The experiment was carried out to analyze the inhibition effect of plant pathogenic fungi and growth promotion activity induced by the bacterial strains isolated from peatmoss. Among the isolated bacterial strains, B10-2, B10-4, B10-5 and B10-6 which showed more than 30% inhibition rate against Botr...
The experiment was carried out to analyze the inhibition effect of plant pathogenic fungi and growth promotion activity induced by the bacterial strains isolated from peatmoss. Among the isolated bacterial strains, B10-2, B10-4, B10-5 and B10-6 which showed more than 30% inhibition rate against Botrytis cinerea and Rhizoctonia solani in vitro, were further analyzed in the greenhouse for the growth promotion activity on lettuce (Lactuca sativa), pak-choi (Brassica compestris L. ssp. chinensis) and Chinese cabbage (Brassica campestris L. ssp. pekinensis). The results showed the treatment of B10-4 on lettuce showed the highest growth promotion activity with the leaf area ($169.17cm^2$), fresh weight (leaf: 40.29 g, root: 8.80 g)and dry weight (leaf: 11.24 g, root: 4.17 g), which was about two folds as compared to control. On pak-choi, the growth promotion rate was the highest with the leaf area of $112.87cm^2$, leaf fresh weight of 60.70 g, root fresh weight of 3.37 g, leaf dry weight of 14.34 g, and root dry weight of 1.90 g. As a result of treatment of B10-13 on chinese cabbage, the growth promotion rate was the highest with the leaf area ($293.56cm^2$), fresh weight (leaf: 113.67 g, root: 2.40 g) and dry weight (leaf: 6.03 g, root: 0.53 g). The production of Indole Acetic Acid (IAA) and Indole-3-Butylic Acid (IBA) were also analyzed in these bacterial isolates. The IAA and IBA analyses were carried out in all bacterial isolates each day within the 5 days of incubation period. The highest production of IAA was observed with $112.57{\mu}g/mg$ protein in B10-4 after 3 days of incubation and IBA production was the highest in B10-2 with $58.71{\mu}g/mg$ protein after 2 days of incubation. Also, phosphate solubilizing activity was expressed significantly in B10-13 in comparison to that of other bacterial isolates. Bacterial identification showed that B10-2 was Bacillaceae bacterium and B10-5 was Bacillus cereus, B10-4 and B10-6 were Bacillus sp. and B-13 was Staphylococcus sp. by ITS sequence.
The experiment was carried out to analyze the inhibition effect of plant pathogenic fungi and growth promotion activity induced by the bacterial strains isolated from peatmoss. Among the isolated bacterial strains, B10-2, B10-4, B10-5 and B10-6 which showed more than 30% inhibition rate against Botrytis cinerea and Rhizoctonia solani in vitro, were further analyzed in the greenhouse for the growth promotion activity on lettuce (Lactuca sativa), pak-choi (Brassica compestris L. ssp. chinensis) and Chinese cabbage (Brassica campestris L. ssp. pekinensis). The results showed the treatment of B10-4 on lettuce showed the highest growth promotion activity with the leaf area ($169.17cm^2$), fresh weight (leaf: 40.29 g, root: 8.80 g)and dry weight (leaf: 11.24 g, root: 4.17 g), which was about two folds as compared to control. On pak-choi, the growth promotion rate was the highest with the leaf area of $112.87cm^2$, leaf fresh weight of 60.70 g, root fresh weight of 3.37 g, leaf dry weight of 14.34 g, and root dry weight of 1.90 g. As a result of treatment of B10-13 on chinese cabbage, the growth promotion rate was the highest with the leaf area ($293.56cm^2$), fresh weight (leaf: 113.67 g, root: 2.40 g) and dry weight (leaf: 6.03 g, root: 0.53 g). The production of Indole Acetic Acid (IAA) and Indole-3-Butylic Acid (IBA) were also analyzed in these bacterial isolates. The IAA and IBA analyses were carried out in all bacterial isolates each day within the 5 days of incubation period. The highest production of IAA was observed with $112.57{\mu}g/mg$ protein in B10-4 after 3 days of incubation and IBA production was the highest in B10-2 with $58.71{\mu}g/mg$ protein after 2 days of incubation. Also, phosphate solubilizing activity was expressed significantly in B10-13 in comparison to that of other bacterial isolates. Bacterial identification showed that B10-2 was Bacillaceae bacterium and B10-5 was Bacillus cereus, B10-4 and B10-6 were Bacillus sp. and B-13 was Staphylococcus sp. by ITS sequence.
