$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

막투과성 변화로 인한 대황의 Candida albicans에 대한 항진균 활성
Antifungal Activity of Rheum undulatum on Candida albicans by the Changes in Membrane Permeability 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.50 no.4, 2014년, pp.360 - 367  

이흥식 (고려대학교 생명정보공학과) ,  김연희 (세명대학교 한의학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

Candida albicans는 면역력이 약화된 환자의 표재성에서 전신적 감염까지 다양한 부위에서 감염을 유발시킬 수 있는 기회 감염적 병원성 진균이다. C. albicans는 효모형에서 균사형으로 변환될 수 있으며 이 때 바이오필름을 형성할 수 있다. 바이오필름과 관련된 C. albicans의 감염은 일반적으로 통상적인 항진균제에 대해 내성을 보이므로 새로운 항진균제에 대한 개발이 절실하다. 대황(Rheum undulatum)은 전통적으로 한국과 중국에서 하제나 소염제로 사용되는 약용 식물이다. 본 연구의 목적은 R. undulatum이 캔디다증 환자로부터 분리한 C. albicans 바이오필름 형성 균주에 대한 바이오필름 형성 억제효과와 이에 대한 항진균 활성 기작을 알아보는 것이다. R. undulatum (0.098 mg/ml)은 12종의 바이오필름 형성 임상균주의 캔디다 바이오필름을 $49.4{\pm}6.0%$ 감소시켰고 C. albicans의 폴리스티렌 표면으로의 부착을 억제시켰다. CFDA, AM과 propidium iodide로 이중 염색한 결과 R. undulatum은 C. albicans의 세포막을 손상시켰으며 propidium iodide와 neutral red로 염색하여 공초점 레이저 현미경과 위상차 현미경으로 관찰한 결과 C. albicans의 세포용해를 야기함을 관찰할 수 있었다. Crystal violet 흡수율 실험으로 R. undulatum에 의한 세포막 투과성의 변화를 관찰하였다. 따라서 R. undulatum은 세포막의 손상과 세포막의 투과성 변화로 야기된 세포의 용해와 관련된 항진균 활성이 C. albicans의 바이오필름 형성을 억제하는 것으로 보여진다. 본 연구의 결과는 R. undulatum이 바이오필름과 관련된 캔디다의 감염을 치료하고 제거하기 위한 천연물 기반 항진균제 개발에 대한 좋은 후보물질임을 보여준다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Candida albicans is an opportunistic and the most prevalent fungal pathogen that can cause superficial and systemic infections in immunocompromised patients. C. albicans can promote the transition from budding yeast to filamentous form, generating biofilms. Infections associated with C. albicans bio...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • 대황(Rheum undulatum)은 전통적으로 한국과 중국에서 하제나 소염제로 사용되는 약용 식물이다. 본 연구의 목적은 R. undulatum이 캔디다증 환자로부터 분리한 C. albicans 바이오필름 형성 균주에 대한 바이오필름 형성 억제효과와 이에 대한 항진균 활성 기작을 알아보는 것이다. R.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
C. albicans에 의해 형성된 바이오필름이 가진 항진균제에 대한 내성 외에 갖는 진균 생존 전략은? C. albicans와 관련된 대부분의 질환에서 바이오필름이 관련되어 있는 것으로 보고되고 있고, 바이오필름은 Candida의 은신처로 작용하여 숙주의 면역체계를 회피하고 다른 병원체로부터의 경쟁적 압박에서도 생존하게 할 수 있게 한다(Blankenship and Mitchell, 2006). 특히 C.
캔디다 감염의 90% 이상 기인하는 종은? 캔디다증(candidiasis)은 효모의 일종인 Candida 종에 의한 진균성 감염으로, 표재성 감염인 아구창(oral thrush), 질염(vaginitis), 기저귀 발진, 식도염과 심부성 감염인 캔디다혈증(candidemia), 혈관과 위장관 염증으로 발견된다. Candida는 병원내 감염의 주요 원인균으로서, 침습적 캔디다 감염의 90% 이상이 C. albicans, C. glabrata, C. parapsilosis, C. tropicalis, C. krusei에 기인하며, 전신적 캔디다증에 의한 사망률은 40% 이상에 이르는 것으로 보고되어 있다(Pfaller and Diekema, 2007). 대부분의 캔디다증 환자에서 발견되는 C.
대황의 주성분은 무엇인가? 한국과 중국에서 자생하는 대황(Rheum undulatum Linne)은 마디풀과(Polygonaceae)에 속하는 다년생 초본으로 산골짜기의 습지에서 자라며 6–7년 자란 굵은 황색의 원뿌리에서 껍질을 제거하여 말린 것을 약용으로 사용하고 있다. 대황의 주성분은 anthraquinones과 anthraquinone 배당체인 aloe-emodin, rhein, emodin, chrysophanol로 여러 암세포의 성장을 억제한다(Huang et al., 2007; Choi et al.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (35)

