$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

갯지렁이(Perinereis aibuhitensis)에서 분리한 광염성 해양 미생물 Bacillus sp. EBW4의 특성 및 유기물 분해능 분석
Characterization and Organic Hydrocarbons Degradation Potential of Euryhaline Marine Microorganism, Bacillus sp. EBW4 Isolated from Polychaete (Perinereis aibuhitensis) 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.49 no.1, 2013년, pp.38 - 45  

신세연 (순천대학교 환경교육과) ,  (순천대학교 환경교육과) ,  이상석 (순천대학교 동물자원학과) ,  이동헌 (제주대학교 기초과학연구소) ,  강경호 (전남대학교 수산양식학부) ,  강형일 (순천대학교 환경교육과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

본 연구에서는 연안갯벌 갯지렁이(Perinereis aibuhitensis)에서 분리한 광염성 미생물, Bacillus sp. EBW4의 특성과 다양한 환경조건에서 유기물 분해능을 분석하였다. 16S rRNA 염기서열에 기초하여 동정한 결과, 균주 EBW4는 Bacillus hemicentroti $JSM076093^T$와 98.3%, Bacillus hwajinponensis SW-$72^T$와 97.96% 그리고 Bacillus algicoa $KMM3737^T$와 96.28%의 상동성을 보였다. EBW4의 생장 가능한 온도 범위는 $4-40^{\circ}C$, 염분도 범위는 0-17%, pH 범위는 5-9로 나타나 EBW4는 광염성 균주로 밝혀졌다. EBW4의 세포막을 구성하는 주요 지방산으로는 anteiso $C_{15:0}$, iso $C_{16:0}$, anteiso $C_{17:0}$, iso $C_{14:0}$ 등으로 각각 48.2, 12.1, 11.6, 9.4% 비율로 나타났다. EBW4는 탄수화물, 단백질, 지방 등 다양한 고분자 유기물을 분해할 수 있는 DNase, amylase, protease, lipase 등의 효소 활성뿐만 아니라, alkaline phosphatase, esterase (C4), leucine arylamidase 그리고 ${\alpha}$-chymotrypsin 효소활성도 가지고 있었다. 다양한 염분 농도 조건에서 합성폐수를 이용한 실험에서 EBW4은 조사한 모든 범위의 염분 조건에서도 유기물 분해능이 우수하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, euryhaline marine microorganism, Bacillus sp. strain EBW4 isolated from polychaete (Perinereis aibuhitensis) of Suncheon Bay was physiologically, biochemically and genetically characterized. Based on 16S rRNA sequence, EBW14 was found to share 98.25% similarity with Bacillus hemicentr...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • Bacillus는 다양한 고분자 물질 분해능이 있는 것으로 알려져 있어, DNA, 셀룰로오스, 녹말, 카세인 그리고 Tween 20, Tween 40, Tween 60, Tween 80이 포함된 MA 고체 배지에 본 연구에서 분리한 균주 EBW4를 접종한 후, 이들 고분자 물질 분해에 관련된 효소, DNase, cellulase, amylase, protease 그리고 lipase 활성이 있는지에 대해 조사하였다. 균주의 핵산 분해능은 DNA 물질이 포함된 배지에 접종 후 30℃에서 3일 배양 후 1 M HCl을 떨어뜨렸을 때 균체 주변에 생성되는 투명환으로, cellulose 분해능은 congo red로 30분간 염색 후 1 M NaCl을 이용하여 5분간 탈색하여 형성된 투명환으로, 녹말 분해는 iodine으로 30분 염색 후 1 M NaCl로 5분간 탈색하여 형성된 투명환으로 판단하였다.
  • 본 연구에서는 배지별 생장여부와 온도, pH, 염도 등 세 가지 환경 조건을 달리하여 균주의 생장 여부를 조사하였다. 배지별 균 생장능은 Marine Ager (MA), Luria-Bertani (LB), Tryptic Soy Agar (TSA), Nutrient Agar (NA), R2A 배지에서 30℃에 배양하여 조사하였으며, 모두 Difco 제품을 사용하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
Bacillus 종들이 숙주에게 이로운 능력을 가진 것으로 연구된 사례는 무엇이 있는가? Gatesoupe (1999)는 Bacillus가 소화계와 면역계를 촉진하는 능력이 있어 프로바이오틱스(probiotics)로 사용할 수 있음을 보고한 바 있으며, Bacillus subtilis는 단백질, 탄수화물, 지질 분해 효소 등 다양한 효소들을 생산할 수 있는 능력으로 인하여 숙주의 자연적 소화 활동에 기여하는 것으로 알려져 있다(Verschuere et al., 2000; Ziaei-Nejad et al., 2006). 이외에도 B. subtilis는 항미생물제를 생산하거나 영양과 공간에 대한 경쟁을 통하여 잠재적 병원미생물에 의한 피해를 방지하는 기능도 있는 것으로 알려져 있다(Vaseeharan and Ramasamy, 2003). 해양 어류에서 흔하게 나타나는 B. pumilus (Sugita et al., 1998)는 세포외 프로테아제, 아밀라아제, 셀룰라아제 등 소화 활동에 관련된 주요 효소를 (Ghosh et al., 2002), 그리고 B. licheniformis는 항바이러스제를 생산하는 것으로 보고되어 있다(Arena et al., 2006). Bacillus는 어류 및 새우와 같은 수산양식에도 유용하게 활용할 수 있는 것으로 알려져 있으며, B. subtilis를 B. licheniformis 또는 B. pumilus와 함께 송어에 투여하였을 때 송어의 성장과 면역 저항 성을 향상시킬 수 있음이 알려져 있고(Raida et al., 2003; Bagheri et al., 2008), Bacillus의 몇몇 종은 새우 양식에서 항생제 대체제로 제안되고 있다(Banerjee et al., 2007).
갯지렁이 Sabella spallanzanii는 세균에 관하여 어떤 능력이 있다고 보고되었는가? , 2000). 갯지렁이 Sabella spallanzanii는 주위 환경으로부터 Bacillus를 비롯하여 다양한 세균을 축적하고 농축할 수 있는 능력이 있음이 보고된 바 있다 (Stabili et al., 2006).
Bacillus subtilis는 숙주에서 어떤 역할을 하는가? Gatesoupe (1999)는 Bacillus가 소화계와 면역계를 촉진하는 능력이 있어 프로바이오틱스(probiotics)로 사용할 수 있음을 보고한 바 있으며, Bacillus subtilis는 단백질, 탄수화물, 지질 분해 효소 등 다양한 효소들을 생산할 수 있는 능력으로 인하여 숙주의 자연적 소화 활동에 기여하는 것으로 알려져 있다(Verschuere et al., 2000; Ziaei-Nejad et al.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (47)