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문제 정의
, 1980). 본 연구는 유용 미생물의 선발을 위해 초탄 분리한 유용 미생물을 이용하여 식물 병원 미생물에 길항력이 있고 선발된 유용 미생물이 상추, 청경채와 배추의 생장에 미치는 영향을 조사하고, 식물생장 촉진능력을 검증함으로써 미생물 농약 및 비료의 개발과 실용화를 위한 기초자료를 확립하고자 수행하였다.
제안 방법
PDA(Potato Dextrose Agar)배지에 배양한 식물 병원균을 직경 4 mm의 코르크 보러(Cork borer)를 이용하여 균 총을 떼어내어 새로운 PDA배지 한쪽 끝에 접종하고 3 cm 떨어진 곳에 분리한 균주를 접종하여 대치배양 하였다. 30℃에서 4일 배양 후, 식물 병원균과 유용 미생물 간의 거리를 측정하여 억제율(Inhibition rate)을 측정 하였다.
PDA(Potato Dextrose Agar)배지에 배양한 식물 병원균을 직경 4 mm의 코르크 보러(Cork borer)를 이용하여 균 총을 떼어내어 새로운 PDA배지 한쪽 끝에 접종하고 3 cm 떨어진 곳에 분리한 균주를 접종하여 대치배양 하였다. 30℃에서 4일 배양 후, 식물 병원균과 유용 미생물 간의 거리를 측정하여 억제율(Inhibition rate)을 측정 하였다.
초탄에서 분리한 총 14개의 유용 미생물의 길항성을 알아보기 위하여 식물병원균인 Botrytis cinerea, Rhizoctonia solani, Sclerotinia minor, Colletotrichum coccodes, Phytophthora drechsleri와 대치 배양하여 길항성을 확인하였다. 또한 식물 생육촉진(PGPR) 능력을 알아보기 위하여 온실에서 pot실험을 실시하여 확인 하였다. B.
미생물 분리를 위하여 초탄 1 g에 멸균 증류수 9mL을 첨가하여 30분 동안 교반하여, 초탄 현탁액을 10−4 희석하여 TSA(Tryptic Soy Agar)에서 100 μL씩 도말 접종하여 30℃에서 4일 동안 배양하여, 총 14개의 균주를 분리하였다.
상추와 청경채는 20 cm × 15 cm의 포트를 이용하였으며, 배추는 30 cm × 20 cm 의 포트를 이용하여 원예상토(서울바이오)와 토양(마사토)을 3:7(v/v)의 비율로 섞어 묘를 심어 실험하였다. 미생물은 TSA 배지에서 48시간 배양하여 각 포트 당 100mL씩 7일 간격으로 3회 관주 처리하였다. 실험 종료 후(3회 처리 후 7일경과) 처리된 상추, 청경채, 배추를 대상으로 잎을 선발하여 전체 엽면적, 지상부와지하부의 생체 중량, 건조 중량을 측정하였다.
5M FeCl3·6H2O; 75 mL) 2mL과 섞어 상온에서 30분 간 반응시켰다. 반응 후 분광광도계를 사용하여 450, 530 nm의 파장에서 흡광도를 측정하였다. 측정은 1, 2, 3, 4일에 일정한 시간에 채취하여 측정하였다.
5 g, agar; 15 g, distilled water;1 L)배지에 지름 8 mm의 paper disk를 깔고 각각의 균주를 20 μL씩 접종하였다. 배양 후, 페이퍼디스크(paper disk, Advantech, 8 mm) 주변의 저지원(clean zone) 형성 유무를 확인하였다.
상추와 청경채는 20 cm × 15 cm의 포트를 이용하였으며, 배추는 30 cm × 20 cm 의 포트를 이용하여 원예상토(서울바이오)와 토양(마사토)을 3:7(v/v)의 비율로 섞어 묘를 심어 실험하였다.
선발균주를 대상으로 식물 생장 촉진능을 조사하기 위해 pot 실험을 수행하였다. 상추의 경우 B10-4를 처리하였을 때 엽면적이 169.
선발된 균주을 대상으로 Pikovskaya’s agar 배지에 접종한 주변에 clean zone 형성의 유무로 인산 가용화능을 확인하였다.