  1. Beggs, W.H. 1994. Physicochemical cell damage in relation to lethal amphotericin B action. Antimicrob. Agents Chemother. 38, 363- 364. 

  2. Blankenship, J.R. and Mitchell, A.P. 2006. How to build a biofilm: a fungal perspective. Curr. Opin. Microbiol. 9, 588-594. 

  3. Braun, B.R. and Johnson, A.D. 1997. Control of filament formation in Candida albicans by the transcriptional repressor TUP1. Science 277, 105-109. 

  4. Calderone, R.A. and Fonzi, W.A. 2001. Virulence factors of Candida albicans. Trends Microbiol. 9, 327-335. 

  5. Chandra, J., Kuhn, D.M., Mukherjee, P.K., Hoyer, L.L., McCormick, T., and Ghannoum, M.A. 2001. Biofilm formation by the fungal pathogen Candida albicans: development, architecture, and drug resistance. J. Bacteriol. 183, 5385-5394. 

  6. Choi E.S., Cho, S.D., Jeon, J.G., and Cho, N.P. 2011. The apoptotic effect of the hexane extract of Rheum undulatum L. in oral cancer cells through the down-regulation of specificity protein 1 and survivin. Lab Anim. Res. 27, 19-24. 

  7. CLSI. 2008. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of yeasts; approved standard-third edition; CLSI document M27-A3. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA, USA. 

  8. Cohen, B.E. 1998. Amphotericin B toxicity and lethality: a tale of two channels. Int. J. Pharmaceutics 162, 95-106. 

  9. Douglas, L.J. 2003. Candida biofilms and their role in infection. Trends Microbiol. 11, 30-36. 

  10. Edidin, M. 1970. A rapid, quantitative fluorescence assay for cell damage by cytotoxic antibodies. J. Immunol. 104, 1303-1306. 

  11. Ehara, M., Noguchi, T., and Ueda, K. 1996. Uptake of neutral red by the vacuoles of a green alga, Micrasterias pinnatifida. Plant Cell Physiol. 37, 734-741. 

  12. Guarrera, P.M. 2005. Traditional phytotherapy in central Italy. Fitotherapia 76, 1-25. 

  13. Hawser, S. 1996. Adhesion of different Candida spp. to plastic: XTT formazan determinations. Med. Mycol. 34, 407-410. 

  14. Haynes, K. 2001. Virulence in Candida species. Trends Microbiol. 9, 591-596. 

  15. Huang, Q., Lu, G., Shen, H.M., Chung, M.C., and Ong, C.N. 2007. Anti-cancer properties of anthraquinones from rhubarb. Med. Res. Rev. 27, 609-630. 

  16. Kim, Y. 2013. Inhibition of Candida albicans biofilm formation by Coptidis chinensis through damaging the integrity of cell membrane. Kor. J. Microbiol. 49, 17-23. 

  17. Klepser, M.E., Ernst, E.J., Lewis, R.E., Ernst, M.E., and Pfaller, M.A. 1998. Influence of test conditions on antifungal time-kill curve results: proposal for standardized methods. Antimicrob. Agents Chemother. 42, 1207-1212. 

