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An uterus is female reproductive tract organ that affected estrus cycle. During a various changes occur at uterus in estrus cycle, one of them is body fluids secretion be called uterine fluid. Therefore, the objective of this study was to investigate the changes of protein patterns using two-dimensi...

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문제 정의

  • 이와 같은 연구 결과로부터 발정 주기에 따른 자궁액 내의 단백질 변화가 추측된다. 따라서 본 연구는 돼지에서 발정주기동안 자궁으로부터 분비되는 단백질과, 그 변화를 확인하기 위해 프로테오믹스 기법을 이용하여 자궁액 내에 존재하는 단백질을 확인하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
자궁이 성호르몬의 영향을 받아 어떻게 변화하는가? 자궁내막은 상피세포, 기질, 정맥과 자궁선으로 이루어져 있으며, 수정란의 착상이 일어나고, 자궁 근층은 혈관조직과 기질로 이루어져 자궁벽을 지지하는 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 이와 같은 자궁은 성호르몬의 영향을 받게 되는데, estrogen에 의해 난자가 성숙하고, progesterone에 의해 황체 형성을 하는 발정주기에 따라 형태학적, 생리학적 변화가 발생한다. 생리학적 변화로는 수정체 분비물을 균형있게 해주는 AQP1(Skowronski 등, 2011)과 지질대사에 관여하는 ore- xin(Tadeusz Kaminski 등, 2013)등 단백질에 많은 변화가 일어나고, 형태학적 변화로는 내막의 두께와 혈관의 분포에 따라 붉은 빛을 띄는 정도의 차이가 발생한다. 자궁 내막 내 자궁선의 분포에서도 변화가 일어나는데, 난포기에서 황체기로 갈수록 자궁내막 두께의 증가에 따라 자궁선의 크기와 수의 증가와 함께 분비선을 구성하는 상피세포와 기질이 유사분열을 하며 함께 증가한다.
호르몬에 따라 자궁 내막 내 자궁선의 분포에서 일어나는 변화는 무엇인가? 생리학적 변화로는 수정체 분비물을 균형있게 해주는 AQP1(Skowronski 등, 2011)과 지질대사에 관여하는 ore- xin(Tadeusz Kaminski 등, 2013)등 단백질에 많은 변화가 일어나고, 형태학적 변화로는 내막의 두께와 혈관의 분포에 따라 붉은 빛을 띄는 정도의 차이가 발생한다. 자궁 내막 내 자궁선의 분포에서도 변화가 일어나는데, 난포기에서 황체기로 갈수록 자궁내막 두께의 증가에 따라 자궁선의 크기와 수의 증가와 함께 분비선을 구성하는 상피세포와 기질이 유사분열을 하며 함께 증가한다.
자궁액 내의 단백질에 대한 선행 연구 결과는 어떠한가? 이런 자궁선은 수정란이나 태아의 발달 및 생존에 필수적인 물질의 이동 및 합성에 관여하며, 이에 따라 많은 종에서 자궁액에 대한 연구가 이루어졌다. 소에서 자궁액 단백질이 발정주기에 따라 변화하며, 혈청을 통해 이동된 후 자궁에서 합성 가능한 단백질을 발견하였으며(AlaviShoushtari 등, 2006), 돼지에서 발정주기에 따라 자궁 내막 내의 림프구, 호중구, 산호성 백혈구, 대식세포 등에서 침윤과 유통에 차이를 발견하였다(Kaeoket 등, 2001). 또한 양에서는 자궁 분비물이 착상 전의 배아에게 영양분을 공급한다는 것을 확인하였고(Ashworth 등, 1989), 사람의 생리주기에서 중간 분비기의 자궁액으로부터 다양한 단백질의 발현을 확인했다(Parmar 등, 2008). 이와 같은 연구 결과로부터 발정 주기에 따른 자궁액 내의 단백질 변화가 추측된다.
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참고문헌 (13)

  1. Ashworth CJ, Wilmut I, Sales DI (1989): Effect of the stage of the oestrous cycle and the frequency of sample collection on the composition of ovine uterine fluids. Anim Reprod Sci 21:213-221. 

  2. Henne A, Bruggemann H, Raasch C, Wiezer A, Hartsch T, Liesegang H, Johann A, Lienard T, Gohl O, Martinez-Arias R, Jacobi C, Starkuviene V, Schlenczeck S, Dencker S, Huber R, Klenk HP, Kramer W, Merkl R, Gottschalk G, Fritz HJ (2005): The genome se- zuence of the extreme thermophile Thermus thermophiles. J Biotechnol 22:547-553. 

  3. Ihnatovych I, Livak M, Reed J, Lanerolle P, Strakova Z (2009): Manipulating actin dynamics affects human in vitro decidualization. Biol Reprod 81:222- 230. 

  4. Hook J, Lemckerk F, Schevzov G, Fath T, Gunning P (2011): Functional identity of the gamma tropomysin gene: Implications for embryonic development, reproduction and cell viability. Bio Architecture 1:49-59. 

  5. Kaeoket K, Persson E, Dalin AM (2001): The sow endometrium at different stages of the oestrous cycle: studies on morphological changes and infiltration by cells of the immune system. Anim Reprod Sci 65:95-114. 

  6. Skowronski MT, Frackowiak L, Skowronska A (2011): Expression of aquaporin 1 in the pig peri-ovarian vascular complex during the estrous cycle and early pregnancy. Reprod Biol 11:210-223. 

  7. Miyado K, Sato M, Taniguchi S (1997): Transformatin-related expression of a low-molecular-mass tropomyosin isoform TM5/TM30nm in transformed rat fibroblastic cell lines. J Cancer Res Clin 123:331-336 

  8. Ochiai H, Inoue Y, Takeya M, Sasaki A, Kaku H (2005): Genome sequence of Xanthomonas oryzae pv. Oryzae suggests contribution of large number of effector genes and insertion sequences to its race diversity. Jpn Agric 39:275-287. 

  9. Alavi-Shoushtari SM, Asri-Rezai S, Abshenas J (2006): A study of the uterine protein variations during the estrus cycle in the cow: A comparison with the serum proteins. Anim Reprod Sci 96:10-20. 

  10. Kaminski T, Nitkiewicz A, Smolinska N (2013): Changes in plasma orexin A and orexin B concentrations during the estrous cycle of the pig. Peptides 39:175-177. 

  11. Thomson NR, Yeats C, Bell K, Holden MT, Bentley SD, Livingstone M, Cerdeno-Tarraga AM, Harris B, Doggett J (2005): The chlamydophila abortus genome sequence reveals an array of variable proteins that contribute to interspecies variation. Genome 15:629-640. 

  12. Parmar T, Sachdeva G, Savardekar L, Katkam RR, Nimbkar-Joshi S, Gadkar-Sable S, Salvi V, Manjramkar DD, Meherji P, Puri CP (2008): Protein repertoire of human uterine fluid during the mid-secretory phase of the menstrual cycle. Hum Reprod 23:379-386. 

  13. Wistow GJ, Lietman T, Williams LA, Stapel SO, de Jong WW, Horwitz J, Piatigorsky J (1988): Tau-crystallin/alpha-enolase : one gene encodes both an enzyme and a lens structural protein. Cell Biol 107: 2729-2736. (Received: 28 August 2013/ Accepted: 2 September 2013) 

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