5). 식물병원균과 대치 배양한 결과 B10-2, 4, 5, 6과 13의 길항력이 우수하여 이를 선발하여 추후의 실험에 사용하였다.
식물병원균에 길항력이 있고 식물호르몬의 생성능을 보이는 균주를 대상으로 온실에서 식물 생장 촉진 실험을 실시하였다. 상추와 청경채는 20 cm × 15 cm의 포트를 이용하였으며, 배추는 30 cm × 20 cm 의 포트를 이용하여 원예상토(서울바이오)와 토양(마사토)을 3:7(v/v)의 비율로 섞어 묘를 심어 실험하였다.
식물생장촉진호르몬 생성능을 조사하기 위해 IAA (Indole acetic acid)와 IBA (Indole-3-butyic acid)의 생성을 확인 하였다. 배지는 TSB (Tryptic Soy Broth) 배지를 사용하여 각각의 미생물을 3일 배양하여 준비하였다.
미생물은 TSA 배지에서 48시간 배양하여 각 포트 당 100mL씩 7일 간격으로 3회 관주 처리하였다. 실험 종료 후(3회 처리 후 7일경과) 처리된 상추, 청경채, 배추를 대상으로 잎을 선발하여 전체 엽면적, 지상부와지하부의 생체 중량, 건조 중량을 측정하였다. 실험은 한 식물체 당 5개씩 3반복으로 실시하였다.
실험 종료 후(3회 처리 후 7일경과) 처리된 상추, 청경채, 배추를 대상으로 잎을 선발하여 전체 엽면적, 지상부와지하부의 생체 중량, 건조 중량을 측정하였다. 실험은 한 식물체 당 5개씩 3반복으로 실시하였다.
유용 미생물의 불용성 인산 가용화를 확인하기 위해 분리된 미생물을 TSB 배지에서 2일 동안 배양 후, 불용성 인산(Ca3(PO4)2)이 0.5% 포함된 Pikovskaya’s agar(Ca3(PO4); 5 g, glucose; 10 g, (NH4)2SO4; 0.5 g, KCl; 0.2 g, MnSO4; 0.01 g, FeSO4; 0.005 g, yeast extract; 0.5 g, agar; 15 g, distilled water;1 L)배지에 지름 8 mm의 paper disk를 깔고 각각의 균주를 20 μL씩 접종하였다.
IAA와 IBA의 전구물질인 L-tryptophan을 5mM 첨가한 TSB 배지 100mL에 각각의 배양액 (OD 600 nm; 2 × 108)을 10 mL을 접종하여 130 rpm 으로 30에서 배양하였다. 접종 배양 후, 각 각의 미생물 배양액을 1mL씩 채취하여 식물 호르몬 측정을 하였다. 배양액 1mL을 10,000 rpm으로 20분 동안 원심 분리하여 상등액 0.
초탄에서 분리한 총 14개의 유용 미생물의 길항성을 알아보기 위하여 식물병원균인 Botrytis cinerea, Rhizoctonia solani, Sclerotinia minor, Colletotrichum coccodes, Phytophthora drechsleri와 대치 배양하여 길항성을 확인하였다. 또한 식물 생육촉진(PGPR) 능력을 알아보기 위하여 온실에서 pot실험을 실시하여 확인 하였다.
반응 후 분광광도계를 사용하여 450, 530 nm의 파장에서 흡광도를 측정하였다. 측정은 1, 2, 3, 4일에 일정한 시간에 채취하여 측정하였다. 표준 IAA (I2886, Sigma Aldrich Co.
대상 데이터
이는 토양 내에 존재하는 병원 미생물에 대해 우수한 방제 효과를 가질 것으로 기대된다. B10-5와 B10-13과 함께 좋은 길항성을 보인 B10-2, 4와 B10-6을 선발하여 식물 생장 촉진 활성 검정에 사용하였다. 식물 생장 촉진 근권 세균 (PGPR)은 병원 미생물의 생장을 억제하고 다양한 기작으로 생장을 촉진하는데 특히 auxin(IAA와 IBA), gibberellin (GA3), cytokinin (zeatin)과 같은 식물 호르몬을 생산하여 식물의 줄기, 뿌리 그리고 열매의 발달을 촉진한다.