  18. Krishan, A. 1975. Rapid flow cytofluorometric analysis of mammalian cell cycle by propidium iodide staining. J. Cell Biol. 66, 188-193. 

  19. Mathur, A., Singh, R., Yousuf, S., Bhardwaj, A., Verma, S.K., Babu, P., Gupta, V., Prasad, G.B.K.S., and Dua, V.K. 2011. Antifungal activity of some plant extracts against clinical pathogens. Adv. Appl. Sci. Res. 2, 260-264. 

  20. Odds, F.C., Gow, N.A., and Brown, A.J. 2001. Fungal virulence studies come of age. Genome Biol. 2, reviews 1009.1-1009.4. 

  21. Oliver, B.G., Silver, P.M., Marie, C., Hoot, S.J., Leyde, S.E., and White, T.C. 2008. Tetracycline alters drug susceptibility in Candida albicans and other pathogenic fungi. Microbiology 154, 960-970. 

  22. Park, S.J., Choi, S.J., Shin, W.S., Lee, H.M., Lee, K.S., and Lee, K.H. 2009. Relationship between biofilm formation ability and virulence of Candida albicans. J. Bacteriol. Virol. 39, 119-124. 

  23. Perea, S. and Patterson, T.F. 2002. Antifungal resistance in pathogenic fungi. Clin. Infect. Dis. 35, 1073-1080. 

  24. Pfaller, M.A. and Diekema, D.J. 2007. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clin. Microbiol. Rev. 20, 133-163. 

  25. Ramage, G., Martinez, J.P., and Lopez-Ribot, J.L. 2006. Candida biofilms on implanted biomaterials: a clinically significant problem. FEMS Yeast Res. 6, 979-986. 

  26. Ramage, G., Saville, S.P., Thomas, D.P., and Lopez-Ribot, J.L. 2005. Candida biofilms: an update. Eukaryot Cell 4, 633-638. 

  27. Ramage, G., Vande-Walle, K., Wickes, B.L., and Lopez-Ribot, J.L. 2001. Standardized method for in vitro antifungal susceptibility testing of Candida albicans biofilms. Antimicrob. Agents Chemother. 45, 2475-2479. 

  28. Rukayadi, Y., Shim, J.S., and Hwang, J.K. 2008. Screening of Thai medicinal plants for anticandidal activity. Mycoses 51, 308-312. 

  29. Shapiro, R.S., Robbins, N., and Cowen, L.E. 2011. Regulatory circuitry governing fungal development, drug resistance, and disease. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 75, 213-267. 

  30. Thompson, D.S., Carlisle, P.L., and Kadosh, D. 2011. Coevolution of morphology and virulence in Candida species. Eukaryot. Cell 10, 1173-1182. 

  31. Vaara, M. and Vaara, T. 1981. Outer membrane permeability barrier disruption by polymyxin in polymyxin-susceptible and -resistant Salmonella typhimurium. Antimicrob. Agents Chemother. 19, 578- 583. 

  32. Viarengo, A., Lowe, D., Bolognesi, C., Fabbri, E., and Koehler, A. 2007. The use of biomarkers in biomonitoring: a 2-tier approach assessing the level of pollutant-induced stress syndrome in sentinel organisms. Comp. Biochem. Physiol. Pt. C. 146, 281-300. 

  33. White, T.C., Marr, K.A., and Bowden, R.A. 1998. Clinical cellular and molecular factors that contribute to antifungal drug resistance. Clin. Microbiol. Rev. 11, 382-402. 

  34. Whiteway, M. and Bachewich, C. 2007. Morphogenesis in Candida albicans. Annu. Rev. Microbiol. 61, 529-553. 

  35. Yu, H.M., Liu, Y.F., Cheng, Y.F., Hu, L.K., and Hou, M. 2008. Effects of rhubarb extract on radiation induced lung toxicity via decreasing transforming growth factor-beta-1 and interleukin-6 in lung cancer patients treated with radiotherapy. Lung Cancer 59, 219-226. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

BRONZE

출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로