  1. Arena, A., Maugeri, T.L., Pavone, B., Iannello, D., Gugliandolo, C., and Bisignano, G. 2006. Antiviral and immunoregulatory effect of a novel exopolysaccharide from a marine thermotolerant Bacillus licheniformis. Int. Immunopharmacol. 6, 8-13. 

  2. Bagheri, T., Hedayati, S.A., Yavari, V., Alizade, M., and Farzanfar, A. 2008. Growth, survival and gut microbial load of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turk. J. Fish. Aquat. Sci. 8, 43-48. 

  3. Banerjee, S., Devaraja, T.N., Shariff, M., and Yusoff, F.M. 2007. Comparison of four antibiotics with indigenous marine Bacillus spp. in controlling pathogenic bacteria from shrimp and Artemia. J. Fish Dis. 30, 383-389. 

  4. Bishop, P.J. and Neuman, G. 1970. The history of the Ziehl-Neelsen stain. Tubercle. 51, 196. 

  5. Bryan, G.W. and Gibbs, P.E. 1987. Polychaete common ragworms as indicators of heavy-metal availability in marine deposits, pp. 37-39. In Capuzzo, J.M. and Kester, D.R. (eds.), Biological Processes and Wastes in the Oceans. Robert E Krieger Publishing Co., Malabar, Florida, USA. 

  6. Campos, L.C., Su, M.F.J., Graham, N.J.D., and Smith, S.R. 2002. Biomass development in slow sand filters. Water Res. 36, 4543-4551. 

  7. Chen, Y.G., Zhang, Y.Q., He, J.W., Klenk, H.P., Xiao, J.Q., Zhu, H.Y., Tang, S.K., and Li, W.J. 2011. Bacillus hemicentroti sp. nov., a moderate halophile isolated from a sea urchin. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 61, 2950-2955. 

  8. Chun, J., Lee, J.H., Jung, Y., Kim, M., Kim, S., Kim, B.K., and Lim, Y.W. 2007. EzTaxon : a web-based tool for the identification of prokaryotes based on 16S ribosomal RNA gene sequences. Int. J. Syst. Evolution Microbiol. 57, 2259-2261. 