식물생장촉진호르몬 생성능을 조사하기 위해 IAA (Indole acetic acid)와 IBA (Indole-3-butyic acid)의 생성을 확인 하였다. 배지는 TSB (Tryptic Soy Broth) 배지를 사용하여 각각의 미생물을 3일 배양하여 준비하였다. IAA와 IBA의 전구물질인 L-tryptophan을 5mM 첨가한 TSB 배지 100mL에 각각의 배양액 (OD 600 nm; 2 × 108)을 10 mL을 접종하여 130 rpm 으로 30에서 배양하였다.
사용된 primer는 universal primer 27F; 5'-AGAGTTTGATCTGGCTCAG-3'와 1492R; 5'- TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3'을 이용하였다.
유용 미생물의 항균 활성을 검정하기 위해 분리된 14개의 균주에 대한 항균실험을 위하여 농업유전자원센터(Genebank)에서 분양 받은 식물병원균 Rhizoctonia solani (KACC No. 401-01), Sclerotinia minor (KACC No. 41067), Botrytic cinerea (KACC No. 40573), Phytophthora drechsleri (KACC No. 40190), Colletotrichum coccodes (KACC No. 40009)와 대치배양(Dual culture) 하였다.
측정은 1, 2, 3, 4일에 일정한 시간에 채취하여 측정하였다. 표준 IAA (I2886, Sigma Aldrich Co., USA)와 IBA (I5386, Sigma Aldrich Co., USA)를 이용하여 측정하였다. 단백질량은 Bradford method를 이용하여 균주별 시료를 측정하였다.
데이터처리
모든 실험의 결과는 SAS (Version 9.2, SAS institute inc., Cary, USA)를 이용 하여 통계 분석하였고 Duncan’s Multiple Range Test (DMRT, P = 0/05)로 유의성 검정을 실시하였다.
희석하여 TSA(Tryptic Soy Agar)에서 100 μL씩 도말 접종하여 30℃에서 4일 동안 배양하여, 총 14개의 균주를 분리하였다. 분리된 세균은 활성검정을 거쳐 최종 선발된 5개의 균주에 대하여 16s rDNA 분석을 통하여 얻어진 sequencing은 BlastX 프로그램을 이용하여 최종 확인하였다. 사용된 primer는 universal primer 27F; 5'-AGAGTTTGATCTGGCTCAG-3'와 1492R; 5'- TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3'을 이용하였다.
이론/모형
, USA)를 이용하여 측정하였다. 단백질량은 Bradford method를 이용하여 균주별 시료를 측정하였다.
성능/효과
14개 분리 균주의 식물 병원균 Rhizoctonia solani와 대치배양한 결과 B10-2, 3, 4, 5, 6, 13에서 좋은 활성의 길항력을 확인 할 수 있었다. B10-5는 Rhizoctonia solani 에 대하여 38.
6). 4일 배양 기간 동안 선발된 균주 모두 IAA와 IBA를 생산했고, 배양 2일 경과 후, 가장 많은 IAA를 생산함을 확인하다. B10-4의 경우 176.
52%로 가장 낮게 나타났다. B10-13은 다섯 가지 식물 병원균에 대해 길항성을 나타냈고 모든 병원균에서 38% 이상의 길항성을 나타냈고 특히 S. minor, C. cocodes와 P. drechsleri에서는 40%가 넘는 좋은 길항성을 나타냈다. 뒤를 이어 B10-5의 경우도 5가지 식물 병원균에서 모두 길항성을 나타냈으며 병원균에 대해 35%가 넘는 길항성을 나타냈다.
14개 분리 균주의 식물 병원균 Rhizoctonia solani와 대치배양한 결과 B10-2, 3, 4, 5, 6, 13에서 좋은 활성의 길항력을 확인 할 수 있었다. B10-5는 Rhizoctonia solani 에 대하여 38.11%의 생장 억제율을 나타냈고, B10-5 는 37.41%의 억제율을 나타냈다. Rhizoctonia solani에 길항성이 있는 6개 균주(B10-2, 3, 4, 5, 6과 13)의 높은 수준을 나타냈다(Table 1, Fig.
50% 로 길항성을 나타냈다. C. cocodes에 길항성을 보인 유용 미생물은 B10-3, 4, 5, 6, 7, 10, 11, 13, B10-14로 확인됐고, 그 중 B10-5가 41.17%로 가장 좋은 길항성을 나타냈다. C.
Colletotrichum coccodes과 대치 배양한 결과, B10-5는 41.17%로 가장 높은 길항력을 보였고, B10-13 경우 40.47%로 높은 길항력을 나타냈다(Table 1, Fig. 4).
