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멜론 체세포배의 조직학적 특징
Histological Characteristics of Somatic Embryos in Melon (Cucumis melo L.) 원문보기

韓國資源植物學會誌 = Korean journal of plant resources, v.26 no.4, 2013년, pp.511 - 515  

최필선 (남부대학교 한방제약개발학과 약용식물형질전환연구소,) ,  권석윤 (한국생명공학연구원 그린바이오연구센터)

초록

멜론으로부터 체세포배를 얻기 위하여 유식물체의 배축 절편을 1 mg/L 2,4-D와 0.5 mg/L BA가 혼합첨가된 MS배지 치상하여 6주 동안 배양하였다. 배축절편으로부터 연한 노란색의 부드러운 캘러스 형성을 거쳐 형성된 체세포배중에는 2개의 자엽을 갖는 정상적인 형태의 체세포배(26%)와 합생 자엽을 갖는 나팔형의 비 정상적인 체세포배(74%)가 관찰되었다. 정상 체세포배의 하배축 부위에서는 원형의 전형성층 조직이 발달되었고, 자엽 절 부위로 이동되면서 점차 독립적으로 나뉘어져 자엽에서는 완전히 2개의 전형성층 조직으로 분화하였다. 그러나 합생 자엽을 갖는 나팔형의 체세포배에서는 하배축에서 발달된 원형의 전형층조직이 자엽 절과 자엽부위에서도 원형의 전형성층 조직으로 연결되어 있었다. 또한 2개의 자엽을 갖는 정상 및 합생 자엽을 갖는 비 정상 체세포배 tunica-corpus구조를 볼 수 없었으며 전형적인 dome구조도 관찰할 수 없었다. 이러한 결과는 체세포배에서 전형성층 조직의 분화는 자엽형성 및 유경조직 형성과 밀접한 관계가 있는 것으로 추측할 수 있다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Hypocotyls explants of melon seedling were cultured on Murashige and Skoog's (MS) medium supplemented with 1 mg/L 2,4-dichlorophenoxy acetic acid (2,4-D) and 0.5 mg/L benzyl aminopurine (BA) for 6 weeks to produce somatic embryos. In somatic embryos produced through intervening bright yellow friable...

주제어

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문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 멜론의 식물체 대량생산을 위한 기초 학술적 연구로서 기내배양과정에서 형성된 체세포배를 형태에 따라 분류하고, 이들의 자엽 형성 초기와 유경조직의 발생에 대한 조직학적 변화를 조사하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
멜론은 무엇인가? 멜론은 박과 작물에 속하는 일년생 초본식물로서 세계적으로 중요한 경제 작물 중 하나이다. 식물조직배양을 통해 기관발생이나 체세포배 발생이 가능하고, 다른 식물 종과 마찬가지로 조직절편으로부터 직접 또는 캘러스 형성을 거쳐 식물체를 생산할 수 있다(Tabei et al.
멜론 조직절편 배양과정에서 호르몬 조합이나 배양절편에 따라 어떤 것이 형성될 수 있는가? , 1994). 멜론 조직절편 배양과정에서 호르몬 조합이나 배양절편에 따라 체세포배가 형성될 수 있으며, 이러한 체세포배의 형태와 기능은 자연상태의 접합자배와 유사한 것으로 여겨져 왔다(Ammirato, 1987). 그러나 최근 일부 연구에서 체세포배와 접합자배는 형태와 기능적으로 많은 차이가 있고(Choi et al.
멜론은 식물조직배양을 통해 어떤 것이 가능한가? 멜론은 박과 작물에 속하는 일년생 초본식물로서 세계적으로 중요한 경제 작물 중 하나이다. 식물조직배양을 통해 기관발생이나 체세포배 발생이 가능하고, 다른 식물 종과 마찬가지로 조직절편으로부터 직접 또는 캘러스 형성을 거쳐 식물체를 생산할 수 있다(Tabei et al., 1991; Gray et al.
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참고문헌 (17)

  1. Ammirato, P.V. 1987. Organizational events during somatic embryogenesis. In Green C.E. (ed.), Plant Tissue and Cell Culture, Alan R Liss, New York, USA. pp. 57-81. 

  2. Buchheim, J.A., S.M. Colburn and J.P. Ranch. 1989. Maturation of soybean somatic embryos and the transition to plantlet growth. Plant Physiol. 89:768-775. 

  3. Choi, P.S., W.Y. Soh, D.Y. Cho and J.R. Liu. 2005. Relationship of cotyledon number with procambium differentiation in somatic embryogenesis of Codonopsis lanceolata L. Korean J. Plant Biotechnol. 32:135-138. 

  4. Choi, P.S., W.Y. Soh, D.Y. Cho and J.R. Liu. 1994. High frequency somatic embryogenesis and plant regeneration in seedling explants cultures of Melon (Cucumis melo L.). Korean J. Plant Tiss. Cult. 21:1-6. 

  5. Dos Santos, A.V.P., E.G. Cutter and M.R. Davey. 1983. Origin and development of somatic embryos in Medicago sativa L. (Alfalfa). Protoplasma 117:107-115. 

  6. Gray, D.J., D.W. McColley and M.E. Compton. 1993. High frequency somatic embryogenesis from quiescent seed cotyledon of Cucumis melo L., Cultivars. J. American Soc. Hort. Sci. 118:425-432. 

  7. Gray, D.J. and J.A. Mortensen. 1987. Initiation and maintenance of long term somatic embryogenesis from anther and ovaries of Vitis longii "Microsperma". Plant Cell Tiss. Org. Cult . 9:73-80. 

  8. Jelaska, S. 1974. Embryogenesis and organogenesis in pumpkin explants. Physiol. Plant. 31:257-261. 

  9. Kageyama, K., T. Komatsuda and K. Nakajima. 1990. Effects of sucrose concentration on morphology of somatic embryos from immature soybean cotyledons. Plant Tiss. Cult. Lett. 7:108-110. 

  10. Lee, K.S. and W.Y. Soh. 1993. Somatic embryogenesis and structural aberrancy of embryos in tissue cultures of Aralia cordata Thumb. Korean J. Plant Tiss. Cult. 20:77-84. 

  11. Liu, C.M., Z.H. Xu and N.H. Chua. 1993. Auxin polar transport is essential for the establishment of bilateral symmetry during early plant embryogenesis. Plant Cell 5:621-630. 

  12. Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15:473-497. 

  13. Orezyk, W. and S. Malepszy. 1985. In vitro culture of Cucumis sativus L. stabilizing effect of glycine on leaf protoplasts. Plant Cell Rep. 4:269-273. 

  14. Raghavan, V. 2004. Role of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) in somatic embryogenesis on cultured zygotic embryos of Arabidopsis: cell expansion, cell cycling, and morphogenesis during continuous exposure of embryos to 2,4-D. Amer. J. Bot. 91:1743-1756. 

  15. Soh, W.Y., P.S. Choi, D.Y. Cho and J.R. Liu. 2001. Plant regeneration from somatic embryos with anomalous cotyledons formed in cell cultures of Codonopsis lanceolata. Phytomorphology Golden Jubilee Issue 327-336. 

  16. Tabei, Y., T. Kanno and T. Nishio. 1991. Regulation of organogenesis and somatic embryogenesis by auxin in melon (Cucumis melo L.). Plant Cell Rep. 10:225-229. 

  17. Ziv, M. and G. Gadasi. 1986. Enhanced embryogenesis and plant regeneration from cucumber (Cucumis sativus L.) callus by activated charcoal in solid/liquid double layer cultures. Plant Sci. 47:115-122. 

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