  9. Davidson, J., Helwig, N., and Summerfelt, S.T. 2008. Fluidized sand biofilters used to remove ammonia, biochemical oxygen demand, total coliform bacteria, and suspended solids from an intensive aquaculture effluent. Aquacult. Engineer. 39, 6-15. 

  10. Felsenstein, J. 1985. Confidence limits on phylogenies : an approach using the bootstrap. Evolution 39, 783-791. 

  11. Fourcy, D., Jumel, A., Heydorff, M., and Lagadic, L. 2002. Esterases as biomarkers in Nereis (Hediste) diversicolor exposed to temephos and Bacillus thuringiensis var. israelensis used for mosquito control in coastal wetlands of Morbihan (Brittany, France). Mar. Environ. Res. 54, 755-759. 

  12. Fujioka, Y., Shimoda, T., and Srithong, C. 2007. Diversity and community structure of macrobenthic fauna in shrimp aquaculture ponds of the Gulf of Thailand. Jap. Agric. Res. Quart. 41, 163-172. 

  13. Gatesoupe, F.J. 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquacult. 180, 147-165. 

  14. Ghosh, K., Sen, S.K., and Ray, A.K. 2002. Characterization of bacilli isolated from the gut of rohu, Labeo rohita fingerlings and its significance in digestion. J. Appl. Aquacult. 12, 33-42. 

  15. Gili, J.M. and Coma, R. 1998. Benthic suspension feeders : their paramount role in littoral marine food webs. Trends Ecol. Evol. 13, 316-321. 

  16. Gomez-Gil, B., Roque, A., and Turnbull, J.F. 2000. The use and selection of probiotic bacteria for use in the culture of larval aquatic organisms. Aquacult. 191, 259-270. 

  17. Guo, H., Luo, S., Chen, L., Xiao, X., Xi, Q., Wei, W., Zeng, G., Liu, C., Wan, Y., and Chen, J. 2010. Bioremediation of heavy metals by growing hyperaccumulaor endophytic bacterium Bacillus sp. L14, Bioresour. Technol. 101, 8599-8605. 

  18. Guncheva, M. and Zhiryakova, D. 2011. Catalytic properties and potential applications of Bacillus lipases. J. Mol. Cat. B Enzym. 68, 1-21. 

  19. Hall, T. 2007. BioEdit. Biological sequence alignment editor for Win95/98/NT/2K/XP. Ibis Biosciences, Carlsbad, CA, USA. 

  20. Hovda, M.B., Sivertsvik, M., Lunestad, B.T., Lorentzen, G., and Rosnes, J.T. 2007. Characterisation of the dominant bacterial population in modified atmosphere packaged farmed halibut (Hippoglossus hippoglossus) based on 16S rDNA-DGGE. Food Microbiol. 24, 362-371. 

  21. Hucker, G.J. and Cohn, H.J. 1923. Methods of Gram staining. Tech. Bull. N.Y. State Agric. Exp. Sta. 93. 

  22. Hugh, R. and Leifson, E. 1953. The taxonomic significance of fermentative versus oxidative metabolism of carbohydrates by various Gram-negative bacteria. J. Bacteriol. 66, 24-26. 

  23. Ivanova, E.P., Alexeeva1, Y.A., Zhukova, N.V., Gorshkova, N.M., Buljan, V., Nicolau, D.V., Mikhailov, V.V., and Christen, R. 2004. Bacillus algicola sp. nov., a novel filamentous organism isolated from brown alga Fucus evanescens. System. Appl. Microbiol. 27, 301-307. 

  24. Jeffries, C.D., Holtman, D.F., and Guse, D.G. 1957. Rapid method for determining the activity of microorganisms on nucleic acids. J. Bacteriol. 75, 590-591. 

  25. Joo, H.-S., Kumar, C.G., Park, G.-C., Paik S.R., and Chang, C.-S. 2004. Bleach-resistant alkaline protease produced by Bacillus sp. isolated from the Korean polychaete, Periserrula leucophryna. Process Biochem. 39, 1441-1447. 

  26. Kapdan, I.K. and Erten, B. 2007. Anaerobic treatment of saline wastewater by Halanaerobium lacusrosei. Process Biochem. 42, 449-453. 

  27. Kennedy, S.B., Tucker, J.W., Neidig, C.L., Vermeer, G.K., Cooper, V.R., Jarrell, J.L., and Sennett, D.G. 1998. Bacterial management strategies for stock enhancement of warm water marine fish : a case study with common snook (Centropomus undecimalis). Bull. Mar. Sci. 62, 573-588. 