IAA를 가장 많이 생산하는 시간은 조금씩 달랐지만 B10-2, 5와 B10-13 유용 미생물은 각각 42.8, 42.3, 51.0 μg/mg protein 으로 생성함을 확인하였다(Fig. 7A).
47%로 좋은 길항성을 나타냈다. P. drechsleri와 유용 미생물을 대치 배양 결과 B10-2, 3, 4, 5, 6, 8, 10과 B10-13이 길항성을 보였고 B10-13이 45.47%로 가장 좋은 길항성을 나타냈다. 길항성을 보인 균주 중에서 P.
Phytophthora drechsleri를 분리 균주와 대치 배양 한 결과, B10-13이 45.47%, B10-5 경우 42.35%로 높은 길항력을 보였다(Table 1, Fig. 5). 식물병원균과 대치 배양한 결과 B10-2, 4, 5, 6과 13의 길항력이 우수하여 이를 선발하여 추후의 실험에 사용하였다.
23%로 좋은 활성을 나타냈다. R. solani를 유용 미생물과 대치 배양한 결과 유용 미생물 B10-2, 3, 4, 5, 6과 B10-13이 길항성을 나타냈다. B.
41%의 억제율을 나타냈다. Rhizoctonia solani에 길항성이 있는 6개 균주(B10-2, 3, 4, 5, 6과 13)의 높은 수준을 나타냈다(Table 1, Fig. 2).
09%의 높은 길항성을 나타냈다. S. minor와 대치 배양한 14개의 균주 중 B10-1, 2, 3, 4, 5, 6, 10, 12와 B10-13이 길항력을 보였고 그 중 B10-13은 40.47% 로 가장 좋은 길 항성을 나타냈다. B10-5가 37.
선발된 균주을 대상으로 Pikovskaya’s agar 배지에 접종한 주변에 clean zone 형성의 유무로 인산 가용화능을 확인하였다. 그 결과 다섯 가지 5균주 중 B10-13만 인산 가용화 능력이 있음을 확인 하였다(Table 2, Fig. 8B).
41%로 좋은 길항력을 보였다. 길항성을 보인 균주 모두 30%가 넘는 억제율을 나타냈고 균주들은 평균 35.09%의 높은 길항성을 나타냈다. S.
47%로 가장 좋은 길항성을 나타냈다. 길항성을 보인 균주 중에서 P. drechsleri와 B10-10을 대치 배양한 결과 값이 3.52%로 가장 낮게 나타났다. B10-13은 다섯 가지 식물 병원균에 대해 길항성을 나타냈고 모든 병원균에서 38% 이상의 길항성을 나타냈고 특히 S.
04 g으로 무게가 많이 나감을 알 수 있었다. 나머지 균들도 Control과 비교하였을 때 생장이 촉진됨을 알 수 있었고 활성이 가장 좋았던 B10-2를 제외한 나머지 유용 미생물은 비슷한 수준으로 나타났다. 식물 생장 촉진에는 큰 활성을 나타냈지만 다른 유용 미생물과 비교하여 IAA와 IBA 생산에선 낮은 수치를 나타냈던 B10-13은 인산 가용화 활성에선 B10-13만이 인산가용화 능이 있음을 확인할 수 있었다.
drechsleri에서는 40%가 넘는 좋은 길항성을 나타냈다. 뒤를 이어 B10-5의 경우도 5가지 식물 병원균에서 모두 길항성을 나타냈으며 병원균에 대해 35%가 넘는 길항성을 나타냈다. 이는 토양 내에 존재하는 병원 미생물에 대해 우수한 방제 효과를 가질 것으로 기대된다.
무처리군의경우 선발된 균주를 처리한 것 보다 확연히 크기가 작음을 확인 할 수 있었다. 또한 선발된 균주를 처리한 배추와 비교하여 해충의 피해를 더 많이 받음을 확인 할 수 있었다. B10-13은 물론 B10-5를 처리한 경우도 엽면적이 251.
56 cm2으로 가장 큰 식물 생장 촉진을 확인 할 수 있었다. 무처리군의경우 선발된 균주를 처리한 것 보다 확연히 크기가 작음을 확인 할 수 있었다. 또한 선발된 균주를 처리한 배추와 비교하여 해충의 피해를 더 많이 받음을 확인 할 수 있었다.
