동일하게 염분 30.0에서 가장 높은 빈도를 보였다. 왜도와 첨도는 각각 0.
7마리/cm2 였다. 가장 빈번한 빈도는 각각 2.0, 2.3, 1.2마리/cm2로 염분 30.0에서 가장 높은 빈도를 보였다. 왜도와 첨도가 각각 0.
0마리/cm2 였다. 가장 빈번한 빈도는 각각 2.2, 1.5, 2.5마리/cm2로 염분 40.0에서 가장 높은 빈도를 보였다. 왜도와 첨도는 각각 0.
각 온도에 따른 염분별 시험구의 채묘율을 보면, 먼저 20.0℃ 구간은 평균 부착율이 각각 38.3 ± 0.9%, 38.7 ± 0.9%, 36.7± 1.4%로 염분 20.0과 30.0 구간이 40.0 구간에 비해 유의적으로 높은 부착율을 보였지만, 염분 20.0과 30.0 구간간의 부착율에 대한 유의적이 차이는 없었다.
18 마리/cm2 이 적당할 것으로 유추된다. 그러나 본 실험의 경우 수온 23.0℃, 염분 40.0의 최소 부착밀도가 0.3마리/cm2을 제외하고는 모든 채묘 시험구에서 0.5마리/cm2 이상의 부착밀도를 보이고, 평균 1.9-2.4 마리/cm2로 나타나 적정 부착마리수에 비해 비교적 높은 부착밀도를 보였다. 한편, Min et al.
따라서 향후 보다 세밀한 조건으로 깊이 있는 연구가 진행되어야 할 것이다. 그러나 본 조사의 결과와 지금까지의 연구결과 (Lund, 1971; Henderson, 1983) 로 보아 굴 C. gigas 인공종묘생산 시 효과적인 채묘관리를 위한 수온조건은 비교적 고수온인 29.0-30.5℃가 좋을 것으로 판단되고, 염분은 20.0-30.0으로 조절하는 것이 좋을 것으로 판단된다.
부착과 변태의 성공률을 높이기 위해서는 비교적 높은 염분과 높은 수온에서 관리할 필요가 있는 것으로 밝혀졌다 (Lund, 1971; Henderson, 1983). 본 조사에서도 실험 구간 중 가장 높은 29.0℃ 채묘구에서 유의적으로 높은 부착율과 높은 부착밀도를 보였다. 그러나 40.
수온 23.0℃ 구간에서는 각각 38.4 ± 1.1%, 39.2 ± 1.5%, 34.9 ± 0.6%로 염분 30.0구간이 비교적 높게 나타났지만, 20.0℃ 수온구와 비슷하게 염분 20.0과 30.0 간에는 유의적이 차이가 없었고, 40.0에 비해서는 유의적으로 높은 채묘율을 보였다.
05). 수온에 따른 염분별 채묘구의 부착 빈도를 조사한 결과 가장 많은 부착빈도는 1.2-2.3 마리/cm2을 보였고, 평균 부착밀도는 1.9-2.4마리/cm2였다. 전체적으로 채묘율과 평균 부착밀도 그리고 부착빈도를 감안하면 본 실험 결과 효과적인 채묘관리를 위한 수온과 염분조건은 수온 29.
0에 비해 유의적으로 낮은 채묘율을 보였다. 이상의 결과 전체적으로 비교적 수온이 낮고, 고염분에서는 부착율이 낮았다.
전체적으로 수온과 염분 조합구에서 29.0℃에서 염분 20.0으로 조절된 채묘구에서 평균 43.1 ± 0.19%로 동일 수온에서 염분 30.0으로 조절된 채묘구를 제외하고는 다른 채묘구에 비해 유의적 (P ＜ 0.05)으로 높은 부착율를 보였고, 수온 23.0℃ 염분 40에서 평균 34.9 ± 0.6%로 유의적으로 가장 낮은 부착율을 보였다.
4마리/cm2였다. 전체적으로 채묘율과 평균 부착밀도 그리고 부착빈도를 감안하면 본 실험 결과 효과적인 채묘관리를 위한 수온과 염분조건은 수온 29. 0℃, 염분 20.