  28. Kumar, S., Nei, M., Dudley, J., and Tamura, K. 2008. Mega : a biologist-centric software for evolutionary analysis of DNA and protein sequences. Brief Bioinform. 9, 299-306. 

  29. Lane, D.J. 1991. 16S/23S rRNA sequencing. In Stackebrandt, E. and Goodfellow, M. (eds.), Nucleic acid techniques in bacterial systematics. pp. 115-75. John Wiley and Sons, New York, N.Y., USA. 

  30. Maniatis, T., Fritsch, E.F., and Sambrook, J. 1982. Molecular cloning. cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., USA. 

  31. Mikesell, M.D., Kukor, J.J., and Olsen, R.H. 1993. Metabolic diversity of aromatic hydrocarbon-degrading bacteria from a petroleumcontaminated aquifer. Biodegradation 4, 249-259. 

  32. Moeller, M. 1891. Ueber eine neue Methode der Sporenfarbung. Zbl. Bakt. I. Abt. Orig. 10, 273-277. 

  33. Moriarty, D.J.W. 1998. Control of luminous Vibrio species in penaeid aquaculture ponds. Aquatic zooremediation: deploying animals to remediate contaminated aquatic environments. Aquacult. 164, 351-358. 

  34. Orejas, C., Gili, J.M., Arntz, W.E., Ros, J.D., Lopez, P.J., Teixido, N., and Filipe, P. 2000. Benthic suspension feeders, key players in Antarctic marine ecosystems. Contribut. Sci. 1, 299-311. 

  35. Perez, E., Blasco, J., and Sole, M. 2004. Biomarker responses to pollution in two invertebrate species: Scrobicularia plana and Nereis diversicolor from the Cadiz bay (SW Spain). Mar. Environ. Res. 58, 275-279. 

  36. Palacios, G.L. and Timmons, M.B. 2001. Determining design parameters for recovery of aquaculture wastewater using sand beds. Aquacult. Engineer. 24, 289-299. 

  37. Prieur, D., Mevel, G., Nicolas, J.L., Plusquellec, A., and Vigneulle, M. 1990. Interactions between bivalve molluscs and bacteria in the marine environment. Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev. 28, 277-352. 

  38. Raida, M.K., Larsen, J.L., Nielsen, M.E., and Buchmann, K. 2003. Enhanced resistance of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), against Yersinia ruckeri challenge following oral administration of Bacillus subtilis and B. licheniformis (BioPlus2B). J. Fish. Dis. 26, 495-498. 

  39. Saitou, N. and Nei, M. 1987. The neighbor-joining method : a new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol. Biol. Evol. 4, 406-425. 

  40. Stabili, L., Licciano, M., Giangrande, A., Fanelli, G., and Cavallo, R.S. 2006. Sabella spallanzanii filter-feeding on bacterial community: ecological implications and applications. Mar. Environ. Res. 61, 74-92. 

  41. Sugita, H., Hirose, Y., Matsuo, N., and Deguchi, Y. 1998. Production of the antibacterial substance by Bacillus species strain NM12, an intestinal bacterium of Japanese coastal fish. Aquacult. 165, 269-280. 

  42. Taubel, M., Kampfer, P., Buczolits, S., Lubitz, L., and Busse, H.-J. 2003. Bacillus barbaricus sp. nov., isolated from an experimental wall painting. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 53, 725-730. 

  43. Vaseeharan, B. and Ramasamy, P. 2003. Control of pathogenic Vibrio spp. by Bacillus subtilis BT23, a possible probiotic treatment for black tiger shrimp Penaeus monodon. Lett. Appl. Microbiol. 36, 83-87. 

  44. Verschuere, L., Rombaut, G., Sorgeloos, P., and Verstraete, W. 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiol. Mol. Biol. Res. 64, 655-671. 

  45. Vigneswaran, S., Ngo, H.H., and Wee, K.L. 1999. Effluent recycle and waste minimisation in prawn farm effluent. J. Cleaner Prod. 7, 121-126. 

  46. Yoon, J.H., Kim, I.G., Kang, K.H., Oh, T.K., and Park, Y.H. 2004. Bacillus hwajinponensis sp. nov. and an unnamed Bacillus genomospecies, novel members of Bacillus rRNA group 6 isolated from sea water of the East Sea and the Yellow Sea in Korea. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 54, 803-808. 

  47. Ziaei-Nejad, S., Rezaeib, M.H., Takamic, G.A., Lovettd, D.L., Mirvaghefia, A., and Shakourie, M. 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp Fenneropenaeus indicus. Aquacult. 252, 516-524. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로