본 연구에서는 길항력이 우수했던 유용 미생물의 식물 생장 호르몬 IAA와 IBA의 생성능을 확인 한 결과 육안으로도 쉽게 B10-4와 B10-6이 IAA를 가장 많이 생산해 냄을 알 수 있었고 접종 배양 2일 후에 B10-4는 176.2 μg/mg으로 가장 많은 IAA를 생산해 냈고 IBA생산도 접종 배양 4일 후 58.7 μg/mg으로 가장 많은 양을 생산해 냄을 알 수 있었다.
분리균주와 Sclerotinia minor를 대치 배양한 결과 B10-13이 40.47%, B10-5는 37.50%의 길항력을 보였다. Sclerotinia minor의 경우 Sclerotinia minor의 균핵 형성도 지연시킴을 확인 할 수 있었다(Table 1, Fig.
유용 미생물의 IAA와 IBA의 우수한 생성능을 가지므로 식물의 생장을 효과적으로 촉진 할 수 있음을 추측하였다. 선발된 유용 미생물을 상추와 청경채에 관주 처리 결과 상추의 경우 B10-4가 엽면적, 생물중과 건물중 모두 가장 좋은 생장 촉진을 나타냈다. 엽면적은 Control 81.
나머지 균들도 Control과 비교하였을 때 생장이 촉진됨을 알 수 있었고 활성이 가장 좋았던 B10-2를 제외한 나머지 유용 미생물은 비슷한 수준으로 나타났다. 식물 생장 촉진에는 큰 활성을 나타냈지만 다른 유용 미생물과 비교하여 IAA와 IBA 생산에선 낮은 수치를 나타냈던 B10-13은 인산 가용화 활성에선 B10-13만이 인산가용화 능이 있음을 확인할 수 있었다. 따라서 B10-13은 식물이 흡수 할 수 있는 유리 인산을 토양 대에 풍부하게 존재하도록 형성할 것으로 사료된다.
식물병원균에 대한 길항성이 좋은 B10-2, 4, 5, 6, 13을 선발하여 식물생장촉진호르몬(IAA와 IBA) 생성 여부를 실험한 결과, 무처리와 비교하여 Salkowski reagent의 발색 정도가 상대적으로 붉은 색으로 짙게 변함으로써 5개의 유용 미생물 모두 IAA 생성능이 높음을 확인할 수 있다(Fig. 6). 특히, B10-4와 B10-6의 색이 가장 많이 변한 것을 확인 할 수 있다(Fig.
에서 모두 식물 생장촉진과 식물병원균을 억제하는 효과를 나타냈고 Staphylococcus sp. 역시 좋은 길항성과 많은 IBA를 생성, 인산 가용화 활성이 있음을 확인할 수 있었다. 이러한 결과를 토대로 초탄에서 분리한 이들 균주를 이용하여 다 기능성 미생물제제로써의 활용이 기대된다.
17 cm2로 가장 넓은 엽면적을나타냈다. 엽면적을 비교하였을 때 가장 뚜렷한 생장 촉진 결과를 확인할 수 있었고 뿌리의 생물중과 건물중은 Control 에 비해 생장이 촉진 되었음을 확인했지만 유용 미생물 간의 차이는 비슷한 수준이었다. 유용 미생물을 청경채에 처리한결과 B10-2를 처리하였을 때 Control 57.
유용 미생물을 청경채에 관주 처리한 결과 B10-2를 처리하였을 때 무처리군에 비해 두 배 이상 높은 생장 촉진 결과를 확인 할 수 있었다. 엽면적이 112.
엽면적을 비교하였을 때 가장 뚜렷한 생장 촉진 결과를 확인할 수 있었고 뿌리의 생물중과 건물중은 Control 에 비해 생장이 촉진 되었음을 확인했지만 유용 미생물 간의 차이는 비슷한 수준이었다. 유용 미생물을 청경채에 처리한결과 B10-2를 처리하였을 때 Control 57.44 cm2에 비해 약두 배 이상인 112.87 cm2으로 가장 좋은 활성을 보였고 잎의 생물중은 Control의 약 세 배 이상인 61.04 g으로 무게가 많이 나감을 알 수 있었다. 나머지 균들도 Control과 비교하였을 때 생장이 촉진됨을 알 수 있었고 활성이 가장 좋았던 B10-2를 제외한 나머지 유용 미생물은 비슷한 수준으로 나타났다.