후속연구
84로 나타났지만, 대부분 완만한 형태의 빈도분포를 보이면서 비슷한 경향을 보였다. 따라서 향후 고른 부착빈도를 얻기 위해서는 또 다른 다양한 요인을 병행해서 깊이 있는 연구가 수행되어야 할 것으로 본다. 뿐만 아니라, 본 실험에서는 수온과 염분의 조건범위가 비교적 넓기 때문에 최적의 정확한 수온과 염분조건을 설명하는 데는 한계가 있다.
뿐만 아니라, 본 실험에서는 수온과 염분의 조건범위가 비교적 넓기 때문에 최적의 정확한 수온과 염분조건을 설명하는 데는 한계가 있다. 따라서 향후 보다 세밀한 조건으로 깊이 있는 연구가 진행되어야 할 것이다. 그러나 본 조사의 결과와 지금까지의 연구결과 (Lund, 1971; Henderson, 1983) 로 보아 굴 C.
따라서 향후 고른 부착빈도를 얻기 위해서는 또 다른 다양한 요인을 병행해서 깊이 있는 연구가 수행되어야 할 것으로 본다. 뿐만 아니라, 본 실험에서는 수온과 염분의 조건범위가 비교적 넓기 때문에 최적의 정확한 수온과 염분조건을 설명하는 데는 한계가 있다. 따라서 향후 보다 세밀한 조건으로 깊이 있는 연구가 진행되어야 할 것이다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
해양무척추동물 유생의 부착과 변태를 유도하는 요인은 무엇인가?
해양무척추동물 유생의 부착과 변태를 유도하는 요인은 주로 서식환경에서 발인되는 자연적인 요인과 생리적인 변화에 따른 생물내적인 요인이 상호복합적으로 작용하여 특이적인 화학작용 신호에 의해서 부착과 변태가 일어나는 것으로 보고되고 있다 (Crip, 1984, Morse, 1990; Pawlik, 1992; Tamburri et al., 1996; Qian, 1999; Hadfield and Paul, 2001; Yu et al.
국내에서 참굴 양식에 필요한 종묘의 수량은?
또한 이 두 요소는 실내에서 손쉽게 정교하게 조절할 수 있을 뿐만 아니라, 대량으로 처리하는데 지금까지 밝혀진 다양한 부착 및 변태 유인물질에 비해 매우 저렴하기 때문에 인공종묘배양장에서 활용성이 높다. 참굴은 우리나라에서 매우 중요한 양식 대상종으로 연간 양식에 필요한 종묘는 약 1,800만연 이상이 소요되고, 이 중 대부분은 천연종묘생산에 의존하고 있지만, 최근 인공종묘생산기술이 개발됨에 따라 연간 약 10-15% 정도를 인공종묘로 대체하고 있다. 그러나 인공종묘는 천연종묘에 비해 생산단가가 높고, 대량생산에 많은 어려움이 있다.
인공종묘생산기술의 문제점은 무엇인가?
참굴은 우리나라에서 매우 중요한 양식 대상종으로 연간 양식에 필요한 종묘는 약 1,800만연 이상이 소요되고, 이 중 대부분은 천연종묘생산에 의존하고 있지만, 최근 인공종묘생산기술이 개발됨에 따라 연간 약 10-15% 정도를 인공종묘로 대체하고 있다. 그러나 인공종묘는 천연종묘에 비해 생산단가가 높고, 대량생산에 많은 어려움이 있다. 따라서 단위면적당 생산량을 높여 생산단가를 낮추는 것은 매우 중요한 일이다.
참고문헌 (47)
Andrews, W.R., Targett, N.M. and Epifanio, C.E. (2001) Isolation and characterization of the metamorphic inducer of the common mud crab, Panopeus herbstii. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 261: 121-134.
Angell, C.L. (1986) The Biology and Culture of Tropical Oysters. ICLARM Technical Report, No. 13: 42. Manila, Philippines.
Bonar, D.B., Coon, S.L., Walch, M., Weiner, R.M. and Fitt, W. (1990) Control of oyster settlement and metamorphosis by endogenous and exogenous chemical cues. Bulletin of marine Science, 46: 484-498.
Cann-Moisan, C., Nicolas, L. and Robert, R. (2002) Ontogenic changes in the contents of dopamine, norepinephrine and serotonin in larvae and postlarvae of the bivalve Pecten maximus. Aquatic Living Resources, 15: 313-318.