수치가 떨어 졌어도 나타내는 수치가 낮은 수치가 아니기 때문에 IBA 생성이 유의한 수준이었다. 유용 미생물의 IAA와 IBA의 우수한 생성능을 가지므로 식물의 생장을 효과적으로 촉진 할 수 있음을 추측하였다. 선발된 유용 미생물을 상추와 청경채에 관주 처리 결과 상추의 경우 B10-4가 엽면적, 생물중과 건물중 모두 가장 좋은 생장 촉진을 나타냈다.
72 cm2로 높았다. 청경채의 경우 역시 다섯 가지 균주 모두에서 식물 생장 촉진능이 있음을 확인 할 수 있었다(Table 4, Fig. 10).
초탄에서 14개의 분리균과 Botrytis cinerea를 대치배양한 결과, 무처리와비교하였을 때 B10-2는 37.23%, B10-6은 35.29% 억제율을 보였고 B10-13은 38.07 %로 가장 높은 억제율을 보였다(Table 1, Fig. 1).
후속연구
뒤를 이어 B10-5의 경우도 5가지 식물 병원균에서 모두 길항성을 나타냈으며 병원균에 대해 35%가 넘는 길항성을 나타냈다. 이는 토양 내에 존재하는 병원 미생물에 대해 우수한 방제 효과를 가질 것으로 기대된다. B10-5와 B10-13과 함께 좋은 길항성을 보인 B10-2, 4와 B10-6을 선발하여 식물 생장 촉진 활성 검정에 사용하였다.
역시 좋은 길항성과 많은 IBA를 생성, 인산 가용화 활성이 있음을 확인할 수 있었다. 이러한 결과를 토대로 초탄에서 분리한 이들 균주를 이용하여 다 기능성 미생물제제로써의 활용이 기대된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
근권세균이란?
이들이 생물비료로서 주목 받고 있는 이유는 다양한 식물생장촉진 기작을 갖고 있기 때문이다. 식물생장촉진 미생물 중 근권세균(rhizobacteria)은 식물 뿌리 주변의 2~3 mm 범위에 사는 세균으로 이것들의 식물생장 촉진 기작은 식물생장호르몬 생성, 인산 가용화, 질소 고정능, 항생물질 분비에 의한 식물병원성 진균 제어 등 여러 가지가 있다. 근권에서 분리한 일부 토양미생물은 식물 생장이나 생산성을 증가시킬 수 있으며, 이러한 미생물은 일반적으로 PGPR(plant growth promoting rhizobacteria) 또는 중국의 일부 학자들에 의하여 yield increasing bacteria(YIB)라고 한다(Dey et al.
PGPR이 생성하는 식물 생장 호르몬은 무엇이 있습니까?
, 1995). 특히 대표적인 식물생장 호르몬인 auxin 종류인 Indole acetic acid(IAA)와 Indole-3-butyic acid(IBA) 뿐만 아니라 gibberellins, cytokinin, benzyl adenine(BA), zeatin, transzeatin과 같은 다양한 식물호르몬들이 근권 세균에 의해 생성되어 직·간접적으로 식물생장 촉진에 큰 역할을 한다 (Whitelaw and Harden, 1999). 이러한 특징의 PGPR을 통해 나타나는 다양한 생리활성 작용을 이용한 친환경적 농업에 대한 관심이 증가하고 있으며 이에 대한 다양한 연구들이 시도되고 있다(Mayak et al.
근권세균의 식물 생장 촉진 기작은 무엇이 있습니까?
이들이 생물비료로서 주목 받고 있는 이유는 다양한 식물생장촉진 기작을 갖고 있기 때문이다. 식물생장촉진 미생물 중 근권세균(rhizobacteria)은 식물 뿌리 주변의 2~3 mm 범위에 사는 세균으로 이것들의 식물생장 촉진 기작은 식물생장호르몬 생성, 인산 가용화, 질소 고정능, 항생물질 분비에 의한 식물병원성 진균 제어 등 여러 가지가 있다. 근권에서 분리한 일부 토양미생물은 식물 생장이나 생산성을 증가시킬 수 있으며, 이러한 미생물은 일반적으로 PGPR(plant growth promoting rhizobacteria) 또는 중국의 일부 학자들에 의하여 yield increasing bacteria(YIB)라고 한다(Dey et al.
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