Coon, S.L., Bonar, D.B. and Weiner, R.M. (1985) Induction of settlement and metamorphosis of the Pacific oyster, Crassostrea gigas (Thunberg), by L-DOPA and catecholamines. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 94: 211-221
Crisp, D.J. (1984) Overview of research on marine invertebrate larvae. In: Grant, P.T. and Mackie, A.M. Eds., Chemoreception in Marine Organisms, vol. 1. 177-265. Academic Press, London.
Devakie, M.N. and Ali, A.B. (2000) Salinity-temperature and nutritional effects on the setting rate of larvae of the tropical oyster, Crassostrea iredalei (Faustino). Aquaculture, 184: 105-114.
Doroudi, M.S. and Southgate, P.C. (2002) The effect of chemical cues on settlement behaviour of blacklip pearl oyster (Pinctada margaritifera) larvae. Aquaculture, 209: 117-124.
Faimali, M., Garaventa, F., Terlizzi, A., Chiantore, M. and Cattaneo-Vietti, R. (2004) The interplay of substrate nature and biofilm formation in regulating Balanus amphitrite Darwin, 1854 larval settlement. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 306: 37-50.
Ganesan. A.M., Alfaro A.C., Brooks J.D. and Higgins C.M. (2010) The role of bacterial biofilms and exudates on the settlement of mussel (Perna canaliculus) larvae. Aquaculture, 306: 388-392.
Garcia-Lavandeira, M., Silva, A., Abad, M., Pazos, A.J., Sanchez, J.L. and Perez- Paralle, M.L. (2005) Effects of GABA and epinephrine on the settlement and metamorphosis of the larvae of four species of bivalve molluscs. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 316: 149-156.
Hadfield, M.G., 1978. Metamorphosis in marine molluscan larvae: an analysis of stimulus and response. In: Chia, F.S. and Rice, M.E. Eds, Settlement and Metamorphosis of Marine Invertebrate Larvae. 165-175. Elsevier, New York.
Hadfield, M.G. (1984) Settlement requirement of molluscan larvae: new data on chemical and genetic roles. Aquaculture, 39: 283-298.
Hadfield, M.G. and Paul, V.J. (2001). Natural chemical cues for settlement and metamorphosis of marine-invertebrate larvae. In: McClintock, J.B., Baker, B.J. (Eds.), Marine Chemical Ecology. 431-461. CRC press, New York.
Henderson, B.A. (1983) Handling and Remote Setting Techniques for the Pacific oyster larvae, Crassostrea gigas. Master's thesis, Department of Fisheries and Wildlife, 37. Oregon State University. OR
Hidu, H. and Haskin, H. (1971) Setting of the American oyster related to environmental factors and larval behaviour. Proceeding of National Shellfish Association, 61: 35-49.
Hur, Y.B., WI, C.H., KIM, T.I., Chun, C.Y., Hwang, M.S., Kim, Y.O. and Choe, S.W. (2002). Effect of hardening on growth survival of spats of the Pacific oyster, Crassostrea gigas artificially produced in Autumn season. bulletin of National Fisheries Research and Development Agency, 61: 77-84.
Hur, Y.B., Min, K.S., Kim, T.E., Lee, S.J. and Hur, S.B. (2008) Larvae growth and biochemical composition change of the Pacific oyster Crassostrea gigas, larvae during artificial seed production. Journal of Aquaculture, 21: 203-212.
Jensen, R.A., Morse, D.E., Petty, R.L. and Hooker, N. (1990) Artificial induction of larval metamorphosis by free fatty acids. Marine Ecological Progress of Service, 67: 55-71.
Johnson, C.R., Muir, D.G. and Reysenbach, A.L. (1991) Characteristic bacteria associated with surfaces of coralline algae: a hypothesis for bacterial induction of marine invertebrate larvae. Marine Ecological Progress of Service, 74: 281-294.
Jones, G.G. and Jones, B.L. (1988) Advances in Remote Setting of Oyster Larvae. 88. Aquaculture Association of BC, Nanaimo, BC.
Keough, M.J. and Raimondi, P.T. (1996) Responses of settling invertebrate larvae to bioorganic films: Effects of large-scale variation in films. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 207: 59-78.
Leitz, T. and Wagner, T. (1993) The marine bacterium Alteromonas espejiana induces metamorphosis of the hydroid Hydractinia echinate. Marine Biology, 115: 173-178.
Lund, D.S. (1971) Laboratory studies on setting of the Pacific Oyster Crassostrea gigas. Master's thesis, Department of Fisheries and Wildlife, 85. Oregon State University, OR.
Maki, J.S., Rittschof, D., Schmidt, A.R., Snyder, A.G. and Mitchell, R. (1989) Factors controlling attachment of bryozoan larvae: a comparison of bacterial films and unfilmed surfaces. Biological Bulletin, 177: 295-302.
Martinez, G., Aguilera, C. and Campos, E.O. (1999) Induction of settlement and metamorphosis of the scallop Argopecten purpuratus Lamarck by excess K+ and epinephrine: energetic costs. Journal of Shellfish Research, 18: 41-46.
Min, K.S., Chang, Y.J., Park, D.W., Jung, C.G., Kim, D.H. and Kim, G.H. (1995) Studies on rearing conditions for mass seedling production in Pacific oyster larvae, Crassostrea gigas (Thunberg). bulletin of National Fisheries Research and Development Agency, 49: 91-111.
Min. S.K., Kim, T.I., Hur, S.B., Hur, Y.B., Chun, C.Y. and Kim, D.H. (1999) Growth and survival of the artificial and natural seeding in the Pacific oyster, Crassostrea gigas (Thunberg). bulletin of National Fisheries Research and Development Agency, 57: 43-53.
Morse, D.E. (1990) Recent progress in larval settlement and metamorphosis: closing the gaps between molecular biology and ecology. Bulletin of marine Science, 46: 465-483.
Quayle, D.B. and Newkirk, G.F. (1989) Farming Bivalve Molluscs: Methods for Study and Development. Advances in World Aquaculture, Vol. 1. The World Aquaculture Society In Assoc. with The International Development Research Centre. 294. The World Aquaculture Society. Baton Rouge, LA.
Rodriguez, S.R., Ojeda, F.P. and Inestrosa, N.C. (1993) Settlement of benthic marine invertebrates. Marine Ecological Progress of Service, 97: 193- 207.
Supan, J. (1987). Using Remote Setting to produce Seed Oyster in Louisiana and the Gulf Coastal Region. Louisiana Sea Grant College Program. 47. Louisiana State University, Baton Rouge, LA.
Swanson, R.L., de Nys, R., Huggett, M.J., Green, J.K., Steinberg, P.D. (2006) In situ quantification of a natural settlement cue and recruitment of the Australian sea urchin Holopneustes purpurascens. Marine Ecological Progress of Services, 314: 1-14.
Tamburri, M.N., Zimmer-Faust, R.K. and Tamplin, M.L. (1992) Natural sources and properties of chemical inducers mediating settlement of oyster larvae: a re-examination. Biological Bulletin, 183: 327-338.
Tan, S.H. (1993) Aspects on Biology and Larval Development of Tropical Oyster, Crassostrea belcheri (Sowerby). Master's thesis, School of Biological Sciences University. 221. Sc. Malaysia.
Tettelbach, S.T. and Rhodes, E.W. (1981) Combined effects of temperature and salinity on embryos and larvae of the northern bay scallop, Argopecten irradians irradians. Marine Biology, 63: 249-256.
Walch, M., Weiner, R.M., Colwell, R.R. and Coon, S.L. (1999) Use of l-DOPA and soluble bacterial products to improve set of Crassostrea virginica (Gmelin, 1791) and C. gigas (Thunberg, 1793). Journal of Shellfish Research, 18: 133-138.
Weiner, R.M., Walch, M., Labare, M.P., Bonar, D.B. and Colwell, R.R. (1989) Effect of biofilms of the marine bacterium Alteromonas colwelliana (LST) on set of the oysters Crassostrea gigas (Thunberg, 1793) and C. virginica (Gmelin, 1791). Journal of Shellfish Research, 8: 117-123.
Yu, X., He, W., Gu, J.D., He, M. and Yan, Y. (2008) The effect of chemical cues on settlement of pearl oyster Pinctada fucata martensii (Dunker) larvae. Aquaculture, 277: 83-91.
Zhao, B. and Qian, P.Y. (2002) Larval settlement and metamorphosis in the slipper limpet Crepidula onyx (Sowerby) in response to conspecific cues and the cues from biofilm. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 269: 39-51.
Zimmer-Faust, R.K. and Tamburri, M.N. (1994) Chemical identity and ecological implications of a waterborne, larval settlement cue. Limnology and Oceanography, 39: 1075-1087.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.